JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 3:13 мин • May 29th, 2025
Начнем с трансгенной мыши, заключенной в стереотаксическую рамку, с черепным окном, имплантированным над ее зрительной корой.
Мышь экспрессирует EGFP в микроглии и R-CaMP, красный флуоресцентный индикатор кальция, в нейронах зрительной коры.
Поместите мышь под двухфотонный микроскоп и отрегулируйте линзу объектива так, чтобы она фокусировалась на поверхности мозга.
Переместите мышь со стереотаксической рамкой от линзы объектива и прикрепите затеняющее устройство.
Заполните затеняющее устройство водой и переместите мышь под микроскоп.
Накройте линзу черной фольгой.
Затеняющее устройство и фольга блокируют внешние световые помехи, обеспечивая точное изображение.
Поместите ЖК-монитор перед глазом мыши, чтобы обеспечить визуальную стимуляцию.
Установите параметры изображения и начните визуализацию.
Визуальная стимуляция запускает возбуждение нейронов, что приводит к притоку кальция и увеличению флуоресценции R-CaMP.
Между тем, микроглия втягивает свои отростки, взаимодействуя с активированными нейронами, что наблюдается с помощью визуализации в реальном времени.
Чтобы установить специально изготовленное затеняющее устройство и ЖК-монитор для визуальной стимуляции, сначала расположите линзу так, чтобы она фокусировалась на поверхности мозга. А затем установите это положение объектива в исходное положение по оси Z. Сохраняйте координаты x, y постоянными и поднимите линзу объектива. Снимите мышь и стереотаксический инструмент с объектива. Прикрепите затеняющее устройство к верхней части пластины с помощью силикона, убедившись, что пространство между пластиной и затеняющим устройством хорошо герметизировано.
Наполните затеняющее устройство дистиллированной водой. Затем зафиксируйте мышь со стереотаксической рамкой под линзой объектива. Осторожно сбросьте фокальную плоскость на поверхности мозга, проверяя глубину линзы объектива. Накройте линзу объектива черной алюминиевой фольгой, чтобы избежать попадания света на ЖК-монитор. Установите 10-дюймовый ЖК-монитор на расстоянии 12,5 см перед глазами мыши, чтобы отображать визуальные стимулы.
Настройте фильтры сбора флуоресцентного излучения для EGFP и RCaMP, а также длину волны возбуждения с точностью до 1000 нанометров. Получение изображений с пространственным разрешением 0,25 мкм на пиксель. Найдите область визуализации, где RCaMP-положительные нейроны и EGFP-положительная микроглия могут быть одновременно визуализированы в слое 2/3.
Получение изображений с частотой кадров 30 Гц. Одновременно с получением изображения представляйте мышь дрейфующие решетчатые визуальные стимулы в 12 направлениях в 6 ориентациях от 0 до 150 градусов с шагом 30 градусов.
В данном исследовании представлен метод визуализации активности нейронов и микроглии в зрительной коре трансгенных мышей с помощью двухфотонной микроскопии. Этот подход позволяет наблюдать за динамикой кальция в нейронах и поведением микроглии в ответ на зрительные стимулы.
Данный метод позволяет в режиме реального времени наблюдать за взаимодействиями между микроглией и нейронами у животных в состоянии бодрствования, предоставляя физиологически релевантную систему для изучения нейроиммунных механизмов. Он способствует валидации мишеней в моделях нейровоспалительных и нейродегенеративных заболеваний, фиксируя динамические клеточные ответы на стимулы. Этот подход повышает прогностическую достоверность при доклиническом скрининге, связывая активацию нейронов с поведением микроглии в интактных цепях.
Данный метод вписывается в континуум процесса разработки — от проверки гипотезы о мишени до оптимизации ведущих соединений, что особенно актуально для нейроиммуномодулирующих соединений, где критически важна ясность механизмов действия.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 22 августа 2026