-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Ортотопическая трансплантация левого легкого у крыс
Ортотопическая трансплантация левого легкого у крыс
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Orthotopic Left Lung Transplantation in Rats

Ортотопическая трансплантация левого легкого у крыс

Full Text
834 Views
08:22 min
July 3, 2025

DOI: 10.3791/68106-v

Hailin Liao*1, Xiaohua Wang*1,2, Yi Lu*1, Wenshan Zhong1, Jiang Shi1, Xihui Huang1, Xu Chen1, Guilin Li1, Penghui Yang2, Chunrong Ju1,2

1State Key Laboratory of Respiratory Diseases, National Clinical Research Center for Respiratory Diseases, Guangzhou Institute of Respiratory Health,the First Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University, 2Department of Organ Transplantation,the First Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol describes an improved technique for orthotopic left lung transplantation in rats, focusing on reducing operational difficulty and improving survival rates. The standardized model allows for better investigation of post-transplant complications, particularly chronic rejection.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Transplantation Biology
  • Experimental Surgery

Background

  • Chronic rejection is a significant barrier to long-term graft survival.
  • Existing techniques for lung transplantation can be complex and difficult to reproduce.
  • A standardized model can facilitate research into post-transplant complications.
  • Improving operational efficiency can enhance survival rates in animal models.

Purpose of Study

  • To develop a reproducible left lung transplantation model.
  • To investigate mechanisms driving long-term graft failure.
  • To improve understanding of chronic rejection in lung transplants.

Methods Used

  • Preparation of donor lung using specific surgical techniques.
  • Use of intravenous catheters for lung transplantation.
  • Heparinization to prevent clot formation during surgery.
  • Post-operative monitoring of lung function via CT imaging.

Main Results

  • Successful transplantation with preserved lung function observed at six months.
  • No significant pathological changes in transplanted lungs compared to sham group.
  • Standardized model showed higher reproducibility and shorter learning curve.
  • Transplanted lungs maintained normal alveolar structures and absence of inflammation.

Conclusions

  • The improved technique enhances the feasibility of lung transplantation studies.
  • Standardization can lead to better understanding of chronic rejection.
  • This model can accelerate translational research for lung transplant recipients.

Frequently Asked Questions

What is the main focus of this study?
The study focuses on developing a standardized technique for left lung transplantation in rats to investigate post-transplant complications.
How does this technique improve upon existing methods?
It offers a shorter learning curve, single operational capability, and higher reproducibility.
What are the key findings regarding lung function post-transplant?
CT imaging showed that the ventilation of transplanted lungs was comparable to the sham group, indicating preserved lung function.
What surgical preparations are required for the donor lung?
The donor lung requires careful harvesting, heparinization, and preservation in saline until implantation.
What future research directions does this study suggest?
Future research will focus on studying chronic rejection to improve long-term survival rates of lung transplant recipients.

Этот протокол описывает усовершенствованную технику ортотопической трансплантации левого легкого у крыс, уделяя особое внимание снижению операционных трудностей и улучшению показателей выживаемости.

Мое исследование было сосредоточено на разработке стандартизированной, воспроизводимой модели трансплантации левого легкого для изучения посттрансплантационных осложнений, особенно хронического отторжения, и для лучшего понимания механизма, приводящего к долгосрочному отторжению трансплантата. Наш протокол обеспечивает более короткую кривую обучения, единую операционную возможность и более высокую воспроизводимость по сравнению с существующими методами. Наша стандартизированная модель прямой трансплантации легких обеспечивает надежную платформу для изучения осложнений после трансплантации легких и может ускорить трансляционные исследования для улучшения выживаемости трансплантата.

В будущем наша лаборатория сосредоточится на изучении хронического отторжения после трансплантации легких с целью улучшения долгосрочной выживаемости реципиентов трансплантата легких. Для начала приобретите внутривенные катетеры и лезвия 14 и 16 калибра. Обрежьте катетеры в манжету с хвостиком с лезвием.

Затем разделите каждую манжету на тело и хвост, каждый примерно два-три миллиметра в длину. С помощью скальпеля создайте поверхностные царапины на корпусе манжеты, чтобы увеличить трение для фиксации швов. Чтобы извлечь донорское легкое, отведите язык крысы под наркозом наружу и вверх с помощью щипцов.

Расположите хирургическую лампу спереди от шеи, чтобы четко освещать гортанное отверстие. Теперь введите внутривенную канюлю 14-го калибра в дыхательные пути через голосовую щель. Установите вентилятор в режим управления давлением.

Затем введите параметры веса, отрегулируйте давление до 15 сантиметров воды, и подключите аппарат ИВЛ. Наблюдайте за подъемом и опусканием грудной клетки, чтобы обеспечить синхронизацию с частотой работы аппарата ИВЛ. Далее зафиксируйте конечности и голову с помощью скотча или ограничителей.

Сделайте разрез по средней линии вдоль брюшной стенки. Введите гепарин через обнаженную брюшинную вену, затем дайте системному кровообращению в течение трех минут, чтобы обеспечить полную гепаринизацию. Разрежьте диафрагму и откройте грудную полость от средней линии грудины.

Затем зафиксируйте грудную стенку с обеих сторон с помощью гемостатика. Удаляют вилочковую железу, чтобы обнажить органы грудной полости. Последовательно разрежьте верхнюю полую вену, нижнюю полую вену, а также левую и правую ушные раковины.

Теперь введите холодный физиологический раствор в корень легочной артерии с помощью 20-миллилитрового шприца в течение одной минуты для перфузии под низким давлением до тех пор, пока донорское легкое не станет полностью белым. Разрежьте ткани, соединяющие донорское легкое, и извлеките донорское сердце и легкое в блоке. Замочите донорскую блокаду сердца и легких в предварительно охлажденном физрастворе.

Расположите блок искусственного кровообращения на льду под микроскопом. Обхватите трахею кровоостанавливающим средством и закрепите его в пластилине. Накройте легкие влажной стерильной бумагой для линз.

Теперь с помощью щипцов разделите легочную артерию, бронх и легочную вену под микроскопом. Перевязать бронх близко к легкому с помощью хирургических швов 6-0. С помощью пружинных ножниц разрежьте легочную артерию, бронхи и легочную вену.

Извлеките легочную артерию, бронх и легочную вену из соответствующих манжет, изготовленных из катетеров 16, 14 и 16 калибра. Закрепите стенки трубки на манжете с помощью 8-0 хирургические швы. Сохраните донорские легкие в физрастворе и поместите их обратно на лед до имплантации.

Депилируют левую торакодорсальную область животного-реципиента. Расположите животное в правой боковой позе пролежня на термостатическом операционном столе. Теперь сделайте разрез через кожу и грудную стенку в точке апикального импульса в четвертом межреберье, чтобы получить доступ к грудной полости.

Используйте ретрактор для век, чтобы открыть грудную полость. Затем аккуратно отодвиньте левое легкое в сторону с помощью влажного ватного тампона, чтобы обнажить и резко пересечь нижнюю легочную связку. Далее обхватите левое легкое щипцами и втяните его за пределы грудной полости.

Закрепите ворота гемостатом, затем стабилизируйте его пластилином. Теперь рассеките легочные ворота, чтобы разделить легочную артерию, легочную вену и бронх. Зажмите проксимальные концы легочной артерии, легочной вены и бронха с помощью сосудистых зажимов.

Предварительно перевяжите легочную артерию, бронх и легочную вену реципиента с 8-0 хирургические швы для быстрого анастомоза. Обрежьте платформу на зажатом левом легком реципиента, чтобы облегчить установку донорского легкого. Сделайте небольшие разрезы на дистальных концах легочной артерии, легочной вены и бронха.

Промойте легочную артерию и легочную вену гепаринизированным физиологическим раствором, чтобы предотвратить образование тромбов. Затем возьмите донорское легкое изо льда и расположите его на подготовленной платформе левого легкого реципиента. С помощью щипцов приподнимайте одну сторону отверстия для разреза, затем последовательно имплантируйте и перевязайте манжеты легочной артерии, легочной вены и бронха реципиенту.

Откройте микрогемостатический зажим и наблюдайте, как донорское легкое меняет цвет с белого на красный. Осмотрите участки анастомоза на наличие признаков кровотечения. Теперь удалите левое легкое реципиента и верните донорское легкое в грудную полость.

Насухо протрите грудную полость стерильной ватой. Затем послойно закройте грудную полость. Дождитесь самостоятельного восстановления дыхания, прежде чем отключать аппарат искусственной вентиляции легких.

Через час получатели могли свободно есть. Через шесть месяцев после трансплантации компьютерная томография показала, что вентиляция трансплантированных легких была сопоставима с фиктивной группой, что указывает на сохраненную функцию легких. Макроскопический вид легких не отличался заметно между фиктивной и трансплантированной группами, не проявляя признаков ухудшения или аномалии.

Окрашивание легочных тканей гематоксилином и эозином не выявило существенных патологических изменений в трансплантированных легких по сравнению с фиктивной группой, с сохранением альвеолярных структур и отсутствием воспалительной инфильтрации.

Explore More Videos

Медицина Выпуск 221 Трансплантация легких модель трансплантации легких крысы манжетная техника холодовая ишемия теплая ишемия

Related Videos

Ортотопическая задних конечностей трансплантации у крыс

14:03

Ортотопическая задних конечностей трансплантации у крыс

Related Videos

12.3K Views

Развитию облитерирующего бронхиолит в мышиной модели ортотопической трансплантации легких

10:01

Развитию облитерирующего бронхиолит в мышиной модели ортотопической трансплантации легких

Related Videos

21.2K Views

Ортотопической трансплантации печени у крыс

18:25

Ортотопической трансплантации печени у крыс

Related Videos

31.4K Views

Хирургические процедуры для крысиной модели частичного ортотопической трансплантации печени с печеночной артериальной реконструкции

18:47

Хирургические процедуры для крысиной модели частичного ортотопической трансплантации печени с печеночной артериальной реконструкции

Related Videos

37.4K Views

Крыса Гетеротопическая животе Сердце / Трансплантация одного легкого в объеме загружены Configuration

06:16

Крыса Гетеротопическая животе Сердце / Трансплантация одного легкого в объеме загружены Configuration

Related Videos

8.8K Views

Левый пневмонэктомия, в сочетании с Monocrotaline или Sugen как модель легочной гипертензии у крыс

07:29

Левый пневмонэктомия, в сочетании с Monocrotaline или Sugen как модель легочной гипертензии у крыс

Related Videos

11.4K Views

Иммунологическая модель для гетеротопической трансплантации сердца и сердечной мышечной клетки у крыс

09:25

Иммунологическая модель для гетеротопической трансплантации сердца и сердечной мышечной клетки у крыс

Related Videos

8.4K Views

Модель трансплантации легких крысы при теплой ишемии/реперфузионной травме: оптимизация для улучшения исходов

07:37

Модель трансплантации легких крысы при теплой ишемии/реперфузионной травме: оптимизация для улучшения исходов

Related Videos

3.5K Views

Ортотопическая трансплантация левого легкого на ювенильной модели свиньи для ESLP

06:55

Ортотопическая трансплантация левого легкого на ювенильной модели свиньи для ESLP

Related Videos

2.2K Views

Создание модели перфузии легких ex vivo на крысах для трансляционного анализа трансплантации легких

05:49

Создание модели перфузии легких ex vivo на крысах для трансляционного анализа трансплантации легких

Related Videos

1.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code