JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 4:49 мин • July 8th, 2025
Начнем с находящейся под наркозом, генетически измененной мыши, голова которой закреплена в адаптере, удерживающем голову.
Мозг мыши экспрессирует флуоресцентный белок, который позволяет обнаруживать нейронную активность.
Брейте и последовательно стерилизуйте кожу головы перед тем, как разрезать ее.
Удалите соединительную ткань, чтобы обнажить череп.
Отметьте целевые участки и нанесите слой клея.
С помощью микродрели истончите череп на отмеченном участке.
Удалите часть черепа, чтобы обнажить мозг.
Применяйте искусственную спинномозговую жидкость, чтобы мозг оставался влажным.
Установите в этом районе оптическое окно и заклейте его клеем, который обеспечивает основу для крепления цемента.
Нанесите черный стоматологический цемент, чтобы заблокировать свет.
Повторите процедуру на другой стороне черепа.
Дайте животному восстановиться.
Чтобы отобразить нейронную активность, поместите защищенную мышь под наркозом под микроскоп и получите изображения.
Подтвердите отсутствие реакции на ущипывание пальца ноги у обезболенной мыши весом от 20 до 25 граммов, от 1 и 1/2 до 2 и 1/2 месячной мыши Thy1-GCaMP6s и нанесите мазь на глаза животного. Поместите мышь на грелку, накрытую стерильной простыней, и используйте адаптер для удержания головы для мышей, чтобы стабилизировать голову. Побрейте большую часть кожи головы обоюдоострой бритвой, а открытые участки кожи очищайте последовательными стерильными спиртовыми препаратами и скрабами на основе повидон-йодного раствора. Затем с помощью ножниц сделайте прямоугольный разрез размером 2 на 3 миллиметра на коже головы.
С помощью ватного тампона отодвиньте кожу в сторону, чтобы создать область воздействия более 3 миллиметров в диаметре, и с помощью тупого микрохирургического лезвия аккуратно удалите соединительную ткань, прикрепленную к черепу. С помощью бормашины аккуратно отметьте круг диаметром 3 миллиметра вокруг области S1. Сделав аналогичный круг на левой стороне черепа, нанесите тонкий слой цианоакрилатного суперклея на обе стороны кости, чтобы обеспечить основу для нанесения стоматологического цемента.
Под рассекающим микроскопом используйте высокоскоростное микросверло, чтобы утончить круглую канавку в правой части черепа вокруг области S1 для создания гладкого края, при необходимости отсасывая костные остатки с помощью вакуума. После того, как будет достигнута примерно 2/3 глубины кости, медленно и осторожно утончите оставшуюся треть кости до тех пор, пока круглый костный лоскут не будет полностью освобожден от окружающего черепа. Используйте пару щипцов # 5/45, чтобы медленно и осторожно удалить круглый кусок кости, чтобы обнажить твердую мозговую оболочку, стараясь не повредить сосуды пиала.
После удаления костного лоскута с левой стороны черепа таким же образом промойте оптическое окно для правой стороны черепа стерильным физиологическим раствором и проверьте наличие дефектов под стереомикроскопом. Установите оптическое окно над областью трепанации черепа так, чтобы верхняя часть окна опиралась на череп, а нижняя часть внутри краниотомизированного отверстия, опираясь на твердую мозговую оболочку в присутствии спинномозговой жидкости. Используйте суперклей с цианоакрилатами, чтобы прикрепить верхнюю часть края оптического окна к черепу.
Когда клей высохнет, нанесите черный стоматологический цемент на край стекла, остальную правую сторону открытого черепа и края раны, чтобы заблокировать свет. Затем установите левое оптическое окно и дайте животному восстановиться с контролем до полного лежания. Через 7-10 дней после процедуры поместите животное под наркозом в адаптер для удержания головы на грелке под двухфотонный микроскоп, следя за тем, чтобы оптическое окно и правая сторона черепа были ориентированы перпендикулярно оптической оси микроскопа.
Получите исходное опорное картографическое изображение черепного окна с помощью светлопольного освещения с 4-кратным увеличением. После получения нескольких изображений одной и той же области интереса визуализируйте динамику кальция в области S1 в левом полушарии и рассчитайте изменения флуоресценции из каждой области интереса с обеих сторон черепа.
В данной статье представлен подробный протокол визуализации нейронной активности у генетически модифицированных мышей с помощью двухфотонного микроскопа. Процедура включает создание краниального окна для обеспечения прямого наблюдения за активностью мозга при соблюдении условий безопасности и комфорта животного.
Создание надежных методов визуализации нейронной активности в трансгенных моделях способствует валидации мишеней и снижению механистических рисков при разработке препаратов для лечения заболеваний ЦНС. Метод установки краниального окна позволяет осуществлять количественный лонгитюдный мониторинг динамики нейронов, что повышает прогностическую достоверность терапевтических гипотез на ранних этапах. Данный подход снижает биологическую неопределенность, обеспечивая прямые и транслируемые показатели взаимодействия с мишенью и модуляции путей в системах, релевантных для заболевания.
Данный метод интегрируется в общий процесс разработки — от ранней валидации мишеней и идентификации ведущих соединений до тестирования доклинической эффективности, что обеспечивается возможностью проведения многократных количественных измерений нейронной активности.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026