JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 4:37 мин • April 28th, 2025
Начнем с мозговой ткани трансгенной мыши с гиперэкспрессией мутировавшего α-синуклеина, неправильно свернутого нейронного белка, связанного с нейродегенеративным заболеванием, погруженного в буфер с высоким содержанием соли.
Гомогенизируйте ткань с помощью большого пестика, а затем маленького пестика, чтобы разрушить ткань и высвободить внутриклеточные белки, в том числе α-синуклеин.
Переложите гомогенат в пробирку и центрифугу. Соберите белковосодержащую надосадочную жидкость и разведите ее буфером.
Добавьте эту надосадочную жидкость в микропланшет, покрытый α-синуклеин-специфическими антителами, предварительно обработанный блокатором для предотвращения неспецифического связывания.
Инкубируйте с перемешиванием, позволяя нормальному и мутировавшему α-синуклеину связываться.
Вымойте планшет, затем добавьте антитела для обнаружения, специфичные к мутировавшему α-синуклеину, и инкубируйте с перемешиванием.
Снова промойте и добавьте антитела, сцепленные с ферментами, с последующей инкубацией при перемешивании.
Добавьте субстрат и выдерживайте в темноте под перемешиванием. Субстрат вступает в реакцию с ферментом, вызывая изменение цвета.
Остановите реакцию с кислотой и измерьте абсорбцию для количественного определения мутировавшего α-синуклеина.
Чтобы получить гомогенаты мозга, добавьте достаточный объем буфера HS в рассеченные области мозга, чтобы достичь ожидаемого процента гомогената, как показано в таблице ниже. С помощью измельчителя для тканей, состоящего из трубки из боросиликатного стекла и двух пестиков, А и В, налейте в трубку область мозга, которую нужно измельчить. А затем с помощью пестика А гомогенизируйте ткань 10 раз, чтобы диссоциировать ее.
Затем переключитесь на пестик B и гомогенизируйте еще 20 раз. С помощью переводной пипетки перенесите гомогенат в пробирку объемом 1,5 миллилитра, повторив гомогенизацию с оставшимися образцами мозга. Центрифугируйте образцы при 1000 г в течение пяти минут, при четырех градусах Цельсия. А затем соберите надосадочную жидкость и разделите ее на аликвоты по 200 микролитров.
С помощью 100 микролитров раствора для покрытия антител покройте лунки 96 луночных микропланшетов и инкубируйте при температуре четыре градуса Цельсия в течение ночи. На следующий день добавьте в лунки 300 микролитров PBST и с помощью машины для мытья тарелок вымойте пластины пять раз. Работая при комнатной температуре, в дальнейшем добавьте 200 микролитров блокирующего буфера T20 PBS в каждую лунку и встряхивайте пластины при 150 об/мин в течение одного часа, прежде чем использовать PBST для пятикратной промывки пластин.
Используя PBST, 1% BSA, разбавьте гомогенаты мозга, следуя указаниям, перечисленным здесь. И в каждую лунку добавляем по 100 микролитров. Затем инкубируйте при комнатной температуре и 150 об/мин в течение двух часов, прежде чем использовать PBST для пятикратной промывки пластин.
После окончательной промывки добавьте необходимые антитела для обнаружения альфа-синуклеина, разведенные в PBST и 1% BSA, как указано в таблице 2 текстового протокола. Инкубируйте при комнатной температуре и 150 об/мин в течение одного часа, прежде чем промыть пластины пять раз, как и раньше.
Затем добавьте конъюгаты против мышей или против кроликов IGG HRP, разведенные до 1-8000 в PBST, 1% BSA. И инкубировать при 150 оборотах в минуту в течение одного часа, прежде чем мыть пластины пять раз. Затем добавьте в каждую лунку по 100 микролитров раствора ТМБ, и выдерживайте при 150 оборотах в минуту в течение 15 минут в темноте. Остановите реакцию, добавив 100 микролитров одной обычной соляной кислоты на лунку. Затем с помощью считывателя микропланшетов измерьте поглощение на 450 нанометрах.
В данной статье представлен подробный протокол выявления ассоциированного с заболеванием α-синуклеина в тканях мозга трансгенных мышей с гиперэкспрессией мутировавшего человеческого α-синуклеина A53T с использованием усовершенствованного метода ELISA. Данная процедура позволяет проводить чувствительный количественный анализ как нормальных, так и мутировавших форм α-синуклеина, что имеет важное значение для исследований нейродегенеративных заболеваний.
Количественное определение α-синуклеина, связанного с заболеванием, с помощью метода ELISA обеспечивает надежную валидацию мишени и снижение механистических рисков в исследованиях нейродегенеративных заболеваний. Данный рабочий процесс повышает прогностическую уверенность на ранних этапах открытия и в точках перехода к доклиническим исследованиям, что позволяет обосновать решения по портфелю терапевтических программ, направленных на лечение протеинопатий. Надежное измерение уровней мутировавшего α-синуклеина в трансгенных моделях обеспечивает трансляционную непрерывность от этапа открытия до доклинической валидации.
Данный метод детекции на основе ИФА интегрируется в континуум от этапа поиска до доклинических исследований в рамках программ по изучению нейродегенеративных заболеваний.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026