JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 2:38 мин • April 28th, 2025
Закрепите артериолярную эндотелиальную трубку, собранную из мозга мыши, в камере с непрерывным буферным потоком.
Поместите камеру в записывающую установку.
Введите чувствительный к кальцию флуоресцентный краситель. Инкубируйте, чтобы дать возможность клеткам усвоить краситель.
Умойтесь, чтобы удалить любой невнутренний краситель.
Вставьте электрод в эндотелиальную клетку и зарегистрируйте потенциал мембраны покоя.
Увеличьте температуру ванны до физиологической температуры, чтобы облегчить внутриклеточное связывание кальция с красителем.
Возбуждайте краситель и измеряйте флуоресценцию для количественного определения исходного уровня кальция в клетках.
Введите препарат, который связывается со специфическими рецепторами, связанными с G-белком, на эндотелиальных клетках, инициируя сигнальный каскад
.Этот каскад высвобождает ионы кальция из эндоплазматического ретикулума в цитоплазму, усиливая связывание кальция с красителем и флуоресценцию.
Повышенный уровень кальция в цитоплазме также активирует калиевые каналы, способствуя оттоку ионов калия и уменьшая мембранный потенциал.
Запишите данные.
Повышенная флуоресценция и снижение мембранного потенциала указывают на функциональную эндотелиальную трубку.
Чтобы измерить потенциал эндотелиальной мембраны, глядя через четырехкратный объектив, осторожно поместите острый кончик электрода прямо над клеткой артериальной эндотелиальной трубки в текущий физиологический раствор соли с помощью микроманипулятора. Постепенно увеличивайте увеличение до 400 раз и при необходимости перемещайте наконечник электрода. С помощью микроманипулятора аккуратно введите наконечник острого электрода в одну из ячеек эндотелиальной трубки, и начните запись ВМ с помощью электрометра.
Как только эндотелиальная ВМ в состоянии покоя стабилизируется от минус 30 до минус 40 милливольт, применяйте желаемые фармакологические средства для каждой экспериментальной цели. Загрузите в эндотелиальную трубку флуоресцентный трекер для плазматической мембраны или желаемой органеллы при температуре 37 градусов Цельсия на 15–30 минут. Промойте клетки свежим раствором физиологической соли для суперфузии и визуализируйте живые клетки под микроскопом на длине волны возбуждения соответствующих красителей.
В данной статье описывается метод регистрации потенциала покоя мембран эндотелиальных клеток артериол, выделенных из головного мозга мыши. Метод предполагает использование кальций-чувствительных флуоресцентных красителей для измерения уровней внутриклеточного кальция и оценки функционального состояния эндотелиальной трубки.
Количественный анализ динамики кальция и мембранного потенциала в изолированном эндотелии артериол мыши представляет собой надежную платформу для изучения механизмов сосудистой сигнализации, имеющих значение для валидации мишеней на ранних этапах. Данный подход позволяет с высокой степенью уверенности прогнозировать функциональные ответы эндотелия на фармакологическую модуляцию, что способствует принятию обоснованных решений с учетом рисков в области биологии сосудов и при разработке портфелей нейроваскулярных препаратов.
Данный метод интегрируется в общий процесс поиска и разработки: от ранней валидации мишени до идентификации соединений-лидеров и доклинической оценки сосудистой функции.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026