Установка целоклеточного пластыря для электрофизиологической записи с плоской сетчатки мыши

0 просмотров4:05 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Поместите сетчатку мыши, изготовленную с плоским креплением, в физиологический раствор в камере записи.

С помощью микроскопа расположите записывающую пипетку над сетчаткой. Пипетка содержит электрод и заполнена внутренним раствором.

Приложите положительное давление, чтобы предотвратить закупорку пипетки, вставьте ее в сетчатку, а затем уменьшите давление, чтобы избежать повреждения тканей.

Продвигайте пипетку к звездообразным амакриновым клеткам, или SAC, которые синаптически связаны с другими нейронами.

Приближайтесь к клетке до тех пор, пока на ее мембране не образуется ямочка. Ослабьте давление, позволяя мембране прилипнуть к наконечнику.

С помощью отрицательного тока втяните в пипетку мембранный пластырь.

Примените отсасывание для разрыва мембраны, обеспечивая непрерывность между электродом и цитоплазмой клетки, техника, называемая целоклеточным патч-зажимом.

Чтобы записать синаптические токи, подайте напряжение, чтобы поддерживать потенциал мембраны SAC постоянным.

Нейротрансмиттеры, высвобождаемые синаптически связанными нейронами, запускают поток ионов через синаптические рецепторы SAC, измеряемые электродом.

В этой процедуре внутренний раствор фильтруется через шприцевой фильтр в специальную нить обратной засыпки. Затем вставьте нить в только что вытянутую микропипетку и распределите внутренний раствор рядом с кончиком, пока раствор не покроет серебряную электродную проволоку более чем на 5 миллиметров. После этого закрепите микропипетку на держателе электрода с помощью всасывающего полюса, с помощью которого давление внутри электрода можно регулировать, нажимая или тяну поршень 10-миллилитрового пластикового шприца, подключенного к трубке.

Затем расположите пипетку под объективом и опустите ее примерно на 100 микрометров над сетчаткой. В режиме следителя тока используйте смещение постоянного тока, чтобы обнулить сигнал постоянного напряжения. Измерьте сопротивление пипетки в режиме токового зажима, вводя прямоугольные токи с фиксированной амплитудой через пипетку, когда она находится в ванне. Устраните разницу, повернув ручку доступа R, и используйте показания на ней для расчета сопротивления пипетки.

После этого медленно подведите электрод примерно на 10 микрометров выше сетчатки. Приложите положительное давление к электроду. Затем наблюдайте, как отражение изменяется на кончик пипетки по мере приближения к сетчатке.

Быстро, но осторожно вдавите пипетку в GCL и немедленно уменьшите положительное давление. Перемещайте пипетку к помеченному нейрону и избегайте контакта с другими нейронами, кровеносными сосудами и конечными ножками клеток Мюллера. При необходимости приложите больше положительного давления, чтобы предотвратить засорение электродов.

Затем расположите наконечник пипетки рядом с помеченным нейроном, пока не станет видна ямочка. Затем сбросьте положительное давление и дайте плазматической мембране отскочить обратно на наконечник пипетки. Подайте на пипетку отрицательные токи с силой тока от 20 до 120 пико-ампер, чтобы помочь образованию гигаомного уплотнения.

Важно дать клеточной мембране возможность прийти в норму после сброса положительного давления, поскольку для сохранения морфологии клетки после записи важно обеспечить превосходное уплотнение, образующееся естественным образом между мембраной и отверстием пипетки.

При необходимости примените мягкое отсасывание, чтобы втянуть плазматическую мембрану в пипетку. Подождите пять минут после формирования уплотнения, чтобы разорвать клеточную мембрану, чтобы обеспечить выведение пролитого внутреннего раствора путем суперфузии. После того, как мембрана была разорвана, находясь в режиме текущего зажима, включите баланс моста и отрегулируйте его с помощью ручки оси R. Регистрируйте возбуждающие и тормозящие постсинаптические токи в режиме зажима напряжения, удерживая ячейку в положении обратных потенциалов.

05:25

Препараты и протоколы для всей ячейки патч зажим записи Xenopus laevis тектальный нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

11:05

Выделение и культивирование вестибулярных и спиральных ганглионарных сомат у неонатальных грызунов для записи с помощью патч-клэмпа

Похожие видео

0 Просмотры

09:39

Гипоталамические кисспептиновые нейроны как мишень для записи цельноклеточных пластырей

Похожие видео

0 Просмотры

19:33

Всего-клеточные Recordings Света Вызванные Возбуждающие Synaptic токи в сетчатке глаза фрагмент

Похожие видео

0 Просмотры

09:38

Патч зажим Recordings от мыши нейронов сетчатки в темно-адаптированной фрагмент подготовка

Похожие видео

0 Просмотры

13:02

Изолированные сетчатки Подготовка к записи Света Ответ Генетически Маркированный ганглиозных клеток сетчатки

Похожие видео

0 Просмотры

07:30

Электрофизиологические характеристика GFP-выражая клеточных популяций в Неповрежденный Retina

Похожие видео

0 Просмотры

03:42

Электрофизиология цельноклеточного зажима: метод изучения электрических свойств нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

03:12

Создание конфигурации всей клетки с помощью метода патч-зажима

Похожие видео

0 Просмотры

04:35

Вызванные светом постсинаптические реакции в нейронах срезов сетчатки мыши

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 22 августа 2026