-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Chemistry
Коиммунопреципитация и анализы на понижение
Коиммунопреципитация и анализы на понижение
JoVE Science Education
Biochemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biochemistry
Co-Immunoprecipitation and Pull-Down Assays

4.12: Коиммунопреципитация и анализы на понижение

72,890 Views
08:08 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Ко-иммунопреципитация (CoIP) и анализы pull-down являются тесно связанными методами выявления стабильных белок-белковых взаимодействий. Эти методы связаны с иммунопреципитацией — методом отделения целевого белка, связанного с антителом, от несвязанных белков. При CoIP связанный с антителом белок сам связывается с другим белком, который не связывается с антителом, после чего следует процесс разделения, который сохраняет белок-белковый комплекс. Разница в анализах заключается в том, что белки-приманки с аффинитетной меткой заменяют антитела, а аффинная хроматография используется для выделения белково-белковых комплексов.

В этом видео рассказывается о CoIP, понижающих анализах и их применении в лаборатории. В нем описан пошаговый протокол для каждого метода, включая реагенты, аппараты и инструменты, используемые для очистки и анализа связанных белков. Кроме того, в разделе «Приложения» этого видео описывается процедура изучения того, как белки миксовируса ингибируют нуклеопротеины гриппа, исследование роли ионов кальция в кальмодулине с помощью анализа pull-down и модифицированный анализ pull-down для характеристики переходных белковых взаимодействий.

Белок-белковые взаимодействия играют значительную роль в широком спектре биологических функций. Большинство белок-белковых взаимодействий и их биологические эффекты еще предстоит определить. Ко-иммунопреципитация, или CoIP, и pull-down анализы являются двумя тесно связанными методами идентификации стабильных белок-белковых взаимодействий. В этом видео будут рассмотрены принципы работы двух анализов, их общие лабораторные процедуры и применение этих методов.

CoIP и pull-down анализы являются вариантами иммунопреципитации, метода селективного выделения одного вида белка из сложного раствора. В эксперименте по иммунопреципитации антитело, специфичное к белку-мишени, может сформировать иммунный комплекс с этой мишенью в образце. Затем комплекс захватывают на твердой основе, обычно белке А, связанном с бусиной сефарозы. Любые незахваченные белки удаляются на этапах центрифугирования. Затем белок высвобождается из антитела и твердой основы путем кипячения в буфере для загрузки образцов SDS-PAGE.

Ко-иммунопреципитацию проводят таким же образом, за исключением того, что интактные белковые комплексы захватываются на твердой основе. Антитело связывается с белком-мишенью, который, в свою очередь, связывается с другим белком, на который антитело не нацелено. Как и при иммунопреципитации, белковый комплекс высвобождается из антител и твердой подложки путем кипячения в буфере для загрузки проб SDS-PAGE.

Pull-down анализы похожи на ко-иммунопреципитацию, отличаясь только использованием белка-приманки, в отличие от антитела. С помощью методов молекулярной биологии этот белок приманки создается с помощью аффинной метки, такой как ряд остатков гистидина. Эти аффинные метки описаны в статье «Разделение биомолекул на основе хроматографии». Затем белок захватывается на иммобилизованном аффинном лиганде, специфичном для метки. Затем захваченный белок инкубируется с образцом, который содержит белки, образующие комплексы с «приманкой». Белковый комплекс высвобождается из аффинной поддержки путем промывки раствором, содержащим конкурентный аналит, специфичный для метки на белке-приманке. Анализы pull-down полезны для подтверждения белковых взаимодействий, предсказанных с помощью ко-иммунопреципитации, и для обнаружения неизвестных белковых взаимодействий.

Теперь, когда мы обсудили принципы коиммунопреципитации и pull-down анализов, давайте рассмотрим их лабораторные процедуры.

Для начала давайте обсудим ко-иммунопреципитацию. К серии микрофуговых пробирок добавляют: буфер PBS и 50% раствор белка А-сефарозы, смоляно-белкового комплекса, который связывается с антителом. Пробирки с микрофугами вращаются для обеспечения правильного распределения, а затем смола промывается дополнительным буфером PBS. В микропробирки добавляют лизат клеток, содержащий нужный белок, и 2 мкг антитела, и смесь вращают в течение 1 ч при 4 °C. Шарики гранулируются центрифугированием, надосадочная жидкость отбрасывается, а бусины повторно трижды промываются буфером для удаления несвязанного белка. Гранулы, содержащие комплекс антитело-белок, находятся в буфере для восстановления SDS-PAGE для загрузки образца, для удаления комплекса из антитела и для анализа с помощью SDS-PAGE и иммуноблоттинга.

Теперь мы обсудим процедуру понижающих анализов: белок-приманка экспрессируется в плазмиде с соответствующей аффинной меткой. После достижения роста логарифмической фазы клетки лизируют, а затем центрифугируют. Взвешенные стрептавидин-сефарозные шарики, которые захватывают помеченный биотином «приманочный» белок, пипетируются в микрофуговую пробирку. Затем шарики центрифугируют, а надосадочную жидкость осторожно удаляют с помощью аспирации. Затем шарики промывают буфером, центрифугируют и удаляют надосадочную жидкость.

Клетки, содержащие предполагаемый белок «добычи», который имеет сродство к белку «приманки», собирают центрифугированием. Затем надосадочную жидкость добавляют в микропробирку, содержащую смолу, и инкубируют при 4 °C в течение 3 ч на шейкере. Затем смолу центрифугируют, надосадочную жидкость удаляют, а смолу промывают для удаления несвязанного белка. В смолу добавляют буфер для элюирования, и смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут на шейкере. Затем смолу центрифугируют, а надосадочную жидкость, содержащую нужный комплекс, анализируют с помощью иммуноблоттинга.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуры, давайте рассмотрим некоторые полезные применения ко-иммунопреципитации и анализов pull-down.

Ко-иммунопреципитация может быть полезна для лучшего понимания механизма действия ферментов. Устойчивые к миксовирусам или Mx-белки ингибируют широкий спектр вирусов, включая грипп А, механизм которого плохо изучен. Для изучения взаимодействия между белком Mx1 мыши и нуклеопротеином гриппа использовали ко-иммунопреципитацию.

Анализы на понижение оказались полезными для изучения эффектов вторых мессенджеров, которые представляют собой белки, передающие сигнал из клеточной среды. Они являются компонентом сигнального пути, в котором несколько белков взаимодействуют в ответ на сигналы окружающей среды. Ионы кальция действуют как вторичные посланники, связываясь с кальмодулином, который, в свою очередь, связывается с широким спектром белков, опосредуя многие типы биологических реакций. Без кальция белок не может связываться с кальмодулином. Был проведен анализ с понижением давления для проверки способности белков связываться с кальмодулином в присутствии или отсутствии ионов кальция.

Ко-иммунопреципитация и анализы pull-down обычно используются для анализа стабильных или сильных белковых взаимодействий, но не транзиторных. Недавняя разработка в области pull-down анализов, HaloTag, упростила изучение переходных белковых взаимодействий; HaloTag представляет собой генетически кодируемую метку для слияния белков, слитую с интересующим белком, способную химически реагировать с твердым носителем галоалканом. Если требуется функциональный анализ, белковый комплекс, за вычетом метки, может быть выделен целиком путем инкубации с протеазой вируса травления табака.

Вы только что посмотрели видео JoVE о ко-иммунопреципитации и анализах pull-down. В этом видео описаны принципы работы этих двух методов, общие лабораторные процедуры и некоторые из их применений.

Спасибо за просмотр!

Procedure

Ко-иммунопреципитация (CoIP) и анализы pull-down являются тесно связанными методами выявления стабильных белок-белковых взаимодействий. Эти методы связаны с иммунопреципитацией — методом отделения целевого белка, связанного с антителом, от несвязанных белков. При CoIP связанный с антителом белок сам связывается с другим белком, который не связывается с антителом, после чего следует процесс разделения, который сохраняет белок-белковый комплекс. Разница в анализах заключается в том, что белки-приманки с аффинитетной меткой заменяют антитела, а аффинная хроматография используется для выделения белково-белковых комплексов.

В этом видео рассказывается о CoIP, понижающих анализах и их применении в лаборатории. В нем описан пошаговый протокол для каждого метода, включая реагенты, аппараты и инструменты, используемые для очистки и анализа связанных белков. Кроме того, в разделе «Приложения» этого видео описывается процедура изучения того, как белки миксовируса ингибируют нуклеопротеины гриппа, исследование роли ионов кальция в кальмодулине с помощью анализа pull-down и модифицированный анализ pull-down для характеристики переходных белковых взаимодействий.

Белок-белковые взаимодействия играют значительную роль в широком спектре биологических функций. Большинство белок-белковых взаимодействий и их биологические эффекты еще предстоит определить. Ко-иммунопреципитация, или CoIP, и pull-down анализы являются двумя тесно связанными методами идентификации стабильных белок-белковых взаимодействий. В этом видео будут рассмотрены принципы работы двух анализов, их общие лабораторные процедуры и применение этих методов.

CoIP и pull-down анализы являются вариантами иммунопреципитации, метода селективного выделения одного вида белка из сложного раствора. В эксперименте по иммунопреципитации антитело, специфичное к белку-мишени, может сформировать иммунный комплекс с этой мишенью в образце. Затем комплекс захватывают на твердой основе, обычно белке А, связанном с бусиной сефарозы. Любые незахваченные белки удаляются на этапах центрифугирования. Затем белок высвобождается из антитела и твердой основы путем кипячения в буфере для загрузки образцов SDS-PAGE.

Ко-иммунопреципитацию проводят таким же образом, за исключением того, что интактные белковые комплексы захватываются на твердой основе. Антитело связывается с белком-мишенью, который, в свою очередь, связывается с другим белком, на который антитело не нацелено. Как и при иммунопреципитации, белковый комплекс высвобождается из антител и твердой подложки путем кипячения в буфере для загрузки проб SDS-PAGE.

Pull-down анализы похожи на ко-иммунопреципитацию, отличаясь только использованием белка-приманки, в отличие от антитела. С помощью методов молекулярной биологии этот белок приманки создается с помощью аффинной метки, такой как ряд остатков гистидина. Эти аффинные метки описаны в статье «Разделение биомолекул на основе хроматографии». Затем белок захватывается на иммобилизованном аффинном лиганде, специфичном для метки. Затем захваченный белок инкубируется с образцом, который содержит белки, образующие комплексы с «приманкой». Белковый комплекс высвобождается из аффинной поддержки путем промывки раствором, содержащим конкурентный аналит, специфичный для метки на белке-приманке. Анализы pull-down полезны для подтверждения белковых взаимодействий, предсказанных с помощью ко-иммунопреципитации, и для обнаружения неизвестных белковых взаимодействий.

Теперь, когда мы обсудили принципы коиммунопреципитации и pull-down анализов, давайте рассмотрим их лабораторные процедуры.

Для начала давайте обсудим ко-иммунопреципитацию. К серии микрофуговых пробирок добавляют: буфер PBS и 50% раствор белка А-сефарозы, смоляно-белкового комплекса, который связывается с антителом. Пробирки с микрофугами вращаются для обеспечения правильного распределения, а затем смола промывается дополнительным буфером PBS. В микропробирки добавляют лизат клеток, содержащий нужный белок, и 2 мкг антитела, и смесь вращают в течение 1 ч при 4 °C. Шарики гранулируются центрифугированием, надосадочная жидкость отбрасывается, а бусины повторно трижды промываются буфером для удаления несвязанного белка. Гранулы, содержащие комплекс антитело-белок, находятся в буфере для восстановления SDS-PAGE для загрузки образца, для удаления комплекса из антитела и для анализа с помощью SDS-PAGE и иммуноблоттинга.

Теперь мы обсудим процедуру понижающих анализов: белок-приманка экспрессируется в плазмиде с соответствующей аффинной меткой. После достижения роста логарифмической фазы клетки лизируют, а затем центрифугируют. Взвешенные стрептавидин-сефарозные шарики, которые захватывают помеченный биотином «приманочный» белок, пипетируются в микрофуговую пробирку. Затем шарики центрифугируют, а надосадочную жидкость осторожно удаляют с помощью аспирации. Затем шарики промывают буфером, центрифугируют и удаляют надосадочную жидкость.

Клетки, содержащие предполагаемый белок «добычи», который имеет сродство к белку «приманки», собирают центрифугированием. Затем надосадочную жидкость добавляют в микропробирку, содержащую смолу, и инкубируют при 4 °C в течение 3 ч на шейкере. Затем смолу центрифугируют, надосадочную жидкость удаляют, а смолу промывают для удаления несвязанного белка. В смолу добавляют буфер для элюирования, и смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут на шейкере. Затем смолу центрифугируют, а надосадочную жидкость, содержащую нужный комплекс, анализируют с помощью иммуноблоттинга.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуры, давайте рассмотрим некоторые полезные применения ко-иммунопреципитации и анализов pull-down.

Ко-иммунопреципитация может быть полезна для лучшего понимания механизма действия ферментов. Устойчивые к миксовирусам или Mx-белки ингибируют широкий спектр вирусов, включая грипп А, механизм которого плохо изучен. Для изучения взаимодействия между белком Mx1 мыши и нуклеопротеином гриппа использовали ко-иммунопреципитацию.

Анализы на понижение оказались полезными для изучения эффектов вторых мессенджеров, которые представляют собой белки, передающие сигнал из клеточной среды. Они являются компонентом сигнального пути, в котором несколько белков взаимодействуют в ответ на сигналы окружающей среды. Ионы кальция действуют как вторичные посланники, связываясь с кальмодулином, который, в свою очередь, связывается с широким спектром белков, опосредуя многие типы биологических реакций. Без кальция белок не может связываться с кальмодулином. Был проведен анализ с понижением давления для проверки способности белков связываться с кальмодулином в присутствии или отсутствии ионов кальция.

Ко-иммунопреципитация и анализы pull-down обычно используются для анализа стабильных или сильных белковых взаимодействий, но не транзиторных. Недавняя разработка в области pull-down анализов, HaloTag, упростила изучение переходных белковых взаимодействий; HaloTag представляет собой генетически кодируемую метку для слияния белков, слитую с интересующим белком, способную химически реагировать с твердым носителем галоалканом. Если требуется функциональный анализ, белковый комплекс, за вычетом метки, может быть выделен целиком путем инкубации с протеазой вируса травления табака.

Вы только что посмотрели видео JoVE о ко-иммунопреципитации и анализах pull-down. В этом видео описаны принципы работы этих двух методов, общие лабораторные процедуры и некоторые из их применений.

Спасибо за просмотр!

Transcript

Белок-белковые взаимодействия играют значительную роль в широком спектре биологических функций. Большинство белок-белковых взаимодействий и их биологические эффекты еще предстоит определить. Ко-иммунопреципитация, или CoIP, и pull-down анализы являются двумя тесно связанными методами идентификации стабильных белок-белковых взаимодействий. В этом видео будут рассмотрены принципы работы двух анализов, их общие лабораторные процедуры и применение этих методов.

CoIP и pull-down анализы являются вариантами иммунопреципитации, метода селективного выделения одного вида белка из сложного раствора. В эксперименте по иммунопреципитации антитело, специфичное к белку-мишени, может сформировать иммунный комплекс с этой мишенью в образце. Затем комплекс захватывают на твердой основе, обычно белке А, связанном с бусиной сефарозы. Любые незахваченные белки удаляются на этапах центрифугирования. Затем белок высвобождается из антитела и твердой основы путем кипячения в буфере для загрузки образцов SDS-PAGE.

Ко-иммунопреципитацию проводят таким же образом, за исключением того, что интактные белковые комплексы захватываются на твердой основе. Антитело связывается с белком-мишенью, который, в свою очередь, связывается с другим белком, на который антитело не нацелено. Как и при иммунопреципитации, белковый комплекс высвобождается из антител и твердой подложки путем кипячения в буфере для загрузки проб SDS-PAGE.

Pull-down анализы похожи на ко-иммунопреципитацию, отличаясь только использованием белка-приманки, в отличие от антитела. С помощью методов молекулярной биологии этот белок приманки создается с помощью аффинной метки, такой как ряд остатков гистидина. Эти аффинные метки описаны в статье «Разделение биомолекул на основе хроматографии». Затем белок захватывают на иммобилизованном аффинном лиганде, специфичном для метки. Затем захваченный белок инкубируется с образцом, который содержит белки, образующие комплексы с «приманкой». Белковый комплекс высвобождается из аффинной поддержки путем промывки раствором, содержащим конкурентный аналит, специфичный для метки на белке-приманке. Анализы pull-down полезны для подтверждения белковых взаимодействий, предсказанных с помощью ко-иммунопреципитации, и для обнаружения неизвестных белковых взаимодействий.

Теперь, когда мы обсудили принципы коиммунопреципитации и pull-down анализов, давайте рассмотрим их лабораторные процедуры.

Для начала давайте обсудим ко-иммунопреципитацию. К серии микрофуговых пробирок добавляют: буфер PBS и 50% раствор белка А-сефарозы, смоляно-белкового комплекса, который связывается с антителом. Пробирки с микрофугами вращаются для обеспечения правильного распределения, а затем смола промывается дополнительным буфером PBS. В микропробирки добавляют лизат клеток, содержащий нужный белок, и 2 г антитела, и смесь вращают в течение 1 ч при 4 °C. Шарики гранулируются центрифугированием, надосадочная жидкость отбрасывается, а бусины повторно трижды промываются буфером для удаления несвязанного белка. Гранулы, содержащие комплекс антитело-белок, находятся в буфере для восстановления SDS-PAGE для загрузки образца, для удаления комплекса из антитела и для анализа с помощью SDS-PAGE и иммуноблоттинга.

Теперь мы обсудим процедуру понижающих анализов: белок-приманка экспрессируется в плазмиде с соответствующей аффинной меткой. После достижения роста логарифмической фазы клетки лизируют, а затем центрифугируют. Взвешенные стрептавидин-сефарозные шарики, которые захватывают помеченный биотином «приманочный» белок, пипетируются в микрофуговую пробирку. Затем шарики центрифугируют, а надосадочную жидкость осторожно удаляют с помощью аспирации. Затем шарики промывают буфером, центрифугируют и удаляют надосадочную жидкость.

Клетки, содержащие предполагаемый белок «добычи», который имеет сродство к белку «приманки», собирают центрифугированием. Затем надосадочную жидкость добавляют в микропробирку, содержащую смолу, и инкубируют при 4 ? С в течение 3 ч на шейкере. Затем смолу центрифугируют, надосадочную жидкость удаляют, а смолу промывают для удаления несвязанного белка. В смолу добавляют буфер для элюирования, и смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут на шейкере. Затем смолу центрифугируют, а надосадочную жидкость, содержащую нужный комплекс, анализируют с помощью иммуноблоттинга.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуры, давайте рассмотрим некоторые полезные применения ко-иммунопреципитации и анализов pull-down.

Ко-иммунопреципитация может быть полезна для лучшего понимания механизма действия ферментов. Устойчивые к миксовирусам или Mx-белки ингибируют широкий спектр вирусов, включая грипп А, механизм которого плохо изучен. Для изучения взаимодействия между белком Mx1 мыши и нуклеопротеином гриппа использовали ко-иммунопреципитацию.

Анализы на понижение оказались полезными для изучения эффектов вторых мессенджеров, которые представляют собой белки, передающие сигнал из клеточной среды. Они являются компонентом сигнального пути, в котором несколько белков взаимодействуют в ответ на сигналы окружающей среды. Ионы кальция действуют как вторичные посланники, связываясь с кальмодулином, который, в свою очередь, связывается с широким спектром белков, опосредуя многие типы биологических реакций. Без кальция белок не может связываться с кальмодулином. Был проведен анализ с понижением давления для проверки способности белков связываться с кальмодулином в присутствии или отсутствии ионов кальция.

Ко-иммунопреципитация и анализы pull-down обычно используются для анализа стабильных или сильных белковых взаимодействий, но не транзиторных. Недавняя разработка в области pull-down анализов, HaloTag, упростила изучение переходных белковых взаимодействий; HaloTag представляет собой генетически кодируемую метку для слияния белков, слитую с интересующим белком, способную химически реагировать с твердым носителем галоалканом. Если требуется функциональный анализ, белковый комплекс, за вычетом метки, может быть выделен целиком путем инкубации с протеазой вируса травления табака.

Вы только что посмотрели видео JoVE о ко-иммунопреципитации и анализах pull-down. В этом видео описаны принципы работы этих двух методов, общие лабораторные процедуры и некоторые из их применений.

Спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Ко-иммунопреципитация анализ на понижение давления белок-белковые взаимодействия биологические функции CoIP иммунопреципитация иммунный комплекс твердая поддержка антитела виды белка сложный раствор гранулы сефарозы этапы центрифугирования восстанавливающий буфер для загрузки образцов SDS-PAGE

Related Videos

Диализ: диффузионное разделение

Диализ: диффузионное разделение

Biochemistry

80.5K Просмотры

Ферментные анализы и кинетика

Ферментные анализы и кинетика

Biochemistry

134.7K Просмотры

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

Biochemistry

66.2K Просмотры

Тандемная масс-спектрометрия

Тандемная масс-спектрометрия

Biochemistry

46.6K Просмотры

Кристаллизация белка

Кристаллизация белка

Biochemistry

44.1K Просмотры

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Biochemistry

161.6K Просмотры

Двумерный гель-электрофорез

Двумерный гель-электрофорез

Biochemistry

53.1K Просмотры

Метаболическое мечение

Метаболическое мечение

Biochemistry

13.2K Просмотры

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Biochemistry

45.8K Просмотры

Фотометрическое определение белка

Фотометрическое определение белка

Biochemistry

141.5K Просмотры

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Biochemistry

84.0K Просмотры

Восстановление мембранных белков

Восстановление мембранных белков

Biochemistry

26.8K Просмотры

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Biochemistry

46.3K Просмотры

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Biochemistry

25.6K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code