$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с первичных гипоталамических нейронов мыши дикого типа и CCR5-нокаута, культивируемых на покрытых поли-D-лизином покровных листах в многолуночной пластине.
Эти нейроны экспрессируют зеленый флуоресцентный транспортер глюкозы-4, помеченный белком (GFP-GLUT4) в цитоплазме.
Перенесите покровные стекла на стеклянные слайды и аккуратно сотрите лишнюю среду, чтобы обеспечить стабильность во время получения изображения.
Поместите предметное стекло на предметный столик деконволюционного микроскопа покровным стеклом вниз.
Визуализируйте нейроны под ярким освещением, затем последовательно обработайте их хемокином CCL5 и инсулином.
Переключитесь на флуоресцентное освещение для идентификации нейронов-мишеней, экспрессирующих GFP-GLUT4, и настройте параметры визуализации для захвата живых флуоресцентных изображений.
В нейронах дикого типа инсулин и CCL5 связываются с рецептором инсулина и CCR5 соответственно, активируя нисходящие сигнальные пути, которые управляют транслокацией мембраны GFP-GLUT4.
В нейронах с нокаутом CCR5 CCL5 не связывается, что приводит к снижению транслокации GFP-GLUT4.
Захватите изображения и примените алгоритм деконволюции для уменьшения расфокусированного света, повышая четкость изображения и разрешение.
Чтобы подготовить клетки к визуализации в реальном времени, осторожно снимите покровные стекла с нейронами с помощью щипцов и с осторожностью поместите их на предметное стекло. Затем удалите излишки среды деликатными рабочими салфетками, сложив их вдвое и аккуратно положив на покровное стекло, не перемещая его.
Важно удалить излишки среды, чтобы предотвратить ненужное движение покровного стекла.
Далее обработайте выбранные образцы клеток CCL5 в дозе 10 нанограмм на миллилитр или инсулином в дозе 10 единиц на миллилитр в течение одной минуты. После этого добавьте 1,5 микролитра разведенного инсулина по краю покровных стекол. Затем добавьте иммерсионное масло на объектив с 60-кратным увеличением 1,52 NA.
После этого поместите покровные стекла на предметный столик деконволюционного микроскопа так, чтобы они были направлены вниз и надежно закреплены. Используйте светлопольное или флуоресцентное освещение для идентификации целевых клеток. После этого отрегулируйте фокус до тех пор, пока целевые клетки не станут четко видны. Не перемещайте линзу объектива за пределы защитного стекла, чтобы избежать ненужных царапин.
Далее определите GFP-GLUT4 по сигналу GFP. Затем определите нужные целевые ячейки для получения изображения. Затем установите соответствующие экспериментальные параметры для каждой клетки-мишени, включая количество пикселей, длину волны возбуждения, процент пропускания, время экспозиции, толщину стека, временной интервал и общее время визуализации. Отрегулируйте параметр экспозиции примерно до 2 000–3 000 отсчетов, чтобы достичь максимальной интенсивности пикселей.
Чтобы свести к минимуму флуоресцентное фотообесцвечивание, максимально уменьшите процент возбуждения светопропускания, сохраняя при этом время экспозиции менее 1 секунды. Установите верхний и нижний предел z-стека на каждой целевой ячейке, перемещая предметный столик микроскопа до тех пор, пока верхняя и нижняя части целевой ячейки не окажутся немного не в фокусе.