-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Chemistry
Двумерный гель-электрофорез
Video Quiz
Двумерный гель-электрофорез
JoVE Science Education
Biochemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biochemistry
Two-Dimensional Gel Electrophoresis

4.7: Двумерный гель-электрофорез

53,396 Views
07:31 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Двумерный гель-электрофорез (2DGE) — это метод, который может растворять тысячи биомолекул из смеси. Этот метод включает в себя два различных метода разделения, которые были связаны друг с другом: изоэлектрическую фокусировку (IEF) и электрофорез в полиакриламидном геле додецилсульфата натрия (SDS-PAGE). Это физически разделяет соединения по двум осям геля по их изоэлектрическим точкам (электрохимическое свойство) и их молекулярной массе.

Процедура, описанная в этом видео, охватывает основные понятия 2DGE и общую процедуру определения характеристик состава сложного белкового раствора. В разделе «Применение» показаны три примера этого метода, включая обнаружение биомаркеров для начала и прогрессирования заболевания, мониторинг лечения у пациентов и изучение белков после посттрансляционной модификации (ПТМ).

Двумерный, или 2D, гель-электрофорез — это метод, использующий два различных метода разделения, которые могут отделить тысячи белков от одной смеси. Один из методов, SDS-PAGE или электрофорез в полиакриламидном геле додецилсульфата натрия, не может полностью разделить сложные смеси в одиночку. Двухмерный гель-электрофорез связывает SDS-PAGE со вторым методом, изоэлектрической фокусировкой или IEF, который разделяет на основе изоэлектрических точек, что позволяет потенциально разрешать все белки в лизате клетки. В этом видео будут показаны принципы 2D-гель-электрофореза, общая процедура и некоторые из ее биомедицинских применений.

2D гель-электрофорез начинается с IEF в качестве первого измерения. Каждый белок имеет значение pH, называемое изоэлектрической точкой или pI, где суммарный заряд равен нулю. Когда белок подвергается воздействию электрического поля, он будет двигаться к электроду с противоположным зарядом. Представляющие интерес образцы загружаются на иммобилизованные полоски с градиентом pH, или IPG, в которые встроены амфолиты, молекулы, содержащие как кислотные, так и основные группы. Затем электрическое поле прикладывается к полоске градиента pH, заставляя белки мигрировать до тех пор, пока они не достигнут значения pH, соответствующего их pI, где они теряют свой суммарный заряд.

Перед запуском второго измерения встроенные белки обрабатываются SDS, денатурируя их и обеспечивая равномерный отрицательный заряд. После этого полоски IPG помещаются на полиакриламидный гель. Приложенное электрическое поле притягивает белки к аноду, при этом более крупные белки медленнее продвигаются через гель.

После того, как белковая смесь была разделена в соответствии с pI и молекулярной массой, карта протеома визуализируется с помощью красителей, и идентифицируются белки, представляющие интерес.

Теперь, когда мы рассмотрели принципы 2D-гель-электрофореза, давайте рассмотрим типичную лабораторную процедуру.

Перед проведением эксперимента белки должны быть солюбилизированы в среду. Солюбилизация образца достигается путем деагрегирования белков комбинацией хаотропных агентов для нарушения водород-связывающих взаимодействий, неионогенных детергенов для предотвращения изменения заряда белков, восстановителей для разрыва дисульфидных связей и буферов. Для удаления мешающих обильных белков и других молекул материал последовательно экстрагируется центрифугированием и сбором полученной гранулы; за этим следует лечение эндонуклеазой, ферментом, используемым для поглощения любой ДНК, которая может помешать эксперименту.

После того, как белки растворятся, полоски IPG готовят путем промывки раствором для чистки полосок и оставляют в перевернутом виде для высыхания. Затем каждой полосе присваивается номер держателя полосы. После готовности клеточный экстракт загружается на полоски медленным, скользящим движением от отрицательного к положительному концу. С целью регидратации на электрод и под гелевые полоски кладут влажную промокательную бумагу; затем полосы IPG накладываются на прибор IEF. Подается сильный электрический ток, и белки начинают мигрировать.

После завершения первого измерения гель для SDS-PAGE подготавливается в литейном аппарате. Полоски IPG обрабатываются путем помещения их лицевой стороной вниз в буфер уравновешивания, содержащий SDS. Блок электрофореза подготавливается с добавлением буфера для электрофореза. Обработанные полоски IPG собираются с помощью пинцета, помещаются поверх гелевых пластин и запечатываются агарозным герметизирующим раствором. Затем источник напряжения подает электрическое поле, которое удерживается до тех пор, пока самые быстро движущиеся белки не окажутся на расстоянии 1 см от дна геля.

После завершения электрофореза белки необходимо визуализировать. Традиционно это выполняется путем окрашивания синим или серебряным нитратом Кумасси. Представляющие интерес белки могут быть перенесены из геля и проанализированы с помощью вестерн-блоттинга.

Второй подход к идентификации включает в себя извлечение белков из геля, их расщепление, а затем анализ с помощью масс-спектрометрии.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые варианты использования 2D-гель-электрофореза.

Одним из наиболее распространенных применений этого метода является идентификация молекул, участвующих в инициации и прогрессировании заболевания. Двухмерный гель-электрофорез в сочетании с масс-спектрометрией может обнаружить повышение или понижение регуляции определенных белков в пораженных участках по сравнению со здоровыми.

Кроме того, 2D гель-электрофорез полезен для отслеживания развития реакции пациента на потенциальный терапевтический препарат. Образцы могут быть взяты у пациентов в различные моменты времени после начала лечения. Таким образом, 2D-гель-электрофорез в сочетании с вестерн-блоттингом или масс-спектрометрическим анализом может обнаруживать белки, связанные с негативными реакциями, такими как воспаление; или отсутствие белков в облегченном состоянии.

Еще одно применение 2D-гель-электрофореза заключается в изучении структуры и функции белка после посттрансляционной модификации, или ПТМ, которые являются добавками к белкам после их трансляции из мРНК. ПТМ могут регулировать различные функции, включая передачу сигналов белков, экспрессию генов или вызывать окислительное повреждение. 2D-гель-электрофорез чувствителен к модификациям, таким как метилирование или ацетилирование, которые могут вызвать сдвиг как pI, так и молекулярной массы.

Вы только что посмотрели видео JoVE о 2D-гель-электрофорезе. В этом видео описаны принципы работы методики, типичная экспериментальная процедура и несколько ее применений в области биомедицины.

Спасибо за просмотр!

Procedure

Двумерный гель-электрофорез (2DGE) — это метод, который может растворять тысячи биомолекул из смеси. Этот метод включает в себя два различных метода разделения, которые были связаны друг с другом: изоэлектрическую фокусировку (IEF) и электрофорез в полиакриламидном геле додецилсульфата натрия (SDS-PAGE). Это физически разделяет соединения по двум осям геля по их изоэлектрическим точкам (электрохимическое свойство) и их молекулярной массе.

Процедура, описанная в этом видео, охватывает основные понятия 2DGE и общую процедуру определения характеристик состава сложного белкового раствора. В разделе «Применение» показаны три примера этого метода, включая обнаружение биомаркеров для начала и прогрессирования заболевания, мониторинг лечения у пациентов и изучение белков после посттрансляционной модификации (ПТМ).

Двумерный, или 2D, гель-электрофорез — это метод, использующий два различных метода разделения, которые могут отделить тысячи белков от одной смеси. Один из методов, SDS-PAGE или электрофорез в полиакриламидном геле додецилсульфата натрия, не может полностью разделить сложные смеси в одиночку. Двухмерный гель-электрофорез связывает SDS-PAGE со вторым методом, изоэлектрической фокусировкой или IEF, который разделяет на основе изоэлектрических точек, что позволяет потенциально разрешать все белки в лизате клетки. В этом видео будут показаны принципы 2D-гель-электрофореза, общая процедура и некоторые из ее биомедицинских применений.

2D гель-электрофорез начинается с IEF в качестве первого измерения. Каждый белок имеет значение pH, называемое изоэлектрической точкой или pI, где суммарный заряд равен нулю. Когда белок подвергается воздействию электрического поля, он будет двигаться к электроду с противоположным зарядом. Представляющие интерес образцы загружаются на иммобилизованные полоски с градиентом pH, или IPG, в которые встроены амфолиты, молекулы, содержащие как кислотные, так и основные группы. Затем электрическое поле прикладывается к полоске градиента pH, заставляя белки мигрировать до тех пор, пока они не достигнут значения pH, соответствующего их pI, где они теряют свой суммарный заряд.

Перед запуском второго измерения встроенные белки обрабатываются SDS, денатурируя их и обеспечивая равномерный отрицательный заряд. После этого полоски IPG помещаются на полиакриламидный гель. Приложенное электрическое поле притягивает белки к аноду, при этом более крупные белки медленнее продвигаются через гель.

После того, как белковая смесь была разделена в соответствии с pI и молекулярной массой, карта протеома визуализируется с помощью красителей, и идентифицируются белки, представляющие интерес.

Теперь, когда мы рассмотрели принципы 2D-гель-электрофореза, давайте рассмотрим типичную лабораторную процедуру.

Перед проведением эксперимента белки должны быть солюбилизированы в среду. Солюбилизация образца достигается путем деагрегирования белков комбинацией хаотропных агентов для нарушения водород-связывающих взаимодействий, неионогенных детергенов для предотвращения изменения заряда белков, восстановителей для разрыва дисульфидных связей и буферов. Для удаления мешающих обильных белков и других молекул материал последовательно экстрагируется центрифугированием и сбором полученной гранулы; за этим следует лечение эндонуклеазой, ферментом, используемым для поглощения любой ДНК, которая может помешать эксперименту.

После того, как белки растворятся, полоски IPG готовят путем промывки раствором для чистки полосок и оставляют в перевернутом виде для высыхания. Затем каждой полосе присваивается номер держателя полосы. После готовности клеточный экстракт загружается на полоски медленным, скользящим движением от отрицательного к положительному концу. С целью регидратации на электрод и под гелевые полоски кладут влажную промокательную бумагу; затем полосы IPG накладываются на прибор IEF. Подается сильный электрический ток, и белки начинают мигрировать.

После завершения первого измерения гель для SDS-PAGE подготавливается в литейном аппарате. Полоски IPG обрабатываются путем помещения их лицевой стороной вниз в буфер уравновешивания, содержащий SDS. Блок электрофореза подготавливается с добавлением буфера для электрофореза. Обработанные полоски IPG собираются с помощью пинцета, помещаются поверх гелевых пластин и запечатываются агарозным герметизирующим раствором. Затем источник напряжения подает электрическое поле, которое удерживается до тех пор, пока самые быстро движущиеся белки не окажутся на расстоянии 1 см от дна геля.

После завершения электрофореза белки необходимо визуализировать. Традиционно это выполняется путем окрашивания синим или серебряным нитратом Кумасси. Представляющие интерес белки могут быть перенесены из геля и проанализированы с помощью вестерн-блоттинга.

Второй подход к идентификации включает в себя извлечение белков из геля, их расщепление, а затем анализ с помощью масс-спектрометрии.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые варианты использования 2D-гель-электрофореза.

Одним из наиболее распространенных применений этого метода является идентификация молекул, участвующих в инициации и прогрессировании заболевания. Двухмерный гель-электрофорез в сочетании с масс-спектрометрией может обнаружить повышение или понижение регуляции определенных белков в пораженных участках по сравнению со здоровыми.

Кроме того, 2D гель-электрофорез полезен для отслеживания развития реакции пациента на потенциальный терапевтический препарат. Образцы могут быть взяты у пациентов в различные моменты времени после начала лечения. Таким образом, 2D-гель-электрофорез в сочетании с вестерн-блоттингом или масс-спектрометрическим анализом может обнаруживать белки, связанные с негативными реакциями, такими как воспаление; или отсутствие белков в облегченном состоянии.

Еще одно применение 2D-гель-электрофореза заключается в изучении структуры и функции белка после посттрансляционной модификации, или ПТМ, которые являются добавками к белкам после их трансляции из мРНК. ПТМ могут регулировать различные функции, включая передачу сигналов белков, экспрессию генов или вызывать окислительное повреждение. 2D-гель-электрофорез чувствителен к модификациям, таким как метилирование или ацетилирование, которые могут вызвать сдвиг как pI, так и молекулярной массы.

Вы только что посмотрели видео JoVE о 2D-гель-электрофорезе. В этом видео описаны принципы работы методики, типичная экспериментальная процедура и несколько ее применений в области биомедицины.

Спасибо за просмотр!

Transcript

Двумерный, или 2D, гель-электрофорез — это метод, использующий два различных метода разделения, которые могут отделить тысячи белков от одной смеси. Один из методов, SDS-PAGE или электрофорез в полиакриламидном геле додецилсульфата натрия, не может полностью разделить сложные смеси в одиночку. Двухмерный гель-электрофорез связывает SDS-PAGE со вторым методом, изоэлектрической фокусировкой или IEF, который разделяет на основе изоэлектрических точек, что позволяет потенциально разрешать все белки в лизате клетки. В этом видео будут показаны принципы 2D-гель-электрофореза, общая процедура и некоторые из ее биомедицинских применений.

2D гель-электрофорез начинается с IEF в качестве первого измерения. Каждый белок имеет значение pH, называемое изоэлектрической точкой или pI, где суммарный заряд равен нулю. Когда белок подвергается воздействию электрического поля, он будет двигаться к электроду с противоположным зарядом. Представляющие интерес образцы загружаются на иммобилизованные полоски с градиентом pH, или IPG, в которые встроены амфолиты, молекулы, содержащие как кислотные, так и основные группы. Затем электрическое поле прикладывается к полоске градиента pH, заставляя белки мигрировать до тех пор, пока они не достигнут значения pH, соответствующего их pI, где они теряют свой суммарный заряд.

Перед запуском второго измерения встроенные белки обрабатываются SDS, денатурируя их и обеспечивая равномерный отрицательный заряд. После этого полоски IPG помещаются на полиакриламидный гель. Приложенное электрическое поле притягивает белки к аноду, при этом более крупные белки медленнее продвигаются через гель.

После того, как белковая смесь была разделена в соответствии с pI и молекулярной массой, карта протеома визуализируется с помощью красителей, и идентифицируются белки, представляющие интерес.

Теперь, когда мы рассмотрели принципы 2D-гель-электрофореза, давайте рассмотрим типичную лабораторную процедуру.

Перед проведением эксперимента белки должны быть солюбилизированы в среду. Солюбилизация образца достигается путем деагрегирования белков комбинацией хаотропных агентов для нарушения водород-связывающих взаимодействий, неионогенных детергенов для предотвращения изменения заряда белков, восстановителей для разрыва дисульфидных связей и буферов. Для удаления мешающих обильных белков и других молекул материал последовательно экстрагируется центрифугированием и сбором полученной гранулы; за этим следует лечение эндонуклеазой, ферментом, используемым для поглощения любой ДНК, которая может помешать эксперименту.

После того, как белки растворятся, полоски IPG готовят путем промывки раствором для чистки полосок и оставляют в перевернутом виде для высыхания. Затем каждой полосе присваивается номер держателя полосы. После готовности клеточный экстракт загружается на полоски медленным, скользящим движением от отрицательного к положительному концу. С целью регидратации на электрод и под гелевые полоски кладут влажную промокательную бумагу; затем полосы IPG накладываются на прибор IEF. Подается сильный электрический ток, и белки начинают мигрировать.

После завершения первого измерения гель для SDS-PAGE подготавливается в литейном аппарате. Полоски IPG обрабатываются путем помещения их лицевой стороной вниз в буфер уравновешивания, содержащий SDS. Блок электрофореза подготавливается с добавлением буфера для электрофореза. Обработанные полоски IPG собираются с помощью пинцета, помещаются поверх гелевых пластин и запечатываются агарозным герметизирующим раствором. Затем источник напряжения подает электрическое поле, которое удерживается до тех пор, пока самые быстро движущиеся белки не окажутся на расстоянии 1 см от дна геля.

После завершения электрофореза белки необходимо визуализировать. Традиционно это выполняется путем окрашивания синим или серебряным нитратом Кумасси. Представляющие интерес белки могут быть перенесены из геля и проанализированы с помощью вестерн-блоттинга.

Второй подход к идентификации включает в себя извлечение белков из геля, их расщепление, а затем анализ с помощью масс-спектрометрии.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые варианты использования 2D-гель-электрофореза.

Одним из наиболее распространенных применений этого метода является идентификация молекул, участвующих в инициации и прогрессировании заболевания. Двухмерный гель-электрофорез в сочетании с масс-спектрометрией может обнаружить повышение или понижение регуляции определенных белков в пораженных участках по сравнению со здоровыми.

Кроме того, 2D гель-электрофорез полезен для отслеживания развития реакции пациента на потенциальный терапевтический препарат. Образцы могут быть взяты у пациентов в различные моменты времени после начала лечения. Таким образом, 2D-гель-электрофорез в сочетании с вестерн-блоттингом или масс-спектрометрическим анализом может обнаруживать белки, связанные с негативными реакциями, такими как воспаление; или отсутствие белков в облегченном состоянии.

Еще одно применение 2D-гель-электрофореза заключается в изучении структуры и функции белка после посттрансляционной модификации, или ПТМ, которые являются добавками к белкам после их трансляции из мРНК. ПТМ могут регулировать различные функции, включая передачу сигналов белков, экспрессию генов или вызывать окислительное повреждение. 2D-гель-электрофорез чувствителен к модификациям, таким как метилирование или ацетилирование, которые могут вызвать сдвиг как pI, так и молекулярной массы.

Вы только что посмотрели видео JoVE о 2D-гель-электрофорезе. В этом видео описаны принципы работы методики, типичная экспериментальная процедура и несколько ее применений в области биомедицины.

Спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Двумерный гель-электрофорез SDS-PAGE изоэлектрическая фокусировка разделение белков гель-электрофорез биомедицинские приложения PI (изоэлектрическая точка) амфолиты иммобилизованные полоски градиента ph (IPG) денатурация полиакриламидный гель

Related Videos

Диализ: диффузионное разделение

Диализ: диффузионное разделение

Biochemistry

80.8K Просмотры

Ферментные анализы и кинетика

Ферментные анализы и кинетика

Biochemistry

135.0K Просмотры

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

Biochemistry

66.7K Просмотры

Тандемная масс-спектрометрия

Тандемная масс-спектрометрия

Biochemistry

46.9K Просмотры

Кристаллизация белка

Кристаллизация белка

Biochemistry

44.2K Просмотры

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Biochemistry

162.2K Просмотры

Метаболическое мечение

Метаболическое мечение

Biochemistry

13.3K Просмотры

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Biochemistry

45.9K Просмотры

Фотометрическое определение белка

Фотометрическое определение белка

Biochemistry

142.1K Просмотры

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Biochemistry

84.4K Просмотры

Коиммунопреципитация и анализы на понижение

Коиммунопреципитация и анализы на понижение

Biochemistry

73.1K Просмотры

Восстановление мембранных белков

Восстановление мембранных белков

Biochemistry

27.0K Просмотры

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Biochemistry

46.5K Просмотры

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Biochemistry

25.7K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code