$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начнем с электрофизиологической установки, содержащей обездвиженную трансгенную муху с открытым мозгом.
Расположите записывающую микропипетку рядом с постсинаптическим нейроном, соединенным с пресинаптическим нейроном, совместно экспрессирующим ретродотоксино-резистентные натриевые каналы и красные светочувствительные каналы, а также интернейрон с тетродотоксино-чувствительными натриевыми каналами.
Нанесите мягкое отсасывание на микропипетку, чтобы сформировать плотное уплотнение с мембраной нейрона.
Затем примените сильное всасывание, чтобы нарушить мембрану.
Поддерживайте постоянный потенциал клеток. Введите тетродотоксин, который блокирует натриевые каналы в интернейроне, препятствуя передаче сигнала от интернейрона к постсинаптическому нейрону.
Тем не менее, устойчивые к тетродотоксину натриевые каналы остаются незатронутыми, что позволяет ионам натрия проникать в пресинаптический нейрон
.
Осветите муху с помощью импульсов красного света.
Это стимулирует светочувствительные каналы, позволяя катионам притокаться и активировать пресинаптический нейрон.
Этот пресинаптический нейрон напрямую передает сигнал постсинаптическому нейрону, не вовлекая интернейрон, и возникающая электрическая активность подтверждает моносинаптическую связь.
На оснастке немедленно приступайте к перфузию препарата с записью физраствора, пузырчатого с карбогеном. Используйте резервуар с гравитационной подачей солевого раствора, расположенный над предметным столиком микроскопа. Для сбора отработанного солевого раствора используют вакуумную линию в двухлитровой колбе.
Далее загрузите в патч-пипетку четыре микролитра внутреннего записывающего раствора, и присоедините пипетку к микроманипулятору. Затем обнулите смещение усилителя и настройте усилитель на подачу тестовых импульсов. Затем отрегулируйте ИК-подсветку под углом, чтобы получить четкое изображение мозга.
Теперь, оказывая положительное давление на пипетку, подойдите к ячейке с пипеткой. При контакте с клеткой сбросьте положительное давление, чтобы прижать пипетку к мембране. Затем установите удерживающий потенциал мембраны на -60 милливольт, и пипетка должна образовать гигаомное уплотнение с клеточной мембраной. Удерживающий ток должен упасть до низкого уровня субпикоампера.
Чтобы получить постоянное гигаомное уплотнение, следите за тем, чтобы пипетка была чистой, сохраняя положительное давление, и избегайте попадания на ткани при приближении к клеткам.
Чтобы продолжить, настройте усилитель на выдачу тестовых импульсов от -50 до -60 милливольт. Тестовые импульсы выявят большой емкостный переходный процесс, представляющий собой ток, необходимый для зарядки патч-пипетки. Чтобы удалить емкостные переходные процессы, отрегулируйте ручки компенсации емкости на усилителе.
Теперь примените короткие импульсы отрицательного давления, чтобы разорвать клеточную мембрану и получить конфигурацию всей клетки. Значительное увеличение емкостных переходных процессов свидетельствует об успехе. Также следует наблюдать небольшое увеличение удерживаемого тока. Затем установите усилитель в режим токового зажима и отрегулируйте потенциал ячейки в диапазоне от -50 до -60 милливольт.
Удерживающий потенциал может быть отрегулирован таким образом, чтобы соответственно подчеркнуть возбуждающие или тормозящие связи. После проверки соединения настройте перфузию физиологического раствора для рециркуляции физиологического раствора. Установите насосы так, чтобы уровень физиологического раствора в ванне оставался стабильным.
Затем добавьте в систему достаточное количество тетродотоксина для конечной концентрации одного микромоляра. Это должно остановить пиковую активность поврежденного нейрона. Если нет, добавьте в систему больше тетродотоксина. Теперь примените короткие импульсы красного света, чтобы активировать то, что, скорее всего, будет моносинаптической связью.