$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с химически фиксированных и проникающих мышечных волокон мышей, помещенных в лунки многолуночной пластины.
Инкубируйте в блокирующем растворе, чтобы свести к минимуму связывание неспецифических антител.
Добавьте первичные антитела, нацеленные на пресинаптический белок, экспрессируемый в нервно-мышечном соединении или NMJ.
Промойте буфером, чтобы удалить несвязанные антитела.
Инкубируйте с флуорофор-конъюгированными вторичными антителами, нацеленными на первичные антитела, и фторофор-конъюгированным нейротоксином, который связывается с постсинаптическими ацетилхолиновыми рецепторами.
Промойте буфером, чтобы удалить несвязанные реагенты.
Поместите волокна на предметное стекло с монтажным материалом, установите покровное стекло и закрепите цилиндрическими магнитами, чтобы выровнять волокна.
Начните визуализацию с помощью микроскопа confocal-STED.
При лазерном освещении меченые белки флуоресцируют.
Конфокальная микроскопия не позволяет с четкостью разлучать более тонкие структуры NMJ из-за ограниченного разрешения и разброса флуоресценции.
В отличие от этого, в микроскопии STED используется истощающий лазер для подавления распространения флуоресценции, что позволяет получить четкую визуализацию NMJ.
После эвтаназии начните дразнить передние мышцы большеберцовой кости небольшими пучками волокон шириной около 1 миллиметра с помощью двух тонких зубчатых щипцов. Затем перенесите эти мышечные пучки в 24-луночную пластину, содержащую 1% Triton X-100, приготовленный в PBS, и дайте ему осторожно взбалтываться в течение одного часа при комнатной температуре или пяти часов при 4 градусах Цельсия.
После трехкратной промывки образцов в течение 5 минут PBS при комнатной температуре инкубируйте образцы с блокирующим раствором, состоящим из 4% BSA, приготовленного в PBS, с 1% Triton X-100 в течение четырех часов при 4 градусах Цельсия при слабом перемешивании. Затем инкубируйте образцы в течение ночи с тем же блокирующим раствором, содержащим первичные моноклональные антитела против нейрофиламента М или синаптического везикулярного гликопротеина 2 для мечения пресинаптических аксонных окончаний или активных зон соответственно.
На следующий день промойте помеченные мышечные пучки три раза в течение 5 минут PBS при легком перемешивании. Затем инкубируйте их с соответствующими вторичными антителами, поместив их в шейкер на два часа при комнатной температуре. Снова промыв мышечные пучки, поместите их на предметное горло с крепежным средством. Затем поместите сверху стеклянный покровный стекло класса 1,5, а затем цилиндрические магниты с обеих сторон предметного стекла, чтобы оказать давление и расплющить мышцы.
Чтобы получить изображения с помощью конфокального микроскопа, запустите программное обеспечение микроскопа и выберите режим конфигурации «Машина», а затем соберите стеки изображений нервно-мышечных соединений в каждой экспериментальной группе в соответствии с настройками, указанными в рукописи текста. В конце сеанса нажмите «Открыть в 3D Viewer» и выберите нервно-мышечное соединение, представляющее экспериментальную группу для визуализации 3D-разметки.