$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Возьмите покровный лист с культурой вентральных нейронов среднего мозга, полученных из эмбрионов мышей.
Клетки заражаются вирусным вектором для экспрессии показателя кальция.
Перенесите покровное стекло в записывающую камеру конфокального микроскопа, перфузированного с записывающим буфером.
Используя видимый свет, определите область, содержащую несколько нейронов, затем переключитесь на флуоресцентную визуализацию.
При низком внутриклеточном уровне кальция показатель остается несвязанным, проявляя низкую интенсивность флуоресценции.
Внутренние свойства нейронов генерируют потенциалы спонтанного действия, запуская открытие потенциал-зависимых кальциевых каналов и обеспечение притока кальция.
Избыток кальция связывается с индикатором, вызывая конформационные изменения, которые увеличивают интенсивность флуоресценции.
Запишите интенсивность флуоресценции с течением времени, чтобы отследить спонтанную активность кальция.
Введите нейромедиатор в высокой концентрации, который связывается с рецепторами на нейронах, генерируя потенциалы непрерывного действия.
Устойчивая активация потенциал-зависимых кальциевых каналов продлевает приток кальция, вызывая устойчивое увеличение интенсивности флуоресценции.
Приготовьте 1 литр записывающего буфера HEPES, 200 миллилитров 20 микромольного глутаматного записывающего буфера и 200 миллилитров 10 микромолярного записывающего буфера NBQX в соответствии с указаниями в рукописи. Наполните стерильную миллиметровую чашку Петри 3 миллилитровыми записывающими буферами.
Возьмите чашку Петри с зараженными культурами из инкубатора, затем осторожно захватите край одного покровного стекла щипцами с тонким наконечником и перенесите его в чашку с записывающим буфером. Поместите оставшуюся покровную пленку в среду обратно в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия и транспортируйте чашку с записывающим буфером к конфокальному микроскопу.
Запустите программное обеспечение для работы с изображениями. Пока он инициализируется, запустите перистальтическую помпу и поместите линию в буфер записи. Затем откалибруйте расход до 2 миллилитров в минуту. Перенесите инфицированный покровный лист из чашки Петри в ванночку для записи с помощью тонких щипцов. Используя объектив с 10-кратным погружением в воду и светлый свет, найдите плоскость фокусировки и найдите область с высокой плотностью тел нейронных клеток. Затем переключитесь на объектив 40X и перефокусируйте образец.
Выберите и примените Alexa Flour 488 в окне списка красителей. Чтобы предотвратить передержку и фотообесцвечивание флуорофоров, начните с низких настроек HV и мощности лазера. Для канала Alexa Fluor 488 установите HV на 500, усиление на 1x и смещение на ноль. Установите мощность на 5% для лазерной линии 488, увеличьте размер точечного отверстия до 300 микрометров и используйте опцию сканирования фокуса x2 для оптимальной настройки сигналов излучения до уровней ниже насыщения.
Затем можно отрегулировать настройки для оптимальной видимости каждого канала. После того, как настройки микроскопа будут оптимизированы, переместите предметный столик, чтобы найти область с несколькими клетками, демонстрирующими спонтанные изменения флуоресценции GCaMP6f, и сфокусируйтесь на нужной плоскости для визуализации. С помощью инструмента «Вырезать прямоугольник» можно обрезать кадр изображения до размера, обеспечивающего интервал кадров чуть менее одной секунды. Установите для окна интервала значение 1,0, а для окна Num — значение 600.
Чтобы снять видеоролик серии t, выберите параметр времени, а затем используйте параметр сканирования XYt, чтобы начать съемку. Следите за индикатором выполнения визуализации и переместите линию из записывающего буфера HEPES в записывающий буфер с глутаматом 20 микромоль в соответствующий момент времени. Когда съемка будет завершена, нажмите кнопку «Серия завершена» и сохраните готовый видеоролик серии t. Продолжайте перфузировать глутамат в течение еще пяти минут, чтобы культивируемые нейроны подвергались воздействию глутамата в общей сложности 10 минут.
Повторите этот процесс для каждого покровного листа, который будет изображен. Можно увидеть следы кальция в телах нейрональных клеток сразу после эксперимента. Используйте инструмент эллипса, чтобы нарисовать нужное количество ROI вокруг нейрональной сомы, и используйте кнопку анализа рядов для визуализации трасс. После дополнительного пятиминутного воздействия глутамата извлеките покровную салфетку из ванны тонкими щипцами и поместите ее обратно в чашку Петри с записывающим буфером до тех пор, пока вся визуализация не будет завершена.