JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 5:15 мин • July 8th, 2025
Начните с обездвиженной мыши в стереотаксической рамке с обнаженным черепом.
Отметьте брегму, затем просверлите отверстие, начинающееся сзади у брегмы и простирающееся спереди, чуть левее средней линии.
Удалите слои ткани, чтобы обнажить миелинизированную кору головного мозга, богатую аксонами, и нанесите капли солевого раствора, чтобы предотвратить высыхание тканей.
Прикрепите пипетку, наполненную ингибитором оксида азота, к кронштейну инжектора, который расположен под углом для точного впрыска.
Отрегулируйте стереотаксические координаты и введите ингибитор в белое вещество коры головного мозга, ненадолго удерживая пипетку, чтобы предотвратить обратный поток.
Втяните и повторите впрыск по другим координатам.
Позже заделайте отверстие и закройте надрез клеем.
Ингибиторы связываются с ферментами, продуцирующими оксид азота в эндотелиальных клетках кровеносных сосудов, ингибируя выработку оксида азота и сужая кровеносные сосуды.
Это сужение препятствует кровотоку, что приводит к повреждению нейронов и образованию поражений, развивая инсульт белого вещества.
Начните с прикрепления стеклянной пипетки к трубке, подключенной к вакуумной линии. Вставьте вытянутый конец в раствор L-Nio или флуоресцентный индикатор L-Nio plus. Запустите вакуум и применяйте всасывание до тех пор, пока не заполнится не менее 2 миллиметров от 0,5 миллиметра диаметра пипетки.
Отложите наполненную пипетку в сторону. Затем поместите мышь в стереотаксический аппарат, оснащенный стереотаксическим микроскопом. После обезболивания и подготовки мыши к операции в соответствии с утвержденными процедурами проверьте глубину анестезии, ущипнув палец ноги. Ответа быть не должно.
Далее отрегулируйте руку впрыска на 36 градусов. Прикрепите стеклянный держатель для пипеток к дистальному концу системы впрыска под низким давлением и прикрепите его к кронштейну для впрыска. Сделав разрез по средней линии кожи головы на 1,5 сантиметра, чтобы обнажить череп, высушите поверхность черепа ватным тампоном.
Затем, глядя в стереотаксический микроскоп с увеличением от 1 до 3X, используйте микроточечный инструмент для удаления любых вышележащих надкостничных тканей. Отметьте брегму тонким маркером, затем с помощью хирургического сверла, оснащенного хирургическим сверлом с тонким наконечником, просверлите эллиптическую краниотомию диаметром 2 миллиметра, начинающуюся сзади на брегме и простирающуюся спереди чуть левее средней линии.
Удалите костные фрагменты и вышележащие мягкие ткани, чтобы можно было визуализировать кору головного мозга. Поддерживайте поверхность коры головного мозга во влажном состоянии, периодически нанося капли стерильного физиологического раствора. Затем прикрепите наполненную пипетку к кронштейну инжектора. Совместите дистальный конец пипетки с брегмой и обнулите стереотаксические координаты.
Переместите пипетку к первой точке инъекции, используя передние, задние и медиальные латеральные координаты, перечисленные в таблице 1. Затем переместите пипетку на поверхность коры головного мозга и обнулите дорсальное вентральное измерение. Медленно опустите пипетку до дорсальной вентральной координаты.
Убедитесь, что увеличение стереотаксического микроскопа установлено на 3X и что откалиброванная сетка может быть четко видна. Просмотрите расположенную под углом пипетку сбоку, чтобы мениск воздушной жидкости имел сагиттальный обзор. Мениск должен находиться в одной и той же фокальной плоскости как внутренней, так и внешней стенки пипетки.
Теперь, используя систему впрыска низкого объема, установленную на 20 фунтов на квадратный дюйм для 20-миллисекундных импульсов, введите 100 нанолитров L-Nio в мозг. После введения всего объема подождите 5 минут, чтобы предотвратить обратный поток вверх по дорожке пипетки. Затем извлеките пипетку и повторите процедуру инъекции во втором и третьем наборе координат, приведенных в таблице 1.
После заключительной инъекции извлеките пипетку и поместите достаточное количество костного воска, чтобы заполнить место трепанации черепа. Наконец, приблизьтесь к краям раны на коже головы и перевяжите дермальным клеем.
В данной статье подробно описана хирургическая процедура индукции инсульта белого вещества на модели анестезированных мышей. Метод заключается в точном введении ингибитора оксида азота в кору головного мозга, что приводит к повреждению нейронов.
Эта модель инсульта белого вещества у мышей позволяет проводить механистические исследования нейроваскулярной дисфункции и аксональной дегенерации, что способствует валидации мишеней в доклинических исследованиях инсульта. Путем индукции очаговой ишемии посредством ингибирования оксида азота данная модель создает воспроизводимую систему для оценки терапевтических кандидатов, модулирующих церебральный кровоток или защищающих целостность белого вещества. Такой подход помогает снизить риски на ранних этапах разработки, связывая молекулярные вмешательства со структурными и функциональными исходами в системе, релевантной данному заболеванию.
Данная модель вписывается в континуум разработки лекарственных средств — от валидации мишени и идентификации ведущих соединений до исследования доклинической эффективности, в частности для соединений, воздействующих на нейроваскулярное сопряжение или аксональную защиту.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026