JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 3:50 мин • July 8th, 2025
Возьмем микрофлюидный чип, содержащий крысиные нейроны гиппокампа.
Чип имеет соматические и аксональные резервуары с отсеками, разделенными микробороздками, эффективно разделяющими нейроны и изолирующими соматическую и аксональную области.
Удалите среду и добавьте формальдегид. Инкубация для фиксации нейронов и сохранения их структуры.
Удалите излишки формальдегида и промойте буфером. Затем добавьте моющее средство, чтобы проникнуть в нейроны.
Замените моющее средство блокирующим раствором, чтобы заблокировать неспецифические места связывания.
Удалите блокирующий раствор и инкубируйте с первичными антителами, которые связываются со специфическими нейрональными синаптическими маркерами, которые являются интегральными мембранными белками на синаптических везикулах.
Удалите несвязанные антитела и промойте буфером.
Инкубируйте с меченными флуорофорами вторичными антителами, которые связываются с первичными антителами, нацеленными на синаптические маркеры.
Удалите несвязанные вторичные антитела и промойте буфером.
Под конфокальным микроскопом визуализируйте чип, чтобы визуализировать флуоресцентные нейронные синаптические маркеры.
Чтобы начать флуоресцентное иммуноокрашивание, удалите большую часть среды из чипа, сохраняя внутренние отсеки увлажненными. Сразу же добавьте 100 микролитров фиксирующего раствора в верхние лунки аксонального и соматического отделов.
Через одну минуту добавьте в донные лунки 100 микролитров раствора для фиксации, и зафиксируйте ячейки на 30 минут при комнатной температуре. Удалите большую часть раствора из лунок, и сразу же добавьте по 150 микролитров PBS в каждую из верхних лунок аксонального и соматического отделов. Подождите две минуты, пока PBS потечет в нижние лунки, затем удалите PBS и промойте лунки еще дважды, используя тот же процесс.
После последней промывки удалите большую часть PBS из лунок чипа, и сразу же добавьте по 150 микролитров PBS с 0,25% Triton X-100 в каждую из верхних лунок аксонального и соматического компартментов.
Подождите 15 минут, а затем удалите большую часть жидкости из лунок. Сразу же добавьте по 150 микролитров блокирующего раствора в каждую из верхних лунок аксонального и соматического отделов. Через 15 минут удалите большую часть жидкости из лунок, и сразу же добавьте по 100 микролитров раствора первичного антитела в каждую из верхних лунок аксонального и соматического компартментов.
Накройте чип, чтобы свести к минимуму испарение, и инкубируйте клетки в первичном антителе в течение одного часа при комнатной температуре. Далее промойте чип, удалив большую часть раствора, и сразу же добавив по 150 микролитров PBS в каждую из верхних лунок аксонального и соматического компартментов. Через пять минут извлеките PBS из обеих лунок, и повторите полоскание еще два раза.
Теперь удалите большую часть жидкости из лунок, и сразу же добавьте по 100 микролитров вторичного антитела в PBS в каждую из верхних лунок аксонального и соматического компартментов. Накройте чип крышкой, чтобы свести к минимуму испарение, и инкубируйте чипс в течение одного часа при комнатной температуре. Как было показано ранее, промойте чипсу три раза с помощью PBS. Затем смонтируйте и изобразите микросхемы, как описано в прилагаемом текстовом протоколе.
В данной статье описывается метод флуоресцентного иммуноокрашивания нейронов гиппокампа крысы с использованием микрофлюидного чипа. Процесс включает фиксацию нейронов, их пермеабилизацию и применение антител для визуализации синаптических маркеров.
Данный метод обеспечивает точный пространственный анализ субкомпартментов нейронов, что способствует валидации мишеней в моделях нейродегенеративных заболеваний. Путем изоляции экспрессии синаптических маркеров в аксонах по сравнению с сомами он позволяет снизить механистические риски для программ по поиску лекарственных средств, воздействующих на ЦНС. Микрофлюидный формат повышает воспроизводимость и масштабируемость при разработке анализов на ранних этапах поиска.
Данный метод применяется на этапе предварительного поиска для валидации нейрональных мишеней перед оптимизацией соединений-лидеров, что особенно актуально для показаний ЦНС, где субклеточная локализация позволяет прогнозировать функциональные результаты.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 22 августа 2026