JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 3:39 мин • July 8th, 2025
Зафиксируйте муху с обнаженным мозгом в камере визуализации.
Муха экспрессирует генетически закодированный индикатор кальция, или GECI, локализованный в дендритах тела гриба, или нейроны MB.
Соедините муху электрическими проводами и расположите иглу для доставки запаха рядом с ее антенной.
Добавьте буферную каплю на обнаженный мозг, поместите муху под микроскоп и подключите иглу к системе доставки запаха.
Возбуждайте GECI и подайте стимул запаха.
Одорант связывается с рецепторами сенсорных нейронов антенны, генерируя потенциалы действия.
Потенциалы действия распространяются от сенсорных нейронов к проекционным нейронам, индуцируя высвобождение нейротрансмиттеров и способствуя притоку кальция и флуоресценции GECI в постсинаптических нейронах MB.
Повторите то же самое со вторым и третьим одорантом.
Далее наносите первый запах с помощью электрошока, а второй без.
Наконец, устраните три запаха без ударов. Запишите флуоресценцию.
Сниженная флуоресценция в ответ на стимул, связанный с шоком, по сравнению с контрольной группой, выявляет синаптическую пластичность, вызванную обучением.
Для визуализации кальциевых индикаторов на основе GFP настройте лазер многофотонного микроскопа, оснащенного инфракрасным лазером, и водно-иммерсионный объектив, установленный на виброизолированном столе, на длину волны возбуждения 920 нанометров, а также установите полосовой фильтр GFP. С помощью ручки грубой регулировки по оси Z просканируйте ось Z, чтобы найти интересующую область мозга.
Используйте функцию обрезки, чтобы сфокусировать сканирование только на интересующей области, чтобы свести к минимуму время сканирования, и поверните вид сканирования таким образом, чтобы передняя часть головы была обращена вниз. Затем отрегулируйте размер кадра до 512 на 512 пикселей и выберите область для сканирования, учитывая рассчитанное время сканирования для каждого кадра, чтобы достичь частоты кадров не менее 4 герц.
Для визуализации переходных процессов кальция, вызванных запахом, инициируйте предварительно запрограммированный макропакет, способный связать программное обеспечение для получения изображений с программой доставки запаха, и начните измерение в программном обеспечении микроскопа в течение 6,25 секунд, чтобы установить базовое значение F0.
В системе подачи запаха подайте 2,5-секундный стимул запаха, указанный здесь загоранием светодиодов, запускаемым открытием и закрытием клапанов чашек определенного запаха, за которым следует 12,5-секундная запись в конце смещения запаха. Затем повторите подачу второго и третьего одоранта таким же образом.
Чтобы выполнить ассоциативное обусловливание в этой системе, используйте управляемую компьютером систему доставки запаха, которая представляет кондиционированный стимул плюс запах в течение 60 секунд вместе с электрическим током напряжением 12-90 вольт. После 60-секундного перерыва предъявите кондиционированный стимул без запаха в течение 60 секунд без поражения электрическим током. Снова измерьте мимолетность кальция, вызванную запахом, повторив протокол стимуляции запаха перед тренировкой, через три минуты после окончания фазы тренировки
В данной статье описывается метод изучения синаптической пластичности у Drosophila с использованием генетически кодируемых кальциевых индикаторов (GECI) для визуализации нейронной активности. Подход заключается в открытии мозга мухи, подаче ольфакторных стимулов и регистрации переходных процессов изменения уровня кальция в нейронах грибовидного тела.
Данный метод позволяет в режиме реального времени визуализировать синаптическую пластичность в генетически модифицируемой модели, что способствует валидации мишеней в нейрофармакологии путем установления связи между вызванными запахами нейронными ответами и поведенческим обусловливанием. Он обеспечивает количественную оценку вызванных обучением изменений в динамике постсинаптического кальция, что облегчает механический анализ рисков при изучении соединений, активных в ЦНС. Данный подход применим в рабочих процессах раннего поиска, где функциональная валидация нейронных мишеней требует коррелятивных электрофизиологических данных и результатов визуализации.
Данный метод интегрируется в рабочие процессы раннего поиска, где проверка гипотез требует функциональной валидации нейронных мишеней в интактных цепях, особенно для мишеней ЦНС, участвующих в процессах обучения и памяти.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026