$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с электрофизиологической установки, содержащей срез переднего мозга мыши, погруженный в насыщенный кислородом аКСФ.
aCSF содержит блокатор ионных каналов, который избирательно ингибирует натрий-ионные каналы, предотвращая индуцированное натрием возбуждение нейронов.
Нейроны коры головного мозга экспрессируют флуоресцентные белки-датчики глутамата.
Найдите один аксональный бутон пресинаптического нейрона, способный высвобождать глутамат, возбуждающий нейромедиатор, в синапсе, где он соединяется с постсинаптическими нейронами.
Расположите электрод стимуляции рядом с этим бутоном и подайте токи деполяризации.
Это возбуждает пресинаптический нейрон, вызывая приток ионов кальция и способствуя высвобождению глутамата.
Начните запись интенсивности флуоресценции вокруг выбранного бутона.
Высвобожденный глутамат взаимодействует с сенсорными белками и рецепторами на постсинаптических нейронах.
Тем временем осветите выбранную область лазерным светом, вызывая флуоресцирование связанных с глутаматом сенсорных белков; увеличение интенсивности флуоресценции указывает на высвобождение глутамата.
Со временем глутамат диссоциирует от сенсорных белков и попадает в астроцит, вызывая снижение интенсивности флуоресценции, что свидетельствует о клиренсе глутамата.
Чтобы визуализировать высвобождение и клиренс глутамата с помощью дисков XY микроскопа, поместите тестируемый бутон, положительный для сенсора глутамата, близко к центру поля обзора. После остановки съемки щелкните по изображению левой кнопкой мыши, чтобы определить положение по оси XY центра покоящегося бутона. Отобразятся координаты XY установленного курсора.
Используя данные калибровки, рассчитать координаты участка, куда должен быть направлен лазерный луч для возбуждения флуоресценции датчика глутамата, используя указанные формулы. Чтобы создать одноточечную последовательность в программном обеспечении для управления лазером, выберите точку в поле «Добавить в последовательность» на странице «Последовательность» программного обеспечения для управления лазером и установите задержку прогонов и прогона равным 0, а также последовательность, которая будет выполняться с TLL. Затем нажмите «Начать последовательность».
В программном обеспечении для управления камерой выберите соответствующие параметры изображения, а затем выберите внешний запуск для режима запуска. Нажмите «Принять сигнал» в программном обеспечении для управления камерой. Затем инициируйте экспериментальный протокол, заложенный для триггерного устройства, и реализуйте экспериментальный протокол с соответствующей временной шкалой, чтобы камера получила 400 кадров с частотой 2,48 килогерц в течение 1 попытки с частотой повторения 0,1 герц или ниже.
Чтобы идентифицировать патологические синапсы, включите процедуры подъема и рассчитайте среднее значение интенсивности флуоресценции и стандартное отклонение для выбранной области интереса в состоянии покоя. Определите и упакуйте область, занятую пикселями, с интенсивностью флуоресценции в состоянии покоя больше среднего значения плюс 3 стандартных отклонения, и определите виртуальный диаметр в микронах, предполагая круговую форму суперпороговой области.
Построите график зависимости интенсивности флуоресценции от времени как разность между фактическим значением интенсивности флуоресценции и значением интенсивности флуоресценции в состоянии покоя, деленное на значение интенсивности флуоресценции в состоянии покоя. Определите пиковую амплитуду флуоресцентного отклика. Выполните моноэкспоненциальную подгонку для затухания от пика флуоресцентной реакции и определите постоянную времени затухания, тау д.
Чтобы оценить максимальную амплитуду в данном синапсе, выберите пиксель с наибольшим изменением интенсивности флуоресценции, который является лучшим индикатором глутаматной нагрузки, представленной механизму клиренса синапса.