Ученые разработали 3D-модели для более точного изучения процессов инвазии и миграции клеток. В то время как большинство традиционных систем клеточных культур являются двумерными, клетки в наших тканях существуют внутри трехмерной сети молекул, известной как внеклеточный матрикс или ECM. В то время как многие механистические процессы, необходимые для подвижности клеток в 2D и 3D, схожи, такие факторы, как пониженная жесткость ВКМ по сравнению с пластиковыми поверхностями, добавление третьего измерения для миграции и физические препятствия для перемещения через сетку длинных полимеров в ВКМ, представляют собой различные проблемы для клетки по сравнению с двумерной миграцией.
В этом видео мы кратко познакомимся с основными функциями и структурой ВКМ, а также с механизмами, с помощью которых клетки модулируют и мигрируют через нее. Далее мы обсудим общий протокол, используемый для изучения инвазии эндотелиальных клеток. Наконец, мы выделим несколько применений 3D-матриц для изучения различных биологических вопросов.
Давайте начнем с изучения состава ВКМ и того, как клетки взаимодействуют с ней.
ВКМ выполняет множество функций, таких как обеспечение поддержки клеток, облегчение межклеточной коммуникации и разделение тканей. Состав ВКМ варьируется в разных тканях и имеет разные биологические свойства, но его можно разделить на два больших типа. Базальная мембрана служит для закрепления и разделения тканей, в то время как интерстициальный матрикс окружает и поддерживает клетки внутри ткани. Интерстициальный матрикс в основном состоит из волокнистого белка коллагена, но также включает эластин и фибронектин.
Для миграции клеток через ВКМ должно произойти несколько биологических процессов. Первый — это адгезия клеточного матрикса, в которой участвуют трансмембранные белки, называемые интегринами. Они связывают ВКМ с внутренним каркасом клетки, известным как цитоскелет.
Еще одним процессом является структурная перестройка цитоскелета клетки. Это приводит к образованию специализированных структур, называемых инвадоподиями, которые представляют собой выпячивания клетки в окружающий ее матрикс. Последним этапом является модуляция ECM. Обычно в этом участвуют деградирующие молекулы, известные как матричные металлопротеимы или ММП, которые накапливаются в инвадоподиях и разрушают окружающую ВКМ, способствуя клеточной инвазии. Анализы 3D-матричной инвазии позволяют ученым визуализировать и изучить этот сложный процесс.
Теперь, когда вы знакомы с ВКМ и ее взаимодействием с клетками, давайте рассмотрим протокол изучения инвазии ВКМ эндотелиальными клетками с образованием канальцев. Культивируя эндотелиальные клетки в трехмерной среде, можно смоделировать биологический процесс роста кровеносных сосудов, также известный как ангиогенез, который важен как во время нормального развития, так и при раке.
Сначала культивируют эндотелиальные клетки, и получают одноклеточную суспензию путем обработки клеток протеазами, такими как трипсин, и пропускания их через сетчатый фильтр для разрушения клеточных сгустков. 3D-матрица, обычно состоящая из коллагена, фибрина, ламинина или более сложных комбинаций этих компонентов, которые могут быть приготовлены в лаборатории или заказаны у коммерческих поставщиков, затем размораживается на льду. Поскольку большинство препаратов ЭХМ полимеризуются при более высоких температурах, полезно держать в холоде и другое оборудование и реагенты. Клеточную суспензию смешивают с размороженным раствором матрицы для встраивания клеток, и эту смесь помещают в инкубатор для клеточных культур, где более высокая температура вызовет полимеризацию матрицы.
После того, как клеточная матрица схватывается, в матричную чашку добавляют питательные среды, содержащие ангиогенные факторы. С помощью программного обеспечения для покадровой микроскопии можно отслеживать отдельные клетки, чтобы наблюдать за их миграцией через матрицу. Полученные изображения анализируются, а положение клеток используется для вычисления направления движения и расстояния в микронах. Затем эти значения могут быть построены на графике для определения локомоторной активности — средней скорости миграции клеток. Наконец, формирование сети труб отслеживается и анализируется с помощью программного обеспечения для визуализации для идентификации таких объектов, как узлы, трубы и петли.
Теперь давайте рассмотрим несколько применений 3D-матриц в конкретных экспериментах.
Миграция клеток опосредована активной модуляцией клеточного цитоскелета. В этом эксперименте коллагеновые матрицы были подготовлены и смешаны с красителем, содержащим красный флуоресцентный белок, чтобы обеспечить визуализацию. Отдельные клеточные сфероиды, которые представляют собой свободно плавающие клеточные кластеры, были выделены и встроены в коллагеновый матрикс. После инкубации встроенные клетки окрашивали на специфические компоненты цитоскелета и визуализировали с помощью флуоресцентной микроскопии. Исследователи наблюдали компоненты цитоскелета и их изменения по мере миграции клеток через ВКМ.
Ученые также могут изучить, как свойства ECM влияют на миграцию. Используя концентрическую гелевую систему, в которой клетки встроены во внутреннюю гелевую матрицу, окруженную внешними матрицами различной концентрации, ученые могут отслеживать клетки с помощью покадровой микроскопии для изучения их миграции от внутреннего геля к изначально свободному от клеток внешнему гелю. Исследователи заметили, что большая жесткость гелей с более высокой концентрацией привела к увеличению как смещения клеток, так и общего расстояния миграции клеток.
Наконец, анализы матриксной инвазии могут быть проведены на живом животном для изучения ангиогенеза в органоспецифическом контексте. Здесь были созданы фибриновые гели, обычно используемые в тканевой инженерии из-за их биоразлагаемой природы, с последующей имплантацией в легкие мыши, где гели удерживались на месте с помощью «клея», сделанного из белка фибриногена. Миграция клеток и образование новых кровеносных сосудов происходили в течение следующих 7-30 дней, после чего легкие и фибриновые гели были собраны, зафиксированы и разделены. Визуализация этих срезов выявила образование кровеносных сосудов и альвеол в имплантированных гелях, что дало исследователям представление об этом важнейшем аспекте развития легких в его in vivo.
Вы только что посмотрели видео JoVE об анализах инвазии внеклеточного матрикса. В этом видео обсуждался состав ВКМ и то, как клетки мигрируют через него, был представлен простой протокол изучения миграции эндотелиальных клеток через 3D-матрицу, а также освещались несколько клеточных процессов, которые в настоящее время изучаются в контексте взаимодействий клетки и ВКМ. Поскольку эндогенная миграция клеток происходит в трехмерном пространстве, эти биологические условия лучше всего моделируются с помощью методов 3D-культивирования. Усовершенствования в составе матрицы позволят ученым более точно воспроизводить и изучать клеточную миграцию в лаборатории. Как всегда, спасибо за просмотр!
Внеклеточный матрикс (ВКМ) представляет собой сеть молекул, которые обеспечивают структурный каркас для клеток и тканей и помогают облегчить межклеточ…
Ученые разработали 3D-модели для более точного изучения процессов инвазии и миграции клеток. В то время как большинство традиционных систем клеточных культур являются двумерными, клетки в наших тканях существуют внутри трехмерной сети молекул, известной как внеклеточный матрикс или ECM. В то время как многие механистические процессы, необходимые для подвижности клеток в 2D и 3D, схожи, такие факторы, как пониженная жесткость ВКМ по сравнению с пластиковыми поверхностями, добавление третьего измерения для миграции и физические препятствия для перемещения через сетку длинных полимеров в ВКМ, представляют собой различные проблемы для клетки по сравнению с двумерной миграцией.
В этом видео мы кратко познакомимся с основными функциями и структурой ВКМ, а также с механизмами, с помощью которых клетки модулируют и мигрируют через нее. Далее мы обсудим общий протокол, используемый для изучения инвазии эндотелиальных клеток. Наконец, мы выделим несколько применений 3D-матриц для изучения различных биологических вопросов.
Давайте начнем с изучения состава ВКМ и того, как клетки взаимодействуют с ней.
ВКМ выполняет множество функций, таких как обеспечение поддержки клеток, облегчение межклеточной коммуникации и разделение тканей. Состав ВКМ варьируется в разных тканях и имеет разные биологические свойства, но его можно разделить на два больших типа. Базальная мембрана служит для закрепления и разделения тканей, в то время как интерстициальный матрикс окружает и поддерживает клетки внутри ткани. Интерстициальный матрикс в основном состоит из волокнистого белка коллагена, но также включает эластин и фибронектин.
Для миграции клеток через ВКМ должно произойти несколько биологических процессов. Первый — это адгезия клеточного матрикса, в которой участвуют трансмембранные белки, называемые интегринами. Они связывают ВКМ с внутренним каркасом клетки, известным как цитоскелет.
Еще одним процессом является структурная перестройка цитоскелета клетки. Это приводит к образованию специализированных структур, называемых инвадоподиями, которые представляют собой выпячивания клетки в окружающий ее матрикс. Последним этапом является модуляция ECM. Обычно в этом участвуют деградирующие молекулы, известные как матричные металлопротеимы или ММП, которые накапливаются в инвадоподиях и разрушают окружающую ВКМ, способствуя клеточной инвазии. Анализы 3D-матричной инвазии позволяют ученым визуализировать и изучить этот сложный процесс.
Теперь, когда вы знакомы с ВКМ и ее взаимодействием с клетками, давайте рассмотрим протокол изучения инвазии ВКМ эндотелиальными клетками с образованием канальцев. Культивируя эндотелиальные клетки в трехмерной среде, можно смоделировать биологический процесс роста кровеносных сосудов, также известный как ангиогенез, который важен как во время нормального развития, так и при раке.
Сначала культивируют эндотелиальные клетки, и получают одноклеточную суспензию путем обработки клеток протеазами, такими как трипсин, и пропускания их через сетчатый фильтр для разрушения клеточных сгустков. 3D-матрица, обычно состоящая из коллагена, фибрина, ламинина или более сложных комбинаций этих компонентов, которые могут быть приготовлены в лаборатории или заказаны у коммерческих поставщиков, затем размораживается на льду. Поскольку большинство препаратов ЭХМ полимеризуются при более высоких температурах, полезно держать в холоде и другое оборудование и реагенты. Клеточную суспензию смешивают с размороженным раствором матрицы для встраивания клеток, и эту смесь помещают в инкубатор для клеточных культур, где более высокая температура вызовет полимеризацию матрицы.
После того, как клеточная матрица схватывается, в матричную чашку добавляют питательные среды, содержащие ангиогенные факторы. С помощью программного обеспечения для покадровой микроскопии можно отслеживать отдельные клетки, чтобы наблюдать за их миграцией через матрицу. Полученные изображения анализируются, а положение клеток используется для вычисления направления движения и расстояния в микронах. Затем эти значения могут быть построены на графике для определения локомоторной активности — средней скорости миграции клеток. Наконец, формирование сети труб отслеживается и анализируется с помощью программного обеспечения для визуализации для идентификации таких объектов, как узлы, трубы и петли.
Теперь давайте рассмотрим несколько применений 3D-матриц в конкретных экспериментах.
Миграция клеток опосредована активной модуляцией клеточного цитоскелета. В этом эксперименте коллагеновые матрицы были подготовлены и смешаны с красителем, содержащим красный флуоресцентный белок, чтобы обеспечить визуализацию. Отдельные клеточные сфероиды, которые представляют собой свободно плавающие клеточные кластеры, были выделены и встроены в коллагеновый матрикс. После инкубации встроенные клетки окрашивали на специфические компоненты цитоскелета и визуализировали с помощью флуоресцентной микроскопии. Исследователи наблюдали компоненты цитоскелета и их изменения по мере миграции клеток через ВКМ.
Ученые также могут изучить, как свойства ECM влияют на миграцию. Используя концентрическую гелевую систему, в которой клетки встроены во внутреннюю гелевую матрицу, окруженную внешними матрицами различной концентрации, ученые могут отслеживать клетки с помощью покадровой микроскопии для изучения их миграции от внутреннего геля к изначально свободному от клеток внешнему гелю. Исследователи заметили, что большая жесткость гелей с более высокой концентрацией привела к увеличению как смещения клеток, так и общего расстояния миграции клеток.
Наконец, анализы матриксной инвазии могут быть проведены на живом животном для изучения ангиогенеза в органоспецифическом контексте. Здесь были созданы фибриновые гели, обычно используемые в тканевой инженерии из-за их биоразлагаемой природы, с последующей имплантацией в легкие мыши, где гели удерживались на месте с помощью «клея», сделанного из белка фибриногена. Миграция клеток и образование новых кровеносных сосудов происходили в течение следующих 7-30 дней, после чего легкие и фибриновые гели были собраны, зафиксированы и разделены. Визуализация этих срезов выявила образование кровеносных сосудов и альвеол в имплантированных гелях, что дало исследователям представление об этом важнейшем аспекте развития легких в его in vivo.
Вы только что посмотрели видео JoVE об анализах инвазии внеклеточного матрикса. В этом видео обсуждался состав ВКМ и то, как клетки мигрируют через него, был представлен простой протокол изучения миграции эндотелиальных клеток через 3D-матрицу, а также освещались несколько клеточных процессов, которые в настоящее время изучаются в контексте взаимодействий клетки и ВКМ. Поскольку эндогенная миграция клеток происходит в трехмерном пространстве, эти биологические условия лучше всего моделируются с помощью методов 3D-культивирования. Усовершенствования в составе матрицы позволят ученым более точно воспроизводить и изучать клеточную миграцию в лаборатории. Как всегда, спасибо за просмотр!
Ученые разработали 3D-модели для более точного изучения процессов инвазии и миграции клеток. В то время как большинство традиционных систем клеточных культур являются двумерными, клетки в наших тканях существуют внутри трехмерной сети молекул, известной как внеклеточный матрикс или ECM. В то время как многие механистические процессы, необходимые для подвижности клеток в 2D и 3D, схожи, такие факторы, как пониженная жесткость ВКМ по сравнению с пластиковыми поверхностями, добавление третьего измерения для миграции и физические препятствия для перемещения через сетку длинных полимеров в ВКМ, представляют собой различные проблемы для клетки по сравнению с двумерной миграцией.
В этом видео мы кратко познакомимся с основными функциями и структурой ВКМ, а также с механизмами, с помощью которых клетки модулируют и мигрируют через нее. Далее мы обсудим общий протокол, используемый для изучения инвазии эндотелиальных клеток. Наконец, мы выделим несколько применений 3D-матриц для изучения различных биологических вопросов.
Давайте начнем с изучения состава ВКМ и того, как клетки взаимодействуют с ней.
ВКМ выполняет множество функций, таких как обеспечение поддержки клеток, облегчение межклеточной коммуникации и разделение тканей. Состав ВКМ варьируется в разных тканях и имеет разные биологические свойства, но его можно разделить на два больших типа. Базальная мембрана служит для закрепления и разделения тканей, в то время как интерстициальный матрикс окружает и поддерживает клетки внутри ткани. Интерстициальный матрикс в основном состоит из волокнистого белка коллагена, но также включает эластин и фибронектин.
Для миграции клеток через ВКМ должно произойти несколько биологических процессов. Первый — это адгезия клеточного матрикса, в которой участвуют трансмембранные белки, называемые интегринами. Они связывают ВКМ с внутренним каркасом клетки, известным как цитоскелет.
Еще одним процессом является структурная перестройка цитоскелета клетки. Это приводит к образованию специализированных структур, называемых инвадоподиями, которые представляют собой выпячивания клетки в окружающий ее матрикс. Последним этапом является модуляция ECM. Обычно в этом участвуют деградирующие молекулы, известные как матричные металлопротеимы или ММП, которые накапливаются в инвадоподиях и разрушают окружающую ВКМ, способствуя клеточной инвазии. Анализы 3D-матричной инвазии позволяют ученым визуализировать и изучить этот сложный процесс.
Теперь, когда вы знакомы с ВКМ и ее взаимодействием с клетками, давайте рассмотрим протокол изучения инвазии ВКМ эндотелиальными клетками с образованием канальцев. Культивируя эндотелиальные клетки в трехмерной среде, можно смоделировать биологический процесс роста кровеносных сосудов, также известный как ангиогенез, который важен как во время нормального развития, так и при раке.
Сначала культивируют эндотелиальные клетки, и получают одноклеточную суспензию путем обработки клеток протеазами, такими как трипсин, и пропускания их через сетчатый фильтр для разрушения клеточных сгустков. 3D-матрица, обычно состоящая из коллагена, фибрина, ламинина или более сложных комбинаций этих компонентов, которые могут быть приготовлены в лаборатории или заказаны у коммерческих поставщиков, затем размораживается на льду. Поскольку большинство препаратов ЭХМ полимеризуются при более высоких температурах, полезно держать в холоде и другое оборудование и реагенты. Клеточную суспензию смешивают с размороженным раствором матрицы для встраивания клеток, и эту смесь помещают в инкубатор для клеточных культур, где более высокая температура вызовет полимеризацию матрицы.
После того, как клеточная матрица схватывается, в матричную чашку добавляют питательные среды, содержащие ангиогенные факторы. С помощью программного обеспечения для покадровой микроскопии можно отслеживать отдельные клетки, чтобы наблюдать за их миграцией через матрицу. Полученные изображения анализируются, а положение клеток используется для вычисления направления движения и расстояния в микронах. Затем эти значения могут быть построены на графике для определения локомоторной активности — средней скорости миграции клеток. Наконец, формирование сети труб отслеживается и анализируется с помощью программного обеспечения для визуализации для идентификации таких объектов, как узлы, трубы и петли.
Теперь давайте рассмотрим несколько применений 3D-матриц в конкретных экспериментах.
Миграция клеток опосредована активной модуляцией клеточного цитоскелета. В этом эксперименте коллагеновые матрицы были подготовлены и смешаны с красителем, содержащим красный флуоресцентный белок, чтобы обеспечить визуализацию. Отдельные клеточные сфероиды, которые представляют собой свободно плавающие клеточные кластеры, были выделены и встроены в коллагеновый матрикс. После инкубации встроенные клетки окрашивали на специфические компоненты цитоскелета и визуализировали с помощью флуоресцентной микроскопии. Исследователи наблюдали компоненты цитоскелета и их изменения по мере миграции клеток через ВКМ.
Ученые также могут изучить, как свойства ECM влияют на миграцию. Используя концентрическую гелевую систему, в которой клетки встроены во внутреннюю гелевую матрицу, окруженную внешними матрицами различной концентрации, ученые могут отслеживать клетки с помощью покадровой микроскопии для изучения их миграции от внутреннего геля к изначально свободному от клеток внешнему гелю. Исследователи заметили, что большая жесткость гелей с более высокой концентрацией привела к увеличению как смещения клеток, так и общего расстояния миграции клеток.
Наконец, анализы матриксной инвазии могут быть проведены на живом животном для изучения ангиогенеза в органоспецифическом контексте. Здесь были созданы фибриновые гели, обычно используемые в тканевой инженерии из-за их биоразлагаемой природы, с последующей имплантацией в легкие мыши, где гели удерживались на месте с помощью «клея», сделанного из белка фибриногена. Миграция клеток и образование новых кровеносных сосудов происходили в течение следующих 7-30 дней, после чего легкие и фибриновые гели были собраны, зафиксированы и разделены. Визуализация этих срезов выявила образование кровеносных сосудов и альвеол в имплантированных гелях, что дало исследователям представление об этом важнейшем аспекте развития легких в его in vivo.
Вы только что посмотрели видео JoVE об анализах инвазии внеклеточного матрикса. В этом видео обсуждался состав ВКМ и то, как клетки мигрируют через него, был представлен простой протокол изучения миграции эндотелиальных клеток через 3D-матрицу, а также освещались несколько клеточных процессов, которые в настоящее время изучаются в контексте взаимодействий клетки и ВКМ. Поскольку эндогенная миграция клеток происходит в трехмерном пространстве, эти биологические условия лучше всего моделируются с помощью методов 3D-культивирования. Усовершенствования в составе матрицы позволят ученым более точно воспроизводить и изучать клеточную миграцию в лаборатории. Как всегда, спасибо за просмотр!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What is the extracellular matrix and what are its main functions?
The extracellular matrix (ECM) is a network of molecules that provides structural support for cells and facilitates intercellular communication. It performs several functions including anchoring and separating tissues through the basement membrane, and surrounding and supporting cells via the interstitial matrix. The interstitial matrix is primarily composed of collagen, but also includes elastin and fibronectin.
Q2: How do cells migrate through the extracellular matrix?
Cell migration through the ECM involves three key processes. First, integrins—transmembrane proteins—mediate cell-matrix adhesion by linking the ECM to the cytoskeleton. Second, the cytoskeleton undergoes structural rearrangement, forming invadopodia, which are cellular protrusions into the surrounding matrix. Finally, matrix metalloproteases (MMPs) accumulate in invadopodia and degrade the ECM, facilitating cell invasion.
Q3: Why are 3D matrices better than 2D culture systems for studying cell invasion?
While cells in tissues exist within a 3D ECM network, traditional 2D culture systems use rigid plastic surfaces. Three-dimensional matrices better simulate the biological environment by presenting reduced stiffness compared to plastic, adding a third dimension for migration, and creating physical hindrance from the mesh of long polymers. These factors present different challenges that more accurately reflect how cells migrate in vivo.
Q4: What are the main steps in preparing cells for a 3D invasion assay?
Endothelial cells are first cultured, then treated with proteases such as trypsin and passed through a mesh filter to create a single cell suspension and break up clumps. The 3D matrix—typically composed of collagen, fibrin, laminin, or combinations thereof—is thawed on ice to prevent premature polymerization. The cell suspension is mixed with the thawed matrix and placed in an incubator where higher temperature causes the matrix to polymerize.
Q5: How are cell migration and tube formation measured in 3D matrix assays?
Time-lapse microscopy software tracks individual cells through the matrix to observe migration patterns. Cell positions are analyzed to calculate movement direction and distance in microns, which are plotted to determine locomotory activity—the average migration rate. Tube network formation is visualized and analyzed using software to identify structural features such as nodes, tubes, and loops.
Q6: What do studies on ECM stiffness reveal about cell migration behavior?
Using concentric gel systems with varying matrix concentrations, researchers observed that greater stiffness in higher concentration gels resulted in increased cell displacement and overall migration distance. This demonstrates that ECM mechanical properties directly influence how cells migrate through the matrix, with stiffer environments promoting greater cell movement and invasion.
Q7: How can 3D matrix assays be used to study angiogenesis in living animals?
Fibrin gels, valued for their biodegradable nature, are implanted into mouse lungs and held in place with fibrinogen protein glue. Over 7 to 30 days, cell migration and blood vessel formation occur within the implanted gels. After harvesting and sectioning the lungs, imaging reveals blood vessel and alveoli formation, providing insights into angiogenesis in its in vivo organ-specific context.
Chapters in this video
0:00
Overview
1:16
ECM Composition and Cell-ECM Interaction
3:01
Endothelial Cell Tube Formation Assay
5:01
Applications
7:08
Summary
Videos from this collection: