$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните со среза мозжечка, полученного из постнатального мозга детеныша крысы в многолуночном планшете, содержащем среду.
Удалите среду и инкубируйте срез в цитоплазматическом растворе флуоресцентного красителя, чтобы пометить гранулярные клетки (ГК).
Переложите ломтик на вставную мембрану Transwell и удалите излишки красителя.
Снимите вставку и заполните лунку носителем. Затем установите вставку на место и добавьте медиатор, чтобы покрыть ткань.
Инкубируйте, чтобы ткань прикрепилась к мембране вставки.
Перенесите планшет в инкубатор, прикрепленный к конфокальному макроскопу, и накройте пластину стеклянной крышкой.
Установите условия культивирования, инкубируйте ткань дальше, затем начните визуализацию.
При лазерном освещении меченые ГХ флуоресцируют.
Делайте покадровые снимки, чтобы визуализировать радиальную миграцию ГК через молекулярный слой мозжечка.
Используя программное обеспечение для обработки изображений, проанализируйте миграционное расстояние ГХ.
После нарезки образца с помощью усеченной белой ламповой пипетки перенесите его с небольшим количеством HBSS на шестилуночный планшет. Загрузите до трех ломтиков в каждую лунку. Далее, после опорожнения среды в каждую загруженную лунку, добавьте пять миллилитров загрузочного раствора, содержащего 10 микромоляров флуоресцентного красителя. Чтобы защитить образцы от света, накройте пластину фольгой. Затем поставьте пластину на мутатор, установленный на 35 оборотов в минуту. Дайте планшету поинкубироваться в течение 10 минут при комнатной температуре, чтобы краситель пометил клетки.
Теперь перенесите, как и раньше, срезы на мембрану трансвелл-вставки, которая имеет три микронных поры. Затем отсасывайте загрузочную среду, оставив только ломтики. Теперь снимите вкладыш и дольки, чтобы заполнить лунку 1,9 миллилитрами DMEM. Затем положите вкладыш обратно и добавьте еще 100 микролитров DMEM, чтобы покрыть ткани.
Инкубируйте этот препарат в течение двух часов, после чего будут видны гранулы клеток. Перенесите планшет без крышки в климатическую камеру с постоянным потоком газа на конфокальном макроскопе. Затем наденьте стеклянную крышку на пластину-вкладыш конфокального макроскопа. Для экспериментов с замедленной съемкой дайте клеткам инкубироваться в камере еще два часа, прежде чем продолжить.
Чтобы визуализировать мигрирующие гранулярные клетки в срезах ткани, осветите препарат светом с яркостью 488 нанометров и используйте 2-кратный сухой объектив. Обнаружение флуоресцентного излучения в диапазоне от 500 до 530 нанометров. Используя ImageJ, для каждого изображения фильма-интервальной съемки выполните проекцию стека Z в режиме стандартного отклонения.
Отрегулируйте уровни контрастности и яркости каждого изображения так, чтобы помеченные гранулярные ячейки были легко различимы. Теперь выберите плагин «Ручное отслеживание» в меню анализа частиц. Используйте плагин, чтобы щелкнуть по центральной точке каждого помеченного тела ячейки на протяжении всей последовательности изображений с интервальной съемкой. Затем экспортируйте необработанные данные отслеживания в электронную таблицу для дальнейшего анализа.
Реорганизуйте экспортированные необработанные данные отслеживания из ImageJ с помощью умного домашнего инструмента, который идентифицирует каждую ячейку и связанные с ней позиции. С помощью программы рассчитайте общее пройденное расстояние и среднюю скорость миграции для каждой клетки.