6 июня 2025 г.
Этот протокол описывает уникальную экспериментальную модель инфекций, связанных с имплантатами, которая позволяет одновременно инкубировать два имплантата с бактериями в идентичных условиях в пределах одной мыши. Он также позволяет точно оценить образование биопленки на поверхности имплантатов с помощью оптимизированных сравнительных аналитических методов, демонстрируя передовые методы оценки антимикробных свойств биоматериалов.
Наши исследования направлены на разработку инновационных методов лечения инфекций, связанных с имплантатами. Для оценки новых биоматериалов с потенциальными антимикробными свойствами мы разрабатываем более ценный подход к тестированию in vivo. Предыдущие модели на животных обычно ограничены возникновением одной инфекции, связанной с имплантатами, на животное, что может привести к значительной вариабельности средних результатов, полученных от нескольких животных.
Наша мышиная модель позволяет напрямую сравнивать два отпечатка, подвергшихся воздействию идентичных инфекционных условий в пределах одного животного, что дает ценную оценку антибактериальной активности. Наша экспериментальная методология in vivo ускорит исследования потенциально антимикробных биоматериалов, способствуя разработке новых методов лечения инфекций, связанных с имплантатами, в будущем. Наш экспериментальный подход может быть воспроизведен с помощью стандартного оборудования и простых процедур в обычных исследовательских условиях, что улучшает понимание механизмов антибактериальной активности.
Для начала поместите мышь под наркозом на операционную кровать. Наполните шприц объемом 10 миллилитров стерильным воздухом и прикрепите к выходному отверстию иглу 27 калибра. Теперь аккуратно зажмите и приподнимите основание шеи мыши, чтобы создать пространство между подкожной клетчаткой и фасцией.
Поместите иглу в среднюю линию между лопатками мыши и введите три миллилитра стерильного воздуха подкожно, чтобы создать воздушный мешочек. Затем верните мышь в клетку, утепленную термопрокладкой. Вводите три миллилитра стерильного воздуха каждые два дня, чтобы поддерживать надувание полости и создать зрелый мешочек.
После обезболивания животному подкожно вводят ему бупивакаин. Сделайте трехмиллиметровый продольный разрез по средней линии в верхней части мешка и вставьте иглу 18 калибра, содержащую соединенные провода, в мешочек через отверстие. Вытолкните провода с помощью внутреннего шприца спинальной иглы 25 калибра.
Оставив кончик иглы 18 калибра внутри пакета, осторожно извлеките внутренний цилиндр и осторожно введите культуру Xen36 с помощью шприца. Удалите все иглы, закройте кожу с помощью зажима для раны и заклейте местным клеем для кожи. Наконец, верните мышь в клетку, утепленную термопрокладкой для мониторинга.
Окрашивание кристаллическим фиолетовым цветом показало последовательное образование биопленки на обоих проводах без наблюдаемых различий. Измерения абсорбции с помощью анализа растворенного кристаллического фиолетового не показали статистически значимых различий в бактериальной нагрузке между двумя проводами. Подсчет колониеобразующих единиц и количественный ПЦР-анализ 16s рибосомальной РНК и генов LuxA не показали статистически значимых различий в бактериальной нагрузке между двумя проводами.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлена новая модель на мышах для изучения имплантат-ассоциированных инфекций, позволяющая одновременно оценивать два имплантата в идентичных условиях. Такой подход расширяет возможности оценки антимикробных свойств биоматериалов посредством точного анализа биопленок.
Надежное количественное определение образования биопленок на хирургических имплантатах является критически важной задачей в доклинических исследованиях биоматериалов.&D, что напрямую влияет на прогностическую достоверность антибактериальной эффективности. Данная модель мыши с двумя имплантатами позволяет проводить контролируемое количественное сравнение перспективных материалов в условиях единообразной инфекции, что снижает биологическую вариабельность и обеспечивает надежную валидацию мишени. Этот подход оптимизирует принятие решений по портфелю проектов на ранних стадиях, предоставляя воспроизводимые количественные данные для механистического снижения рисков при разработке новых антибактериальных биоматериалов.
Эта модель мыши с двойной имплантацией интегрируется в континуум от поиска до доклинических исследований, позволяя проводить раннюю количественную оценку антибактериальных биоматериалов и поддерживая приоритизацию наиболее перспективных соединений для дальнейшей разработки.