7 марта 2012 г.
Представлен метод формирования изображения окна в мышь череп, который охватывает миллиметров и стабилен в течение месяца без воспаление головного мозга. Этот метод хорошо подходит для продольного исследования кровотока, клеточной динамики, и клетка / сосудистые структуры с использованием двух-фотонной микроскопии.
Общая цель данной процедуры заключается в создании стабильного тонкого костного окна в черепе мыши над корой головного мозга для проведения повторных сеансов визуализации без нарушения внутричерепной среды. Для этого сначала устанавливается головной фиксатор, который обеспечит стабильное положение головы под аппаратом для визуализации. Затем в области над дорсальной поверхностью мозга аккуратно истончают кость черепа и полируют поверхность мелкозернистым абразивом.
Затем закрепите окно, нанеся небольшое количество цианоакрилатного клея и накрыв его покровным стеклом. Заключительным этапом является подготовка животного к визуализации с помощью двухфотонного микроскопа. В конечном итоге двухфотонная микроскопия in vivo используется для визуализации тонких структур, таких как артериолы, вены, капилляры и дендриты нейронов, которые можно наблюдать на глубине до 250 микрометров в коре головного мозга на протяжении нескольких недель.
Основным преимуществом данной методики создания краниального окна является то, что часть черепа, перекрывающая кору, остается неповрежденной. Сначала мы истончаем череп до достижения оптической прозрачности, а затем укрепляем его с помощью цианоакрилатного клея и покровного стекла. Этот метод может быть полезен для изучения различных линий флуоресцентных трансгенных мышей в состоянии наркоза или в состоянии OIC.
Для начала данной процедуры проавтоклавируйте необходимые хирургические инструменты, проведите анестезию мыши в возрасте примерно от трех до шести недель согласно методам, описанным в прилагаемой рукописи. Проверьте рефлекс, сжав пальцы лапы, чтобы убедиться, что мышь находится в состоянии хирургического наркоза. Затем зафиксируйте мышь в стереотаксической раме.
Поддерживайте температуру тела мыши на уровне 37 °C, используя ректальный датчик с обратной связью и грелку. Нанесите на глаза офтальмологическую мазь для предотвращения пересыхания.
Затем сбрейте шерсть с головы с помощью маленькой электрической бритвы. После этого очистите кожу головы раствором Betadine, а затем протрите ее 70% изопропиловым спиртом. Затем под микроскопом нагрейте аликвоту стерильной искусственной спинномозговой жидкости до 37 °C.
С помощью хирургических ножниц удалите кожу со всей дорсальной поверхности черепа. Обрежьте кожу латерально до краев височных мышц с обеих сторон черепа и кзади от мышц шеи. Затем с помощью скальпеля удалите тонкий слой надкостницы с поверхности черепа.
Затем высушите и очистите череп. После этого нанесите на поверхность черепа тонкий слой цианоакрилатного клея. Дайте клею полностью высохнуть.
Этот слой клея необходим для надлежащей адгезии стоматологического цемента. На последующих этапах подготовки к визуализации в состоянии бодрствования просверлите отверстия и введите два самонарезающих винта размера 0 0 0 в поверхность противоположной стороны черепа.
Затем закрепите на черепе жесткий специально изготовленный коннектор с двумя точками крепления. Это значительно сокращает число степеней свободы и упрощает поиск того же поля визуализации при проведении лонгитюдных исследований. Широкая поперечная перекладина также обеспечивает достаточное пространство для размещения электродов и стимуляции вибрации.
Затем покройте всю поверхность черепа, за исключением области будущего окна, слоем стоматологического цемента, убедившись, что все открытые края кожи также закрыты цементом. Перед истончением кости черепа убедитесь, что боры острые, и избегайте их повторного использования. С помощью стоматологического бормашины на низких оборотах истончите участок размером 2 мм на 2 мм над соматосенсорной корой, используя бор диаметром 0,5 мм.
Затем в течение нескольких секунд истончайте поверхность сухого черепа, периодически смачивая его CSF для предотвращения перегрева. Продолжайте истончать кость. Далее переключите бормашину на более низкую скорость и снимайте слой с поверхности черепа легкими касаниями.
Бор должен приближаться к поверхности под углом примерно 30 градусов по отношению к вертикали. Продолжайте истончать кость, проходя через сосудистый слой до второго слоя кости, над поверхностью мозга.
Держите сверло, совершая небольшие контролируемые движения, и прикладывайте усилие только в латеральном направлении. Когда толщина кости составит около 50 microns, сосуды кожи должны стать отчетливо видны сквозь влажную кость. На этой глубине в течение нескольких секунд в кости станут заметны маленькие белые пятна.
Сразу после увлажнения сухой поверхности черепа конечная толщина кости должна составлять примерно 10–15 microns. Когда кость станет достаточно тонкой, маленькие белые пятна в кости перестанут быть заметными при увлажнении сухой поверхности черепа. Теперь отполируйте окно с помощью порошка оксида олова.
Возьмите небольшую щепотку порошка, размер которой составляет примерно одну четверть площади окна, и приготовьте суспензию порошка с ЦСЖ, используя заранее подготовленное сверло с силиконовым наконечником. Полируйте поверхность в течение 10 минут, тщательно промойте окно от порошка оксида олова и высушите кость. Этот процесс поможет сгладить любые шероховатости, оставшиеся после сверления в ходе процедуры истончения.
Затем вырежьте несколько квадратных фрагментов покровного стекла номер ноль, размер которых будет немного меньше размера окна. С помощью резака аккуратно проведите по стеклу разделительные горизонтальные и вертикальные линии. Слегка надавите ровным краем инструмента, не разбивая стекло.
Затем поместите покровное стекло в чашку Петри. Разделите стеклянные фрагменты, постучав чашкой о край стола. После этого с помощью деревянного конца сломанного аппликатора с ватным наконечником нанесите небольшое количество клея Sano ACRL на окно.
Быстро поместите предварительно вырезанный кусочек покровного стекла поверх клея. Не допускайте образования пузырьков воздуха под покровным стеклом после того, как клей полностью высохнет в течение 15 минут. Удалите излишки цианоакрилатного клея с верхней поверхности покровного стекла с помощью лезвия скальпеля.
Герметизируйте края окна стоматологическим цементом. Затем сформируйте слегка приподнятую лунку для удержания воды, которая потребуется для иммерсионного объектива в конце процедуры. Поместите животное в теплую клетку до полного восстановления после анестезии.
На данном этапе зафиксируйте животное на оптическом столе для проведения визуализации, используя раму в качестве опоры для головы. Наша отдельная пластина позволяет перемещать животное и все устройства физиологического мониторинга, собранные в единый блок, между местом проведения операции и установкой для двухфотонной визуализации. Если требуется визуализация кровотока, введите 0.05 milliliters 5% флуоресцентного декстрана через инфраорбитальную вену для маркировки сыворотки крови.
Данную процедуру необходимо проводить под общим наркозом; краситель обычно остается в кровотоке в течение нескольких часов. Для поддержания жидкостного баланса и энергетических потребностей организма каждые два часа вводите раствор Рингера-лактата внутрибрюшинно в объеме 3 µL на грамм массы тела. Для пробуждения мыши прекратите подачу изофлурана.
Через час после пробуждения мышь готова к визуализации. Закройте клетку над микроскопом, чтобы предотвратить попадание постороннего света. Показано. Здесь представлен пример сосудов коры бедра мыши YFP, помеченных путем внутривенного введения конъюгата декстрана с Texas red; сосуды твердой мозговой оболочки часто видны чуть выше поверхности коры в dura mater.
Крупные поверхностные артерии и вены расположены на поверхности коры. Проникающие сосуды отходят от этой поверхностной сети и погружаются в кору, где они разветвляются, образуя плотную капиллярную сеть, которая питает ткани коры. В данном видео продемонстрировано состояние сосудов на поверхности коры у бодрствующей мыши.
Спонтанные колебания диаметра артерии могут наблюдаться, когда животное находится в состоянии спокойного покоя. Данный метод может быть полезен для изучения широкого спектра флуоресцентных животных в состоянии наркоза или в бодрствовании.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен метод создания стабильного имплантационного окна в черепе мыши, позволяющий проводить долгосрочную визуализацию без развития воспаления мозга. Данная методика особенно полезна для лонгитюдных исследований кровотока и клеточной динамики.
Продольное прижизненное получение изображений функций коры головного мозга требует стабильного оптического доступа без нарушения внутричерепной среды, что является критически важным условием для валидации мишеней в доклинических нейробиологических исследованиях. Окно из полированного и усиленного истонченного черепа (PoRTS) позволяет проводить повторные сеансы визуализации на протяжении нескольких месяцев с минимальным воспалением, что способствует механистическому снижению рисков при проверке терапевтических гипотез в системах, релевантных для конкретных заболеваний. Данный подход повышает прогностическую точность на ранних этапах поиска за счет обеспечения количественных и воспроизводимых показателей клеточной и сосудистой динамики в препаратах как под наркозом, так и в состоянии бодрствования.
Окно PoRTS интегрируется в континуум открытий — от валидации мишени до доклинических исследований, обеспечивая непрерывный мониторинг биологических ответов без нарушения условий окружающей среды.