-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Анализ динамики актина, сцепления сцепления и тяговой силы для продвижения конуса роста
Анализ динамики актина, сцепления сцепления и тяговой силы для продвижения конуса роста
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Analyses of Actin Dynamics, Clutch Coupling and Traction Force for Growth Cone Advance

Анализ динамики актина, сцепления сцепления и тяговой силы для продвижения конуса роста

Full Text
3,871 Views
07:53 min
October 21, 2021

DOI: 10.3791/63227-v

Takunori Minegishi1, Ryosuke Fujikawa2, Ria Fajarwati Kastian1, Yuichi Sakumura2, Naoyuki Inagaki1

1Laboratory of Systems Neurobiology and Medicine, Division of Biological Science,Nara Institute of Science and Technology, 2Laboratory of Data-Driven Biology, Division of Biological Science,Nara Institute of Science and Technology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates the molecular mechanisms driving the movement of growth cones in neurons, focusing on the analysis of actin dynamics, clutch coupling, and traction forces involved in neuron advancement. By employing single speckle imaging and traction force microscopy, researchers can adapt these methods to study neuronal behavior using standard microscopy equipment.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Imaging Techniques

Background

  • Growth cones are essential for neuronal navigation and development.
  • Traction forces exerted by growth cones depend on actin dynamics.
  • Clutch coupling plays a critical role in the ability of growth cones to interact with their environment.
  • Understanding these mechanisms can provide insights into neuronal behavior.

Purpose of Study

  • To analyze the molecular processes involved in neuronal growth cone advancement.
  • To adapt imaging techniques for studying actin dynamics in neurons.
  • To evaluate traction forces linked to neuronal movement.

Methods Used

  • Single speckle imaging and traction force microscopy were employed.
  • The biological model used involved cultured neurons treated with TMR ligand and maintained under specific conditions for imaging.
  • Key steps included treating neurons, setting acquisition parameters, and analyzing images using specific software.
  • Images were processed to assess actin dynamics and traction forces, including tracking bead movements and calculating forces.

Main Results

  • The study yielded insights into F-actin retrograde flow within growth cones.
  • Imaging revealed the dynamics of actin and the mechanical properties of the substrate.
  • Traction force analysis enabled quantification of forces involved in growth cone movement.
  • Key findings illustrated how actin dynamics directly influence growth cone behavior.

Conclusions

  • This research enhances our understanding of neuronal migration mechanisms.
  • The methodologies developed may be applied to other areas of neuroscience.
  • The findings have implications for understanding neuronal development and pathology.

Frequently Asked Questions

What advantages do the employed imaging techniques offer?
The techniques allow for real-time observation of actin dynamics and force generation, facilitating the study of growth cone behavior in a live neuronal environment.
How are the cultured neurons treated for experiments?
Neurons are treated with TMR ligand at a dilution of one to 2000 in culture medium, followed by incubation under controlled conditions to enable imaging.
What types of data are obtained from traction force microscopy?
Traction force microscopy provides quantitative measurements of the forces exerted by growth cones, along with their interactions with the substrate.
How can these methods be adapted for other studies?
These techniques can be adapted for various biological contexts, as they utilize commercially available materials and standard microscopy setups.
Are there any limitations to the imaging techniques used?
While effective, the methods may have constraints related to imaging resolution and the specificity of signals from different molecular labels.

Чтобы продвинуться вперед, конусы роста должны оказывать тяговые силы против внешней среды. Генерация тяговых сил зависит от динамики актина и сцепления сцепления. В настоящем исследовании описаны методы анализа динамики актина, сцепления сцепления и тяговых сил для продвижения конуса роста.

Анализ связи однокраплевой визуализации и микроскопической силы тяги может анализировать молекулярные механизмы для продвижения конуса роста и навигации. В качестве методик используются коммерчески доступные материалы и стандартные микроскопы. Исследователи могут буквально адаптироваться к методам в своих исследованиях.

Начинают с обработки нейронов тетраметилродамином или лигандом TMR в разведении от одного до 2000 в питательной среде в день in vitro 3. Затем поддерживайте нейроны на уровне 37 градусов цельсия с 5% углекислого газа в течение одного часа. После инкубации промыть лиганд TMR три раза предварительно подогретым PBS.

Удалите PBS перед добавлением 0,5 миллилитра подогретой среды L-15 Лейбовица в нейроны. Поддерживайте нейроны на уровне 37 градусов Цельсия в течение одного часа. Затем включите эпифлуоресцентный микроскоп и установите состояние верхнего инкубатора на 37 градусов по Цельсию.

Затем поместите обработанные лигандом TMR нейроны в стеклянную нижнюю чашку на разогретом верхнем инкубаторе. Установите параметры получения изображения, такие как время экспозиции в 500 миллисекунд для флуоресцентных каналов Lifeact и HaloTag-actin и биннинг как 0,065 мкм на 0,065 мкм на пиксель с интервалом времени в три секунды для 50 кадров. После выбора ростового конуса, который сильно выражает Lifeact и еженедельно выражает HaloTag-актин.

Закройте поле на диафрагме, чтобы осветить минимальную область, включающую конус роста, и получить покадровые изображения. В день in vitro 3 замените культуральную среду 0,5 миллилитрами нагретой среды L-15 Лейбовица и поддерживайте нейроны в течение одного часа при температуре 37 градусов Цельсия. Для тракционной силовой микроскопии включите лазерный сканирующий конфокальный микроскоп и установите верхний инкубатор на 37 градусов цельсия.

Поместите нейроны на стеклянную нижнюю тарелку на заранее предупрежденном верхнем инкубаторе. Задайте параметры получения изображения, как описано в сценарии меню, и выберите конус роста, который сильно выражает усиленный зеленый флуоресцентный белок или EGFP. Сосредоточьтесь на поверхности геля и получайте покадровые изображения.

Когда это будет сделано, используйте программное обеспечение для обработки изображений для создания одноканальных стеков изображений RGB. Затем сохраните изображения в виде файлов tiff. Затем нанесите 100 микролитров массой 10% по объему додецилсульфата натрия или SDS, растворенного в дистиллированной воде, на стеклянную нижнюю посуду, чтобы расслабить гель-субстрат, высвобождая нейроны из субстрата.

Затем высиживают блюдо в верхнем инкубаторе в течение пяти минут при температуре 37 градусов Цельсия для стабилизации температуры. В лазерном сканирующем конфокальном микроскопе сосредоточьтесь на поверхности геля, чтобы получить изображение бусин в ненатянутой подложке. Создайте одноканальное RGB-изображение бусин в неустановленной подложке и сохраните это изображение в виде файла tiff.

Скачайте код анализа тягового усилия TFM2021 и откройте TFM2021 в MATLAB. Открыть главную. m в TFM2021 и запустите его.

Когда на экране появляется графический интерфейс пользователя. Нажмите на загрузить необученное, изображение подложки и выберите X-Y положение исправленного изображения бусины в ненапряженной подложке. Перейдите к загрузке флуоресцентных изображений бусин и выберите покадровый стек бусин изображений.

Затем нажмите «Загрузить изображения яркого поля», чтобы выбрать покадровое стековое изображение яркого поля, и используйте загрузку изображений GFP для выбора изображения стека EGFP. В раскрывающемся списке графического интерфейса пользователя выберите GFP перед нажатием на ROI, чтобы указать интересующую область прямоугольника, включая конус роста, щелкнув две точки на отображаемом изображении ячейки. После этого нажмите кнопку сохранения в графическом интерфейсе пользователя, чтобы сохранить выбранные изображения стека вместе с ROI в матовом файле.

Затем нажмите на spot detect и введите желаемое значение в диалоговом окне, чтобы определить пороговое значение для обнаружения бусин. Нажмите «Хорошо», чтобы начать расчет. После завершения расчета нажмите на дорожку графика, чтобы увеличить область, выбранную ранее, и отобразить обнаруженные бусины в виде белых точек.

Используйте выделенные бусины для разграничения полигональной области, которая включает правильные точки под конусом роста. Затем, нажав клавишу ВВОД на клавиатуре, белые точки в полигональной области превратятся в красный. Нажмите на оценку силы в графическом интерфейсе пользователя.

Затем введите значения для размера пикселя и модуля Юнга, как описано в рукописи. Поставьте значение коэффициента Пуассона равным 0,3 и выполните оценочную силу, чтобы начать расчет. Программа сохранит результаты расчета в файл формата электронной таблицы.

Флуоресцентные изображения конуса роста нейронов показали высокую экспрессию Lifeact, позволяющую визуализировать морфологию конуса роста под полностью открытой и узкой диафрагмой. Уровни экспрессии HaloTag-актина были очень низкими с тусклыми сигналами. Когда диафрагма соответствующим образом сужается, фоновые сигналы уменьшаются, и в конусе роста появляется одиночный акт в крапинках.

Исследователи, которые надлежащим образом достигнут всех шагов, будут наблюдать ретроградный поток F-актина в конусе роста. Жесткость полиакриламидного геля определяли путем расчета глубины углубления, вызванного весом микросферы. Лазерный сканирующий конфокальный микроскоп использовался для захвата изображений поверхности геля и дна микросферы.

Сигналы от флуоресцентных шариков не были видны на поверхности геля в области с отступом. Флуоресцентные изображения бусин, встроенных в полиакриламидный гель и нервный конус роста, показали бусины в их происхождении и смещенных положениях. Также наблюдался сигнал EGFP конуса роста.

Кимографы отображали движения бусины по сравнению с эталонной бусиной. При выполнении одной спекл-визуализации важно выбрать нейрон, который еженедельно выражает, как действовать под двумя минимальными площадями. При выполнении микроскопии силы тяги важна визуализация с высоким увеличением для точной концентрации силы тяги.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Неврология выпуск 176 конус роста ретроградный поток актина молекула сцепления молекула клеточной адгезии однокрапчатая визуализация микроскопия тяговой силы миграция нейронов руководство аксоном

Related Videos

Маркировка F-актин Колючая Заканчивается родамин-актина в проницаемыми нейронов конусы роста

09:14

Маркировка F-актин Колючая Заканчивается родамин-актина в проницаемыми нейронов конусы роста

Related Videos

15.1K Views

Полиакриламидные Гели для Invadopodia и тяговое усилие Анализы на клетках рака

08:48

Полиакриламидные Гели для Invadopodia и тяговое усилие Анализы на клетках рака

Related Videos

12.6K Views

Графический пользовательский интерфейс для отслеживания концентрации белка в программном сопровождении в динамических клеточных выпячиваниях

08:12

Графический пользовательский интерфейс для отслеживания концентрации белка в программном сопровождении в динамических клеточных выпячиваниях

Related Videos

7.8K Views

Микроманипуляции методы, позволяя анализ морфогенетических динамики и оборот цитоскелета регуляторов

12:52

Микроманипуляции методы, позволяя анализ морфогенетических динамики и оборот цитоскелета регуляторов

Related Videos

10.4K Views

Количественный анализ динамики края клетки во время распространения клеток

10:54

Количественный анализ динамики края клетки во время распространения клеток

Related Videos

5.9K Views

Рассечение механоферментных свойств процессивных миозидов с помощью сверхбыстрой силово-зажимной спектроскопии

09:38

Рассечение механоферментных свойств процессивных миозидов с помощью сверхбыстрой силово-зажимной спектроскопии

Related Videos

1.6K Views

Интегративный инструментарий для анализа клеточных сигналов: сил, движения, морфологии и флуоресценции

14:55

Интегративный инструментарий для анализа клеточных сигналов: сил, движения, морфологии и флуоресценции

Related Videos

4.3K Views

Непосредственное измерение сил в восстановленных активных пучках микротрубочек

07:47

Непосредственное измерение сил в восстановленных активных пучках микротрубочек

Related Videos

1.9K Views

Использование микрофлюидики и флуоресцентной микроскопии для изучения динамики сборки одноактиновых нитей и пучков

08:02

Использование микрофлюидики и флуоресцентной микроскопии для изучения динамики сборки одноактиновых нитей и пучков

Related Videos

3.1K Views

Восстановление и характеристика актин-микротрубочных композитов с перестраиваемой динамикой и механикой с приводом от двигателя

09:10

Восстановление и характеристика актин-микротрубочных композитов с перестраиваемой динамикой и механикой с приводом от двигателя

Related Videos

3.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code