$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с многоэлектрической матрицы (MEA) пластины. Каждая лунка содержит расположенный по центру массив электродов.
Матрица покрыта культуральным субстратом для облегчения клеточной адгезии.
Добавьте суспензию моторных нейронов и астроцитов в виде капли над массивом.
Инкубируйте для обеспечения прикрепления клеток, затем добавьте теплую среду для совместной культивирования, дополненную небольшой молекулой, которая поддерживает жизнеспособность клеток.
Во время инкубации астроциты выделяют факторы, которые способствуют созреванию нейронов и образованию синапсов, в результате чего образуется нейронная сеть.
Поместите MEA в записывающее устройство в физиологических условиях для мониторинга активности нейронов.
Нейроны передают электрические сигналы, называемые потенциалами действия, которые распространяются вдоль их аксонов.
Достигнув синапса, сигнал запускает высвобождение нейромедиатора, распространяя сигнал на следующий нейрон
.
Электроды внутри каждой лунки внеклеточно записывают сигналы, генерируемые синаптически связанными нейронами.
Обнаружение синхронизированных ритмичных электрических сигналов подтверждает создание нейронной сети.
В день нанесения покрытия или до этого начните нанесение покрытия на 24-луночные пластины MEA, предварительно разбавив PLO в воде или PBS. Затем добавьте от 15 до 20 микролитров PLO в каждую лунку, образуя каплю в центре лунки, покрывая область электрода, следя за тем, чтобы не повредить электроды наконечником пипетки.
Добавьте воду в окружающие отсеки лунки, обеспечив достаточную влажность, и инкубируйте PLO при температуре 37 градусов Цельсия в течение 1–2 часов. Затем с помощью пластикового наконечника для микропипетки втяните как можно больше PLO, не касаясь электродов. Далее промойте колодец 250 микролитрами воды, трижды.
С помощью наконечника для дозатора удалите как можно больше воды и дайте поверхности высохнуть, сняв крышку. Затем добавьте от 15 до 20 микролитров разведенного ламинина, чтобы покрыть каждую электродную решетку. После добавления воды в отсеки для влажности и установки крышки выдерживайте при температуре 37 градусов Цельсия в течение минимум двух часов до ночи.
В день осаждения, после однократного промывания мотонейронов и культур астроцитов PBS, добавьте 0,05% трипсина и инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в течение примерно 5 минут для подъема клеток. Соберите клетки в коническую трубку объемом 15 миллилитров, содержащую ингибитор трипсина, и промойте планшеты со средой или основанием, чтобы убедиться, что все клетки собраны.
Гранулируйте клетки центрифугированием, а затем с помощью пипетки объемом 1000 микролитров ресуспендируйте моторные нейроны и астроциты средой для совместной культивирования, содержащей 20 микромоляров ингибитора ROCK, чтобы получить 1 миллилитр суспензии одиночных клеток. С помощью гемоцитометра подсчитайте моторные нейроны и астроциты, и во время подсчета закройте клеточные суспензии и поместите их в штатив из пенополистирола при температуре 4 градуса Цельсия.
Центрифугируйте 1 миллилитр обеих клеточных суспензий в 300 раз g в течение 5 минут. Рассчитайте нужный объем, и повторно суспензируйте гранулы. Соедините необходимый объем нейронных и астроцитарных суспензий в равных пропорциях, и аккуратно перемешайте с помощью пипетирования дважды, чтобы полностью смешать.
Затем удалите ламинин из каждой лунки пластины и перенесите 10 микролитров конечной суспензии комбинированной ячейки в каждую лунку, образуя небольшую каплю, покрывающую электродную решетку. Инкубируйте планшеты с ненарушенной каплей клеток при температуре 37 градусов Цельсия в течение 20-30 минут, чтобы сформировать первоначальные прикрепления на планшетах.
Затем пипетируйте 250 микролитров теплой среды для совместной культуры, содержащей ингибитор ROCK, вниз на стенку каждой лунки, пипетируйте такой же объем на противоположной стенке каждой лунки и инкубируйте планшет при температуре 37 градусов Цельсия в течение 24-36 часов. На следующий день осмотрите планшеты на наличие мусора или мертвых клеток и, при необходимости, замените среду на свежую среду для совместной культуры, содержащую ингибитор ROCK.
В противном случае проводите полусредние обмены два раза в неделю с использованием среды для совместной культуры без ингибитора ROCK, начиная со 2-го дня совместной культуры. Чтобы провести запись, начните как можно скорее после 1-го дня совместной культуры, установив температуру 37 градусов Цельсия и углекислый газ на уровне 5%. Затем перенесите пластины на записывающий аппарат и уравновесьте в течение как минимум пяти минут перед записью. Записывайте исходную активность через день или еженедельно в течение от 1 до 15 минут, в зависимости от плана эксперимента.