29 декабря 2016 г.
Здесь мы описываем процедуру получения живых изображений гаструляции дрозофилы. Это позволило нам лучше понять апикальную констрикцию, связанную с ранним развитием, и дополнительно проанализировать механизмы, управляющие клеточными движениями во время модификации структуры ткани.
Общая цель этой процедуры, состоит в том, чтобы лучше понять форму и движение клеток во время гаструляции дрозофилы. Здесь мы предлагаем робустический метод измерения гаструляции дрозофилы, чтобы оценить начало морфогенетического клеточного движения на этой стадии эмбрионального развития. Основное преимущество этой методики заключается в том, что перестройка клеток во время гаструляции может быть идентифицирована наряду с апикальной констрикцией во время гаструляции.
Для начала эксперимента приготовьте смесь из 375 миллилитров воды. 125 миллилитров 100% имеющегося в продаже яблочного сока. 12,5 грамм агара.
12,5 грамм глюкозы. Далее нагрейте смесь в микроволновой печи, пока агар не расплавится. И высыпаем его в трехсантиметровую посуду для клеточных культур.
Хранить смесь при температуре 4 градуса Цельсия, впрок. После подготовки яблочной тарелки добавьте поверх нее тонкий слой размятой дрожжевой пасты, чтобы дать возможность мухам отложить яйца. Поместите 25 самцов и 25 самок мух в бутылку на яблочную тарелку, покрытую размятыми дрожжами.
Оберните пластиковые бутылочки дрозофил алюминиевой фольгой, чтобы побудить мух отложить больше яиц. Храните флакон в перевернутом виде в инкубаторе на ночь. На следующее утро замените тарелку с яблочным соком на свежую.
Затем оберните бутылку алюминиевой фольгой и дайте мухам отложить яйца в течение трех-четырех часов. После того как мухи отложили яйца, отсоедините яйца от тарелки ватной палочкой. Соберите эмбрионы в ситечко и промойте их фосфатным буферным раствором или PBS.
Промойте зародыши еще три раза PBS, в 12-луночной посуде для культивирования. Дехорионат эмбрионов с помощью 50% отбеливателя в 12-луночных чашках для культивирования. Следуя за процессом дехорионации, промойте эмбрионы еще три раза PBS.
Перенесите эмбрионы в трехсантиметровую чашку для клеточных культур, содержащую PBS. И отбирать эмбрионы пятой стадии под микроскопом, исходя из уровня прозрачности на их границах. С помощью наконечника пипетки объемом 200 микролитров соберите стадированные эмбрионы.
Далее поместите два выбранных эмбриона на стеклянную крышку, а излишки PBS удалите папиросной бумагой. С помощью тонко скрученной папиросной бумаги ориентируйте эмбрионы тыльной стороной вверх к покровному листу. Затем приложите зародыши к стеклянной крышке слипом с силиконовой смазкой с помощью тонкой иглы.
Добавьте небольшую каплю полого углеродного масла 700 на эмбрионы и положите покровную крышку с эмбрионами вверх ногами на углубленное стекло. Оставляем немного места в нижней части горки. Затем приклейте защитный листок к слайду.
Наконец, исследуйте эмбрионы с помощью системы конфокальной визуализации, лазера на аргоне 488 и объектива для погружения в масло. Покадровые изображения были получены с помощью визуализации в реальном времени с использованием DE-cadherin GFP движения клеток в течение 500 секунд для анализа апикальных областей отдельных клеток дрозофилы во время гаструляции. Через 500 секунд отчетливо заметны апикальное сужение и инвагинация.
Используя наш метод. Мы можем также понять молекулярные механизмы гаструляции дрозофилы, а также переход от эпителия к мезенхимале, участвующий в метастазировании рака.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлена методика получения изображений живых клеток в процессе гаструляции Drosophila, что расширяет наше понимание механизмов апикальной констрикции на ранних стадиях развития. Данный метод позволяет детально проанализировать клеточные перемещения, участвующие в модификации структуры тканей.
Визуализация в реальном времени изменений формы и перемещения клеток во время гаструляции Drosophila представляет собой надежную платформу для анализа молекулярных механизмов, лежащих в основе эпителиально-мезенхимального перехода (ЭМП) — процесса, связанного с фиброзом и метастазированием рака. Данный метод позволяет с высоким разрешением визуализировать апикальную констрикцию и перестройку клеток, что обеспечивает высокую прогностическую достоверность при валидации мишеней на ранних стадиях для путей, связанных с ЭМП. Такой подход укрепляет трансляционную преемственность от биологии развития к изучению механизмов заболеваний в рамках биофармацевтических исследований и разработок.
Данный метод визуализации интегрируется в континуум научных исследований: от первоначальной проверки гипотез до разработки доклинических моделей для мишеней, связанных с ЭМП.