June 15th, 2022
Дифференциальная динамическая микроскопия (ДДМ) сочетает в себе особенности динамического рассеяния света и микроскопии. Здесь представлен процесс использования DDM для характеристики восстановленных цитоскелетных сетей путем количественной оценки субдиффузной и клеточной динамики частиц в виментиновых сетях и баллистического движения активных миозин-управляемых актин-микротрубочек композитов.
Наш протокол может количественно оценивать динамику во многих системах, используя ряд методов оптической микроскопии. Мы выделяем, как этот метод может, в частности, помочь охарактеризовать динамику восстановленных сетей цитоскелетов. Основным преимуществом использования нашего программного пакета для дифференциальной динамической микроскопии является то, что он хорошо документирован, имеет несколько файлов анализа примеров и может быть легко адаптирован для изучения различных типов динамики.
Наш программный пакет может быть использован для количественной оценки динамики не только в восстановленных цитоскелетных сетях, но и в других мягких и биологически значимых материалах. На основе шкал времени и длины зонд получает последовательности изображений более 1000 кадров с помощью программного обеспечения для управления микроскопом, такого как Micro-Manager. В папке примеров, предоставленной в репозитории кода PyDDM, создайте копию файла параметров с именем example_parameter_file.yml.
Откройте этот EML-файл с помощью текстового редактора, такого как Блокнот +, или текстового редактора в JupyterLab. В скопированном EML-файле укажите каталог данных и имя файла, соответствующие последовательности изображений, подлежащих анализу. В разделе метаданных укажите размер пикселя и частоту кадров.
В разделе параметров анализа выберите параметры для расчета матрицы DDM, такие как количество различных времен задержки и самое длительное время задержки. Предоставьте подробную информацию о подгонке матрицы DDM или промежуточной функции рассеяния в разделе параметров подгонки, такую как имя модели и параметр модели, начальное предположение, нижняя граница и верхняя граница. Инициализируйте экземпляр класса анализа DDM, предоставив метаданные в параметрах анализа, передав имя файла EML с полным путем к файлу DDM-анализу.
Кроме того, можно передать метаданные и параметры в виде структуры данных словаря Python. Запустите функцию для вычисления матрицы DDM. Проверьте возвращенные данные с помощью связанных переменных и метаданных, которые хранятся в виде набора данных в пакете Xarray.
Затем осмотрите графики и рисунки, которые сохраняются в виде PDF-файла и каталога данных. На одном из этих графиков показан метод оценки фона по умолчанию. При необходимости измените метод, в котором оценивается фон, используя метод параметра background в EML-файле или в качестве необязательного аргумента ключевого слова для матрицы DDM функции calculate.
Инициализируйте экземпляр класса DDM fit, передав имя EML-файла, содержащего метаданные изображения и параметры подгонки. Перечислите доступные модели, выполнив функцию печати моделей подгонки. Укажите модель, которая будет использоваться в файле параметров EML или с помощью функции перезагрузить модель соответствия по имени.
Для каждого параметра в выбранной модели задайте начальные угадывания и границы, если они отличаются от значений, указанных в EML-файле, с помощью функций задайте начальное угадывание параметра и установите границы параметров. Выполните подгонку с помощью функции fit. Генерация графиков для проверки соответствия в зависимости q от параметров соответствия с помощью отчета о подгонке функции.
Проверьте выходные данные, включая рисунок с двумя на два подсюжета, показывающих матрицу DDM или ISF при четырех значениях q вместе с подгонкой. Используйте обзор классов DDM в среде Jupyter Notebook для построения матрицы DDM или ISF вместе с наиболее подходящим интерактивным способом. Нажатие на точку на графике времени распада по отношению к волновому числу покажет данные и соответствие.
Проверьте результаты подгонки, сохраненные в наборе данных Xarray, и используйте функцию два netCDF или встроенный модуль Python для сохранения этой структуры данных на диск. DDM-анализ проводили на серии изображений яркого поля из 0,6-микронных шариков в виментиновой сети и изображениях конфокального микроскопа из активной композитной сети актин-микротрубочек со спектрально отчетливыми флуоресцентными метками. Промежуточные функции рассеяния были построены как функция времени задержки при различных волновых числах и сети с концентрацией виментина 19 микромоляров и 34 микромолярия.
Длительное временное плато задержки функции при значении значительно выше нуля указывает на неэргодичность. Время распада тау, построенное как функция q для двух сетей с различными концентрациями виментина, показывает субдиффузное или замкнутое движение. Параметры неэргодичности c, построенные как функция q в квадрате для сети с 34 и 49 микромолярным виментином, показали, что логарифм c был пропорционален q в квадрате, как и ожидалось для ограниченного движения.
Графики среднего квадратного смещения и времени задержки показали, что значения, определенные на основе ДДМ, хорошо согласуются со значениями, полученными с помощью отслеживания отдельных частиц. Для более концентрированной сети значение плато в более длительное время задержки. Матрица DDM в сравнении со временем задержки для активной композитной сети актин-микротрубочки показала, что матрица DDM для конкретного значения q имела плато при низком времени задержки, а затем увеличивалась в дальнейшем плато в большие промежутки времени задержки.
Характерное время распада тау от прилегания к матрице DDM показывает, что связь между тау и q указывает на баллистическое движение. После разработки этого программного пакета PyDDM мы использовали его для исследования анизотропной и изменяющейся во времени динамики активных сетей цитоскелетов и других систем.
Эта статья представляет протокол, использующий Дифференциальную динамическую микроскопию (ДДМ) для анализа динамики восстановленных сетей цитоскелета. Метод количественно оценивает субдиффузионную и кейджированную динамику в сетях виментина и исследует баллистическое движение активных актин-микротрубочных композиций, управляемых миозином.
Quantitative analysis of cytoskeleton dynamics is critical for de-risking early-stage discovery and engineering of biomaterials with tunable mechanical properties. Differential Dynamic Microscopy (DDM) enables robust, reproducible measurement of network dynamics across diverse cytoskeletal systems, supporting predictive confidence in target validation and material design. This capability strengthens portfolio decisions by providing standardized, scalable dynamic readouts for both fundamental research and translational applications.
DDM-based quantification integrates from early discovery through assay development and preclinical research, providing a reusable analytical capability for cytoskeletal and soft material systems.