Индукция инсульта белого вещества на мышиной модели с помощью ингибитора оксида азота

0 просмотров5:15 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с обездвиженной мыши в стереотаксической рамке с обнаженным черепом.

Отметьте брегму, затем просверлите отверстие, начинающееся сзади у брегмы и простирающееся спереди, чуть левее средней линии.

Удалите слои ткани, чтобы обнажить миелинизированную кору головного мозга, богатую аксонами, и нанесите капли солевого раствора, чтобы предотвратить высыхание тканей.

Прикрепите пипетку, наполненную ингибитором оксида азота, к кронштейну инжектора, который расположен под углом для точного впрыска.

Отрегулируйте стереотаксические координаты и введите ингибитор в белое вещество коры головного мозга, ненадолго удерживая пипетку, чтобы предотвратить обратный поток.

Втяните и повторите впрыск по другим координатам.

Позже заделайте отверстие и закройте надрез клеем.

Ингибиторы связываются с ферментами, продуцирующими оксид азота в эндотелиальных клетках кровеносных сосудов, ингибируя выработку оксида азота и сужая кровеносные сосуды.

Это сужение препятствует кровотоку, что приводит к повреждению нейронов и образованию поражений, развивая инсульт белого вещества.

Начните с прикрепления стеклянной пипетки к трубке, подключенной к вакуумной линии. Вставьте вытянутый конец в раствор L-Nio или флуоресцентный индикатор L-Nio plus. Запустите вакуум и применяйте всасывание до тех пор, пока не заполнится не менее 2 миллиметров от 0,5 миллиметра диаметра пипетки.

Отложите наполненную пипетку в сторону. Затем поместите мышь в стереотаксический аппарат, оснащенный стереотаксическим микроскопом. После обезболивания и подготовки мыши к операции в соответствии с утвержденными процедурами проверьте глубину анестезии, ущипнув палец ноги. Ответа быть не должно.

Далее отрегулируйте руку впрыска на 36 градусов. Прикрепите стеклянный держатель для пипеток к дистальному концу системы впрыска под низким давлением и прикрепите его к кронштейну для впрыска. Сделав разрез по средней линии кожи головы на 1,5 сантиметра, чтобы обнажить череп, высушите поверхность черепа ватным тампоном.

Затем, глядя в стереотаксический микроскоп с увеличением от 1 до 3X, используйте микроточечный инструмент для удаления любых вышележащих надкостничных тканей. Отметьте брегму тонким маркером, затем с помощью хирургического сверла, оснащенного хирургическим сверлом с тонким наконечником, просверлите эллиптическую краниотомию диаметром 2 миллиметра, начинающуюся сзади на брегме и простирающуюся спереди чуть левее средней линии.

Удалите костные фрагменты и вышележащие мягкие ткани, чтобы можно было визуализировать кору головного мозга. Поддерживайте поверхность коры головного мозга во влажном состоянии, периодически нанося капли стерильного физиологического раствора. Затем прикрепите наполненную пипетку к кронштейну инжектора. Совместите дистальный конец пипетки с брегмой и обнулите стереотаксические координаты.

Переместите пипетку к первой точке инъекции, используя передние, задние и медиальные латеральные координаты, перечисленные в таблице 1. Затем переместите пипетку на поверхность коры головного мозга и обнулите дорсальное вентральное измерение. Медленно опустите пипетку до дорсальной вентральной координаты.

Убедитесь, что увеличение стереотаксического микроскопа установлено на 3X и что откалиброванная сетка может быть четко видна. Просмотрите расположенную под углом пипетку сбоку, чтобы мениск воздушной жидкости имел сагиттальный обзор. Мениск должен находиться в одной и той же фокальной плоскости как внутренней, так и внешней стенки пипетки.

Теперь, используя систему впрыска низкого объема, установленную на 20 фунтов на квадратный дюйм для 20-миллисекундных импульсов, введите 100 нанолитров L-Nio в мозг. После введения всего объема подождите 5 минут, чтобы предотвратить обратный поток вверх по дорожке пипетки. Затем извлеките пипетку и повторите процедуру инъекции во втором и третьем наборе координат, приведенных в таблице 1.

После заключительной инъекции извлеките пипетку и поместите достаточное количество костного воска, чтобы заполнить место трепанации черепа. Наконец, приблизьтесь к краям раны на коже головы и перевяжите дермальным клеем.

10:05

DTI из зрительного пути - белое вещество урочища и поражения головного мозга

Похожие видео

0 Просмотры

08:25

Капсульная Инфаркт Описанный Моделирование Использование фототромботического Техника

Похожие видео

0 Просмотры

09:41

Инъекция гидрогелевых биоматериальных каркасов в мозг после инсульта

Похожие видео

0 Просмотры

09:40

Мыши Модель внутрипросветного MCAO: церебральный Оценка инфаркта на Cresyl Окрашивание Фиолетовый

Похожие видео

0 Просмотры

02:42

Индуцирование тромботического инсульта с помощью гипоксии и ишемии на мышиной модели

Похожие видео

0 Просмотры

08:14

Моделирование Ход у мышей: Постоянный Коагуляция артерии Дистальный средней мозговой

Похожие видео

0 Просмотры

08:36

Прикосновение Универсальный мышиной модели подкорковых белого вещества для изучения дегенерации аксонов и белого вещества нейробиологии

Похожие видео

0 Просмотры

09:08

Индукционная ишемического инсульта и ишемии-реперфузии у мышей с помощью средней артерии Occlusion Техника и визуализация площади инфаркта

Похожие видео

0 Просмотры

06:59

Окклюзии средней мозговой артерии, позволяя реперфузии через ремонт общей сонной артерии у мышей

Похожие видео

0 Просмотры

07:26

Моделирование инсульта у мышей: транзиторная окклюзия средней мозговой артерии через наружную сонную артерию

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026