-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Environment
Бентический Обмен O 2, N 2 и растворенные Питательные вещества Использовани...
Бентический Обмен O 2, N 2 и растворенные Питательные вещества Использовани...
JoVE Journal
Environment
This content is Free Access.
JoVE Journal Environment
The Benthic Exchange of O2, N2 and Dissolved Nutrients Using Small Core Incubations

Бентический Обмен O 2, N 2 и растворенные Питательные вещества Использование небольшого ядра инкубациями

Full Text
10,404 Views
10:11 min
August 3, 2016

DOI: 10.3791/54098-v

Michael S. Owens1, Jeffrey C. Cornwell1

1Horn Point Laboratory,University of Maryland Center for Environmental Science

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Здесь мы представляем небольшие керновые инкубаторы для измерения газообмена осадочных пород и воды, а также растворенных веществ. Они обеспечат надежные измерения обмена осадков и воды, которые оценят роль отложений во влиянии на биологические и биогеохимические процессы в водных экосистемах.

Общая цель данного биогеохимического эксперимента по изучению осадочных пород заключается в проведении реалистичных измерений обмена растворенных веществ и газов между поверхностью осадочных пород и вышележащими водами с целью уточнения баланса водных масс и информирования о биогеохимическом моделировании. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы водной биогеохимии, например, насколько важны наши отложения в качестве поглотителей и источников питательных элементов и кислорода. Он оптимизирован для измерения водной денитрификации, основного поглотителя в водном азотном цикле.

Основным преимуществом данной методики является то, что она обладает высокой эффективностью, и позволяет иметь значительный пространственный и временной охват биогеохимических процессов в осадочных породах. Начните с обозначения местоположения места отбора проб с помощью GPS. Затем определите уровень кислорода, температуру и соленость придонной воды с помощью зонда качества воды YSI.

Опустите его примерно на один метр над осадком и снимите показания. Далее снимите показания с помощью измерителя ФАР и опускающей рамы на поверхности и на дне, чтобы оценить световое затухание воды. Теперь приготовьте пробоотборник.

Для глубоководных исследований используйте керн с внутренним диаметром 6,35 сантиметра, а для отложений с бентосными микроводорослями или крупными популяциями животных используйте керн с внутренним диаметром 10 сантиметров. Теперь разверните пробоотборник над бортом лодки и медленно опустите его, чтобы свести к минимуму помехи при проникновении в осадок. После извлечения пробоотборника из ящика вставьте в него керновые трубки.

Вставьте бутиловую пробку в верхнюю часть каждой пробирки, затем прикрепите акриловую пластину с уплотнительным кольцом к каждой нижней части. Для пробоотборника столба поместите акриловую нижнюю пластину в вкладыш керна, прежде чем извлекать керн из пробоотборника. После отбора керна осмотрите керн флюса и керн на предмет видимых нарушений или чрезмерной ресуспензии.

Для экспериментов с потоками идеальный баланс осадочных пород и воды в керне составляет 15 сантиметров каждого, но в крупных или сильно уплотненных отложениях допустимо собирать меньше осадка. Однако, если скорость истощения кислорода чрезмерна, сместите баланс в сторону большего количества воды. Храните сердцевину в изолированном водяном охладителе, затопленном водой из окружающей среды с площадки для поддержания температуры in situ.

Убедитесь, что кулер остается в вертикальном положении. Далее соберите донную воду из мест отбора керна в 20-литровые карбои с помощью мембранного насоса. Как правило, заполняйте две или три коробки и собирайте с нескольких участков, если ожидается, что химический состав воды будет меняться между участками.

Если насос недоступен в мелкой, нестратифицированной воде, карбой можно наполнить вручную. Теперь вы можете быстро транспортировать аэробные ядра в инкубационную установку, прежде чем они станут бескислородными. Оказавшись на объекте, осмотрите стержни и выбросьте все, что было потревожено во время транспортировки.

Затем поместите керны, в том числе заготовку водяного столба, в ванну-инкубатор и установите температуру на измеренную температуру придонной воды. Заполните инкубатор собранной донной водой, полностью погрузив в нее керны осадка. Глухая сердцевина, ядро без всякого осадка, также заполняется придонной водой.

Кроме того, добавьте донную воду в пятилитровые коробки с кранами, которые будут использоваться для подачи подменной воды. Для аэрации используйте небольшой Т-образный барботер из 1/2-дюймовой трубы из ПВХ и трехстороннюю муфту. Накройте трубку диаметром 1/8 дюйма трубой из ПВХ, и слейте воду и обеспечьте циркуляцию и аэрацию.

Теперь дайте ядрам уравновеситься не менее двух часов, чтобы провести ночь в темноте, прежде чем брать пробы. Как только ядра уравновесятся, прикрепите к ним вращающиеся волчки. Открыв пробоотборный клапан, аккуратно удалите все пузырьки воздуха под вращающимся волчком и запечатайте сердцевину от воды в резервуаре.

Затем поднимите запасной водяной тележку на 30-40 сантиметров над инкубационными ядрами, затем начните прокладывать дренажные трубопроводы от тележки, и как только они начнут течь, прикрепите их к верхушкам ядра. Затем закройте клапаны. Теперь включите центральный поворотный стол для перемешивания и отрегулируйте скорость вращения, чтобы перемешать столб воды без повторного внесения осадка.

Обычно работает 40 оборотов в минуту. Примерно через пять минут откройте сменный водяной клапан и клапан для отбора проб. Затем прикрепите короткий кусок трубки к клапану для отбора проб с помощью замка для приманки.

Установите эту пробирку для отбора проб в стеклянную пробирку для образцов объемом семь миллилитров и наполните ее водой. Затем добавьте в образец 10 микролитров хлорида ртути и закупорьте пробирку. Для отбора проб растворенного вещества прикрепите цилиндр шприца объемом 20 миллилитров к клапану для отбора проб и откройте запасной водяной клапан.

Затем прикрепите поршень и фильтрующий диск к загруженному шприцу, и отфильтруйте образец по пробиркам для сбора. Временной ход отбора проб в темноте обычно включает четыре периода отбора проб с интервалами от получаса до двух часов или дольше, в зависимости от скорости поглощения кислорода. Используя откалиброванные оптоды, отслеживайте уровень кислорода в отобранной воде.

В целом, истощение кислорода на 25% позволяет измерить изменения концентрации питательных веществ. Возможен более длительный отбор проб, но не следует отбирать пробы после 50% истощения кислорода. Если осадок из неглубоких, освещенных сред, то после четвертого образца включите свет и возьмите еще три пробы.

Собранные образцы хранят под водой при температуре инкубации. После взятия проб измерьте оставшийся объем воды в керне по высоте водяного столба, или слив всю воду в градуированный цилиндр. Измерения потока осадочных пород были проведены вблизи аквакультурного объекта на реке Чоптанк.

Быстрое падение кислорода несколько смягчалось освещением, но скорость фотосинтеза была не такой высокой, как дыхание. Уровень кислорода в управляющем ядре изменялся лишь незначительно. Концентрации азота определяли с использованием соотношения азота к аргону с точностью до 0,02%, или около 100 наномолей на литр азота.

В темноте или при свете содержание азота в осадочных кернах увеличивалось гораздо больше, чем в воде. Потоки растворенного аммония были довольно высокими в темное время суток. В одном ядре наблюдалось увеличение на 20 мкм на литр.

Даже при освещении в кернах увеличивалась концентрация аммония. Как в кернах, так и в заготовке водяного столба концентрация нитратов и нитритов со временем снижалась, при этом скорость снижения снижалась при освещении. После освоения эти процедуры инкубации могут быть эффективно выполнены двумя учеными, как правило, в течение шести-восьми часов, в зависимости от скорости дыхания осадка.

При попытке выполнить эту процедуру важно помнить о сборе неповрежденной воды из отложений и поддерживать постоянную температуру, аналогичную той, которая наблюдается в полевых условиях. После завершения инкубации эти керны могут быть использованы для отбора проб содержания хлорофилла, размера зерен, плохого химического состава воды и удельной реакционной способности осадка. После его разработки использование соотношения азота и газообразного аргона для измерения денитрификации обеспечило альтернативный подход к измерению денитрификации и чистых потоков диазота.

Ученые применили этот метод газового соотношения для измерения денитрификации водно-болотных угодий, озер, водохранилищ, эстуариев и мелководных прибрежных отложений, обеспечив полезную альтернативу изотопной методологии.

Explore More Videos

Науки об окружающей среде выпуск 114 обмен наносов воды донных отложений биогеохимии денитрификации задействуя азот наносы потребность в кислороде бентоса-пелагическая сцепные

Related Videos

Стабильный Изотопный Профилирование посредник Flux Метаболический в развивающихся странах и взрослой стадии Caenorhabditis Элеганс

12:10

Стабильный Изотопный Профилирование посредник Flux Метаболический в развивающихся странах и взрослой стадии Caenorhabditis Элеганс

Related Videos

13.9K Views

Создание определяемых газообразных сред для изучения влияния гипоксии на С. Элеганс

11:07

Создание определяемых газообразных сред для изучения влияния гипоксии на С. Элеганс

Related Videos

12.5K Views

Лабораторно-определяется Фосфор поток от озерных отложениях в качестве меры внутреннего фосфора Загрузка

10:49

Лабораторно-определяется Фосфор поток от озерных отложениях в качестве меры внутреннего фосфора Загрузка

Related Videos

17.8K Views

Отложения Ядро секционирования и Добыча поровых вод в бескислородных условиях

09:21

Отложения Ядро секционирования и Добыча поровых вод в бескислородных условиях

Related Videos

9.4K Views

Лаборатория Моделирование железа (II) -богатой докембрия Marine Апвеллинг Система для изучения роста фотосинтезирующих бактерий

09:45

Лаборатория Моделирование железа (II) -богатой докембрия Marine Апвеллинг Система для изучения роста фотосинтезирующих бактерий

Related Videos

12.3K Views

Воскресения спящие Daphnia magna: протокол и приложения

07:37

Воскресения спящие Daphnia magna: протокол и приложения

Related Videos

19.5K Views

Интенсивности осадков денитрификация с использованием ядер и N2O микросенсоры

07:59

Интенсивности осадков денитрификация с использованием ядер и N2O микросенсоры

Related Videos

8.6K Views

Недорогой метод измерения первичной продуктивности in situ перифитонных сообществ ленточных вод

06:02

Недорогой метод измерения первичной продуктивности in situ перифитонных сообществ ленточных вод

Related Videos

2.4K Views

Физиологическая характеристика голобионта коралла с использованием нового инструмента микрореспирометрии

04:22

Физиологическая характеристика голобионта коралла с использованием нового инструмента микрореспирометрии

Related Videos

1.4K Views

Набор смоделированных сред in situ для культивирования анаэробных микроорганизмов, приобретенных в окружающей среде

07:56

Набор смоделированных сред in situ для культивирования анаэробных микроорганизмов, приобретенных в окружающей среде

Related Videos

1.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code