Измерение нейронной активности в срезе мозга мыши после длительной инкубации

0 просмотров2:55 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Закрепите срез мозга мыши в записывающей камере, перфузированной кислородосодержащей aCSF после длительной инкубации.

Клетки в срезе загружены индикатором кальция, облегчающим внутриклеточное измерение кальция.

Возьмите записывающую пипетку, содержащую электрод в растворе электролита.

Определите целевой нейрон. Расположите записывающую пипетку с положительным давлением на клеточную мембрану, создав ямочку.

Приложите отрицательное давление, чтобы создать герметичное уплотнение.

Далее применяются импульсы отрицательного давления, разрывая мембрану и создавая конфигурацию целой клетки.

Перфузируют aCSF с высокой концентрацией калия, который деполяризует мембрану нейрона.

Деполяризация открывает натриевые каналы, запуская потенциал действия, который, в свою очередь, активирует потенциал-зависимые кальциевые каналы и обеспечивает приток кальция.

Ионы кальция связываются с индикатором, усиливая флуоресценцию, которую можно визуализировать при подходящем освещении.

Увеличение внутриклеточной флуоресценции, вызванное притоком кальция после применения калия, указывает на жизнеспособность нейронов после длительной инкубации.

Для записи поместите ткань в погружную записывающую камеру под микроскопом и перфузируйте ее оксигенированным aCSF со скоростью потока от 4 до 5 миллилитров в минуту. Удерживайте салфетку с помощью изготовленной на заказ арфы. Затем подготовьте несколько записывающих пипеток с помощью съемника микропипеток для достижения конечного сопротивления от 5 до 6 мегаом.

Наполните пипетку от 3 до 4 микролитров внутреннего раствора, а затем поместите раствор на лед. Затем визуализируйте ячейки с помощью ПЗС-камеры под управлением IR-DIC. Расположите пипетку на клеточной мембране с помощью микроманипулятора. Поддерживайте положительное давление через всасывающее отверстие на держателе пипетки. Как только пипетка окажется на элементе, приложите к ней мягкое отрицательное давление, чтобы добиться гигаомного уплотнения.

Затем разорвите клеточную мембрану с кратковременным отрицательным давлением. Затем начните запись тока или напряжения на всей ячейке. Для одной длины волны возбуждения потока 4 отфильтруйте возбуждающий свет через полосовой фильтр с длиной от 460 до 490 нанометров, а излучаемый свет — через полосовой фильтр от 515 до 550 нанометров.

11:26

Ratiometric кальция изображений отдельных нейронов в себя Caenorhabditis Elegans

Похожие видео

0 Просмотры

09:07

Флуоресцентные изображения кальция и последующей на месте гибридизации для нейрональной характеристики прекурсоров в Xenopus laevis

Похожие видео

0 Просмотры

07:27

In vivo Кальциевая визуализация реакции ганглионных нейронов мыши на вкусовые стимулы

Похожие видео

0 Просмотры

03:46

Оценка нейронных сетей в срезах спинного мозга мышей на основе микроэлектродной матрицы

Похожие видео

0 Просмотры

03:10

Генерация спонтанных иктальных событий по требованию в срезах коры головного мозга мыши

Похожие видео

0 Просмотры

09:39

Прямая тока Стимуляция и Многоэлектродные массив Запись припадков, как активность мозга у мышей Кусочек Подготовка

Похожие видео

0 Просмотры

10:53

Подготовка фрагментов острого мозга, с помощью оптимизированного N-метил-D-glucamine защитные восстановления метод

Похожие видео

0 Просмотры

10:30

Длительная инкубация Острый нейронную ткань для электрофизиологии и кальций-изображений

Похожие видео

0 Просмотры

10:24

Запись и модуляция активности эпилептиформный ломтиками грызунов мозга в сочетании с микроэлектродные массивы

Похожие видео

0 Просмотры

12:26

Инвазивный метод для активации мыши зубчатой извилине, высокой частоты стимуляции

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026