$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с эмбриональной культуры клеток среднего мозга мыши на покровном листе.
Лечение с помощью сконструированных аденоассоциированных вирусов, кодирующих флуоресцентный комплекс кальциевых индикаторов под нейрон-специфичным промотором.
Инкубация для прикрепления вируса и интернализации.
Удалите среду, чтобы удалить несвязанные вирусы, затем добавьте питательную среду и инкубируйте.
Интернализованные вирусы высвобождают свой геном в ядре, где нейрон-специфический промотор стимулирует выработку кальциевых индикаторных комплексов исключительно в первичных нейронах.
Эти комплексы включают флуоресцентный белок, меченный кальций-связывающим белком, и пептид M13.
Перенесите покровную крышку в чашку с записывающим буфером, богатым ионами кальция, затем поместите ее в записывающую камеру для конфокальной визуализации в реальном времени.
Введите глутаматный записывающий буфер, в результате чего глутамат связывается с ионными каналами, что приводит к поступлению ионов кальция.
Эти ионы связываются с комплексом, вызывая конформационное изменение и флуоресцентное излучение.
При визуализации в реальном времени яркие нейроны указывают на вирусную инфекцию.
Начните с приготовления 1 миллилитра бессывороточной среды DMEM с 1 микролитром hSyn-GCaMP6f AAV на блюдо. Аспирируйте питательную среду из каждой чашки и замените ее 1 миллилитром приготовленного DMEM с hSyn-GCaMP6f. Поместите посуду обратно в инкубатор с температурой 37 градусов Цельсия на один час.
После инкубации аспирируйте среду с помощью AAV, и замените ее 3 миллилитрами среды для культивирования клеток. Инкубируйте посуду при температуре 37 градусов Цельсия в течение пяти-семи дней, меняя среду каждые два-три дня на протяжении всего этого периода вирусной инфекции.
Приготовьте 1 литр записывающего буфера HEPES, 200 миллилитров 20 микромолярного глутаматного записывающего буфера и 200 миллилитров 10 микромолярного записывающего буфера NBQX в соответствии с инструкциями в рукописи.
Заполните стерильную 35-миллиметровую чашку Петри 3 миллилитрами записывающего буфера. Возьмите чашку Петри с зараженными культурами из инкубатора. Затем осторожно возьмитесь за край одного покровного листа щипцами с тонким наконечником и перенесите его в чашку с записывающим буфером.
Поместите оставшуюся покровную крышку в среду обратно в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия и транспортируйте чашку с записывающим буфером к конфокальному микроскопу. Запустите программное обеспечение для работы с изображениями. Пока он инициализируется, запустите перистальтическую помпу и поместите линию в буфер записи. Затем откалибруйте расход до 2 миллилитров в минуту.
Перенесите инфицированный покровный лист из чашки Петри в ванночку для записи с помощью тонких щипцов. Используя 10-кратный объектив для погружения в воду и яркопольный свет, найдите плоскость фокусировки и найдите область с высокой плотностью тел нейронных клеток. Затем переключитесь на объектив 40x и перефокусируйте образец.
Выберите и примените AlexaFluor 488 в окне списка красителей. Чтобы предотвратить передержку и фотообесцвечивание флуорофоров, начните с низких настроек HV и мощности лазера.
Для канала AlexaFluor 488 установите HV на 500, усиление на 1x и смещение на 0. Установите мощность на 5% для лазерной линии 488. Увеличьте размер точечного отверстия до 300 микрометров и используйте опцию сканирования «фокус x2» для оптимальной настройки сигналов излучения до уровня субсатуры. Затем можно отрегулировать настройки для оптимальной видимости каждого канала.
После того, как настройки микроскопа будут оптимизированы, переместите предметный столик, чтобы найти область с несколькими клетками, демонстрирующими спонтанные изменения флуоресценции GCaMP6f, и сфокусируйтесь на нужной плоскости для визуализации.
Используйте инструмент «Вырезать прямоугольник», чтобы обрезать кадр изображения до размера, при котором интервал кадров может составлять чуть менее одной секунды. Установите для интервального окна значение 1,0, а для числового окна — 600.
Чтобы снять фильм серии t, выберите опцию «Время». Затем используйте опцию сканирования "XYt", чтобы начать визуализацию. Следите за индикатором выполнения визуализации и переместите линию из записывающего буфера HEPES в записывающий буфер с глутаматом 20 микромоль в соответствующий момент времени.
Когда съемка будет завершена, нажмите кнопку «Серия готова» и сохраните готовый видеоролик серии t. Продолжайте перфузировать глутамат в течение дополнительных 5 минут, чтобы культивируемые нейроны подвергались воздействию глутамата в общей сложности 10 минут. Повторите этот процесс для каждого покровного листа, который будет изображен.