$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Возьмите предметное стекло, содержащее неподвижные и пермеабилизированные криосекции корональной ткани крысы.
Обведите участки гидрофобной ручкой, чтобы создать контролируемую среду для окрашивания.
Переместите срезы в камеру влажности, чтобы предотвратить высыхание реагентов и тканей на последующих этапах.
Обработайте срезы сывороточными белками для блокирования неспецифических сайтов связывания.
Смойте буфером, чтобы удалить излишки сывороточных белков.
Инкубируйте с первичными антителами, нацеленными на определенные белки микроглии и нейронов.
Промойте буфером, чтобы удалить несвязанные первичные антитела.
Инкубируйте с флуорофор-конъюгированными вторичными антителами, которые связываются с первичными антителами.
Промойте буфером, чтобы удалить несвязанные вторичные антитела. Затем смойте водой двойной дистилляции.
Нанесите водный монтажный материал для защиты флуоресцентного сигнала, установите покровное стекло и загерметизируйте его.
Визуализируйте срезы под флуоресцентным микроскопом, чтобы визуализировать иммуномеченую микроглию и нейроны.
Высушите края предметных стекол и сделайте водоотталкивающую границу по краю предметного стекла с помощью ручки, чтобы обеспечить равномерное покрытие жидкости и уменьшить эффект краев. Далее заблокируйте разделы, добавив на каждый слайд по 300 микролитров сыворотки в PBS. Сыворотка должна быть из того вида, в котором вырабатываются вторичные антитела. В этом случае использовалась ослиная сыворотка.
Убедитесь, что блокирующий раствор распространяется до края предметного стекла и полностью покрывает ткань, чтобы избежать неравномерного окрашивания. Поместите предметные стекла в камеру с влажностью для инкубации при комнатной температуре в течение одного часа. Во время инкубации подготовьте первичные антитела. Разбавьте антитело IBA1, 1 к 5000 и антитело паннейронов, от 1 до 500 в смеси 1% сыворотки осла в PBS.
Удалите блокирующий раствор и добавьте 300 микролитров раствора антитела, который содержит оба интересующих антитела. Поместите все предметные стекла в камеру для влажности и инкубируйте их в течение ночи при температуре 4 градуса Цельсия. На следующее утро вымойте слайды три раза в PBS по пять минут каждый.
Приготовьте флуоресцентную смесь вторичных антител, разведя их оба в соотношении 1 к 250, в 1% ослиной сыворотке в PBS. Добавьте по 300 микролитров смеси на каждое предметное стекло. И поместите горки в легкую, плотную влажностную камеру на 60 минут при комнатной температуре. Затем вымойте горки трижды в PBS по пять минут каждая. И, наконец, промойте их в двойной дистиллированной воде. Защищайте горки от света во время стирки в PBS.
Добавьте несколько капель водной монтажной среды, которая помогает сохранить интенсивность сигнала флуоресценции на каждом слайде. Затем накройте предметное стекло и удалите оставшиеся пузырьки воздуха с помощью аппликатора с ватным наконечником. Чтобы запечатать монтажный материал на направляющих и предотвратить высыхание секций, покройте края лаком для ногтей. Предметные стекла оставляют сохнуть в горизонтальном виде в течение часа в легкой защищенной коробке, а затем хранят в легком, плотном контейнере, завернутом в фольгу при температуре 4 градуса по Цельсию.