-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Живая съемка Спинной Аксоны Корневая после ризотомия
Живая съемка Спинной Аксоны Корневая после ризотомия
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Live Imaging of Dorsal Root Axons after Rhizotomy

Живая съемка Спинной Аксоны Корневая после ризотомия

Full Text
14,118 Views
06:39 min
September 1, 2011

DOI: 10.3791/3126-v

Andrew Skuba1, B. Timothy Himes2,3, Young-Jin Son4

1Temple University,Shriners Hospitals Pediatric Research Center and Department of Anatomy and Cell Biology, 2Medical Research Service,Department of Veterans Affairs Hospital, 3Department of Neurobiology and Anatomy,Drexel University College of Medicine, 4Shriners Hospitals Pediatric Research Center and Department of Anatomy and Cell Biology,Temple University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Transcript

Общая цель этой процедуры заключается в исследовании регенерации дорсального корешка с целью обнаружения средств, способных вызвать значительную регенерацию после травм спинномозгового корешка. Это достигается путем создания спинальной геми-ламинэктомии, которая обнажает правый пятый дорсальный корешок L и позволяет визуализировать меченые YFP положительные аксоны в спинном мозге и дорсальном корешке. Затем спинной корень L five тщательно измельчается, чтобы обеспечить минимальное кровотечение.

Затем после раздавливания визуализируется место раздавливания, чтобы проверить положение поврежденного дорсального корешка в очаге поражения. В течение нескольких временных точек визуализируются место повреждения и зона входа в дорсальный корешок, чтобы определить способность поврежденных аксонов регенерировать в спинной мозг. В конечном счете, можно получить результаты, которые показывают, что регенерирующие аксоны быстро иммобилизуются и остаются неподвижными, когда они входят в зону входа в дорсальный корешок или DREZ.

Основное преимущество этой методики перед существующими методами, такими как визуализация мертвого животного, заключается в том, что мы можем многократно визуализировать эту систему на живом животном в течение нескольких недель или даже месяцев. Сначала поместите термостатическую грелку под флуоресцентный стереомикроскоп и отрегулируйте выходную мощность до 32,5 градусов Цельсия на грелке, отрегулированную до 32,5 градусов Цельсия Предварительно подогрейте стерильный раствор Рингера до 32,5 градусов Цельсия для орошения спинного мозга Во время операции обезболите животное внутрибрюшинной инъекцией коктейля ксилазина и кетамина. Начальная доза анальгетика бупренорфина также вводится подкожно.

Подходящий уровень анестезии достигается тогда, когда пальпируемый рефлекс отсутствует и животное не реагирует на пощипывание пальца ноги. Как только анестезия подтвердится, побрейте верхнюю часть спины с помощью маленьких машинок для стрижки животных и нанесите одну маленькую каплю лосьона для удаления волос на выбритую область с помощью ватных палочек. Через несколько минут удалите нанесенный лосьон и остатки шерсти мыльным раствором.

Наконец, использование марлевых губок, пропитанных 70% этанолом, для полной очистки операционного поля. Положите животное на грелку и продезинфицируйте кожу тампонами, смоченными на 70% этанолом. Стерильная хирургическая простыня должна быть применена в демонстрационных целях.

В этом видео он не показан. При светлопольном освещении на стереомикроскопе сделайте двух-трехсантиметровый разрез по средней линии на коже спины. При необходимости используйте ватные тампоны для остановки кровотечения.

Отразите мускулатуру позвоночника с помощью тонких щипцов и костных челюстей. Обнажить нижележащие поясничные позвонки. Обнажите L-три и S один сегменты позвоночника с помощью правосторонней геми-ламинэктомии с использованием меньших R-присяжных, а затем перфузируйте полость теплым стерильным раствором Рингера.

Расположите животное на опорной подушке из свернутой хлопчатобумажной марли. Для уплощения позвоночного столба. Используйте крючки для втягивания для расширения открытой области.

На этом этапе, примерно через 30 минут после первой инъекции анестетика, следует ввести добавку для того, чтобы животное полностью обезболилось. Переключитесь на флуоресцентное возбуждение, чтобы визуализировать, почему FP мечет аксоны. С помощью кончика иглы 27 с половиной калибра сделайте небольшой разрез в твердой мозговой оболочке, расположенной над пятым спинным корешком, несколько раз проработайте раствором Рингера и аккуратно очистите ватными тампонами.

Определите участок, который нужно раздавить, и сделайте снимки всей открытой неповрежденной области. Это поможет определить место повреждения на последующих сеансах визуализации. Затем вставьте с одной стороны пару тонких щипцов.

Должным образом закройте щипцы аккуратно, но крепко, удерживая медиальную часть корня L five в течение 10 секунд, а затем осторожно отпустите щипцы. Многократно вымойте физиологическим раствором и аккуратно очистите ватными палочками. Получите несколько изображений всей экспонированной области, включая место раздавливания и DREZ до и сразу после раздавливания, как при низком, так и при большом увеличении.

После плотной визуализации наложите кусок тонкой синтетической матричной мембраны, а затем искусственную твердую мозговую оболочку поверх обнаженного спинного мозга таким образом, чтобы они точно поместились в открытое окно спинного мозга. Закройте мускулатуру стерильными пятью швами, а разрез по средней линии закройте раневыми зажимами. Вводите растворы рингера подкожно и вводите бупренорфин в качестве послеоперационной анальгезии путем внутримышечной инъекции каждые 12 часов в течение двух дней.

Обезболите животное ксилазином и кетамином, как описано ранее, и снимите зажимы для раны и швы. Снимите искусственную твердую мозговую оболочку и тонкие пластыри с синтетической матрицей и храните их в стерильной пробирке, содержащей раствор Рингера, для последующего повторного использования. Затем аккуратно удалите скопившуюся соединительную рубцовую ткань с помощью изогнутого кончика иглы 26 калибра и тонких щипцов, часто перфузирующих теплым раствором Ringer.

Повторно обнажите операционное поле, включая место дробления и зону входа в дорсальный корешок, и переместите меченные YFP аксоны, изображенные на предыдущих сеансах, для продолжения визуализации во время регенерации. Здесь сразу после раздавливания показаны четыре поверхностных аксона, помеченных YFP, обозначенных цветными стрелками. Через три дня после раздавливания все четыре аксона расширяют один нейрит, который прорастает через место раздавливания, как показано через два и пять дней после раздавливания.

Нейриты остаются стабильными и не происходит дополнительного роста из этих или других проксимальных аксонов. На четвертый день регенерирующие нейриты тоньше и тусклее, чем пощаженные аксоны. Повторная визуализация этих аксонов на их кончиках каждые два-три дня в течение еще двух недель показывает, что они не росли вперед и не втягивались, а оставались неподвижными с отеком кончиков и стержней некоторых аксонов.

После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как обнажать, раздавливать и наблюдать за корнем L 5 do, чтобы лучше понять механизмы, которые препятствуют или способствуют регенерации аксонов.

Explore More Videos

Neuroscience выпуск 55 в естественных изображений спинной травмы корня широкий микроскоп флуоресценции поле ламинэктомия спинного мозга Зеленый флуоресценции белка трансгенные мыши спинной ганглий корня травма позвоночника корень

Related Videos

Моделирование регенерации сенсорных аксонов у крысы с помощью инъекции ганглия дорсального корешка и травмы дробления дорсального корешка

04:38

Моделирование регенерации сенсорных аксонов у крысы с помощью инъекции ганглия дорсального корешка и травмы дробления дорсального корешка

Related Videos

414 Views

Визуализация кальция in vivo нейронных ансамблей в интактных ганглиях заднего корешка мыши

07:09

Визуализация кальция in vivo нейронных ансамблей в интактных ганглиях заднего корешка мыши

Related Videos

512 Views

Мотор Перерезка нерва и Покадровый Визуализация глиальных клеточных поведений в Живом данио рерио

09:05

Мотор Перерезка нерва и Покадровый Визуализация глиальных клеточных поведений в Живом данио рерио

Related Videos

12.2K Views

Измерение спинного пресинаптического торможения у мышей, спинных потенциального записи В Vivo

09:48

Измерение спинного пресинаптического торможения у мышей, спинных потенциального записи В Vivo

Related Videos

14.3K Views

Ex Vivo Лазерно-индуцированное Травма спинного мозга модель для оценки Механизмы дегенерации аксонов в режиме реального времени

11:18

Ex Vivo Лазерно-индуцированное Травма спинного мозга модель для оценки Механизмы дегенерации аксонов в режиме реального времени

Related Videos

11.2K Views

Спинальный ганглий Injection и дорсальных корешков размозжение как модель для регенерации Сенсорное Axon

09:48

Спинальный ганглий Injection и дорсальных корешков размозжение как модель для регенерации Сенсорное Axon

Related Videos

18.7K Views

Следственный млекопитающих Axon регенерации: В Vivo электропорации взрослых мыши Спинной корень ганглия

06:17

Следственный млекопитающих Axon регенерации: В Vivo электропорации взрослых мыши Спинной корень ганглия

Related Videos

8.7K Views

Использование In Vivo одноволоконной записи и Intact Dorsal Root Ganglion с прикрепленным седалиальным нервом для изучения механизма отказа от проводимости

09:34

Использование In Vivo одноволоконной записи и Intact Dorsal Root Ganglion с прикрепленным седалиальным нервом для изучения механизма отказа от проводимости

Related Videos

9.3K Views

В естественных условиях Кальциевая визуализация нейронных ансамблей в сетях первичных сенсорных нейронов в интактных ганглиях дорсальных корешков

09:07

В естественных условиях Кальциевая визуализация нейронных ансамблей в сетях первичных сенсорных нейронов в интактных ганглиях дорсальных корешков

Related Videos

3.3K Views

В естественных условиях Кальциевая визуализация реакции нейронов ганглиев дорсального корешка на соматические и висцеральные раздражители

06:06

В естественных условиях Кальциевая визуализация реакции нейронов ганглиев дорсального корешка на соматические и висцеральные раздражители

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code