Юкстацеллюлярная запись и окрашивание для точного картирования нейронной активности у бодрствующей крысы

0 views • 2:54 min • June 18th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните со сдержанной, бодрствующей крысы в экспериментальной джиге, голова которой прочно закреплена на месте.

Откройте ранее имплантированную записывающую камеру и снимите силиконовое гелевое покрытие.

Очистите все отросшие ткани, чтобы получить доступ к мозгу.

Добавьте каплю солевого раствора для поддержания увлажненности.

Затем прикрепите к микроманипулятору предварительно заполненную записывающую пипетку, содержащую чикагский синий краситель.

Опустите пипетку в записывающую камеру до тех пор, пока она не достигнет целевой области мозга.

Пипетка вступает в контакт с нейроном и записывает сигналы от нейрона, не проникая в него.

Слушайте эти нейронные сигналы в виде слышимых щелчков, а затем подавайте электрические импульсы через пипетку.

Эти импульсы вводят краситель, прилегающий к нейрону, что позволяет точно окрашивать целевую область мозга.

Эти сопоставленные методы записи и окрашивания точно визуализируют место записи и позволяют точно сопоставить нейронную активность с анатомией мозга.

Поместите крысу в тканевый носок, а матерчатый носок переложите в жесткую трубку на соответствующий экспериментальный приспособление. Прикрепите удерживающую пластину головы на крысе к соответствующей детали на кондукторе. Далее наденьте гайку 832 на фиксирующий болт головки, который вживляется на крысу.

Затем вкрутите резьбовой стержень из нержавеющей стали к болту с головкой. После этого откройте камеру записи, и удалите силиконовый гель. Очистите трепанацию черепа с помощью тонких щипцов, если ткань в трепанации черепа снова выросла. При необходимости используйте изофлурановую анестезию во время этого процесса.

Далее присоедините пипетку к моторизованному микроманипулятору. Переместите пипетку в нужное место записи по передней, задней и медиальной боковым осям. Затем продвигайте пипетку вентрально через твердую мозговую оболочку до тех пор, пока она не окажется примерно на 500 микрометров дорсально к предполагаемому месту записи. Медленно продвигайте пипетку, прослушивая пиковые события на аудиомониторе с записанным усиленным напряжением. После выявления пиковых явлений продолжайте перемещать пипетку на расстояние от 0 до 100 микрометров до тех пор, пока положительные отклонения напряжения не превысят приблизительно 500 микровольт.

Чтобы пометить место записи, установите источник тока на отрицательные 4 микроампера с двухсекундными импульсами при 50% рабочем цикле. И пропускаем ток в течение четырех минут, чтобы ионофоретический впрыск Chicago Sky Blue через пипетку.

10:46

острый В Виво Электрофизиологические записи локальных полевых потенциалов и многоуровневой активности по пути гиперперспекции у анестезированных крыс

Related Videos

0 Views

09:58

Шприц инъекционные сетки электроники для стабильной хронической грызунов электрофизиологии

Related Videos

0 Views

05:45

Запись Крупномасштабные нейронных ансамблей с кремниевых зондов в наркозом крыса

Related Videos

0 Views

14:06

Подготовка Awake мыши для записи нервных реакций и инъекционных Трейсеры

Related Videos

0 Views

02:36

Запись in vivo внутриклеточных сигналов от одного нейрона

Related Videos

0 Views

04:42

Электрофизиологические записи активности мозга in vivo из нескольких участков у крыс

Related Videos

0 Views

03:13

Одновременная визуализация динамики микроглии и активности нейронов у бодрствующей мыши

Related Videos

0 Views

06:36

Ингибирование нейронной активности и ее выявление с помощью электрофизиологии у крысы

Related Videos

0 Views

10:36

Juxtasomal Biocytin Маркировка для изучения структуры-функции и отношение отдельных корковых нейронов

Related Videos

0 Views

08:41

Juxtacellular Мониторинг и локализация отдельных нейронов в подкорковых структурах головного мозга оповещения, глава выдержанные крыс

Related Videos

0 Views

Last updated: 18 July 2026