RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Начните с экспериментальной камеры, покрытой силиконовым эластомером, содержащей защищенную мышцу мыши, расположенную под конфокальным микроскопом.
Мышца погружается в физиологический раствор, содержащий ингибиторы, блокирующие мышечные сокращения.
Культя нерва, помеченная флуоресцентным кальциевым красителем, располагается внутри всасывающего электрода, который подключен к электрическому стимулятору.
В нервно-мышечном соединении периферический нерв соединяется с мышцей.
Подайте электрический раздражитель на нерв с помощью электрода. Это вызывает быстрый приток ионов кальция, которые связываются с внутриклеточным кальциевым красителем.
Осветите нервно-мышечное соединение, чтобы возбудить кальциевый краситель, заставляя его флуоресцировать.
Затем сделайте снимки с высоким разрешением, чтобы зафиксировать быстрые переходные процессы кальция в периферических нервных окончаниях.
Выберите интересующую область и измерьте интенсивность флуоресценции.
Быстрое увеличение интенсивности флуоресценции указывает на приток кальция в периферические нервные окончания, в то время как уменьшение отражает клиренс кальция.
Заполните перфузионную систему раствором Рингера, содержащим 10 микромолярных D-тубокураринов, и включите перфузионный аспиратор, чтобы начать перфузию. В программном обеспечении лазерного сканирующего конфокального микроскопа (LSCM) выберите электрофизиологию и режим сбора данных для настройки параметров изображения. В настройках меню Задание выберите Настройки триггера для запуска стимулятора с помощью синхроимпульса микроскопа и установите поле Триггер по выходу кадра в канал OUT 1.
Переключите режим сканирования на xyt с частотой сканирования 1 400 Гц. Коэффициент зума должен быть равен 6,1 при полностью открытом точечном отверстии. Убедитесь, что последовательный сквозной двунаправленный режим x включен. Затем установите минимальное время формирования кадра в 52 миллисекунды и соберите кадры в необработанное видео в 20 кадров. Установите длину волны возбуждения аргонового лазера на 488 нанометров с 8% выходной мощности.
Когда параметры установлены, нажмите кнопку Live Mode, чтобы получить предварительный просмотр нервных окончаний, загруженных красителем, в реальном времени. В режиме реального времени найдите область интереса, или ROI, чтобы получить наилучший фокус, затем сдвиньте задержку на стимуляторе на 2 миллисекунды меньше относительно предыдущего значения. И запустите программное обеспечение для сбора данных, чтобы получить 26 последовательностей, сдвинув каждую последовательность на две миллисекунды от предыдущей.
Related Videos
17:05
Related Videos
8K Views
08:42
Related Videos
5.2K Views
09:07
Related Videos
3.2K Views
02:48
Related Videos
371 Views
04:14
Related Videos
420 Views
03:18
Related Videos
390 Views
09:05
Related Videos
11.1K Views
08:42
Related Videos
8.1K Views
11:12
Related Videos
2.2K Views
10:43
Related Videos
4K Views