Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

Uitputting en reconstitutie van macrofagen in Muizen

Published: August 1, 2012 doi: 10.3791/4105

Summary

Macrofagen spelen een centrale rol in homeostase en pathologie in vele weefsels. Het protocol hier gepresenteerde beschrijft methoden voor uitputting van macrofagen

Abstract

Macrofagen zijn kritisch spelers in de aangeboren immuunrespons op infectueuze uitdaging of letsel, de inleiding van de aangeboren immuunrespons en de leiding van de verworven immuunrespons. Macrofagen disfunctie kan leiden tot een onvermogen om een ​​adequate immuunrespons en als zodanig, zijn in vele ziekteprocessen, zoals inflammatoire darmziekten. Macrofagen weer te geven gepolariseerde fenotypen die in het algemeen onderverdeeld in twee categorieën. Klassiek geactiveerde macrofagen, geactiveerd door stimulatie met IFNy of LPS, spelen een essentiële rol in reactie op bacteriële uitdaging terwijl alternatief geactiveerde macrofagen, geactiveerd door IL-4 of IL-13, deel te nemen aan puin wegvangen en weefselremodellering en zijn betrokken bij de resolutie fase van ontsteking. Tijdens een ontstekingsreactie in vivo, zijn macrofagen gevonden te midden van een complex mengsel van infiltrerende immuuncellen en kunnen deelnemen door verergeren of resolving ontsteking. De rol van macrofagen bepalen in situ in een geheel diermodel is worden onderzocht het effect van afbreken macrofagen van de complexe omgeving. Voor vragen over de rol van de macrofaag fenotype in situ te vragen, kan fenotypisch gedefinieerd gepolariseerde macrofagen worden ontleend ex vivo, uit het beenmerg zuigt en toegevoegd terug naar muizen, met of zonder voorafgaande uitputting van de macrofagen. In de hier gepresenteerde protocol clodronaat bevattende liposomen versus PBS geïnjecteerd controles werden gebruikt colon macrofagen afbreken in dextran natriumsulfaat (DSS) geïnduceerde colitis bij muizen. Daarnaast werden gepolariseerde macrofagen afgeleid ex vivo en overgedragen aan muizen door intraveneuze injectie. Een waarschuwing deze benadering is dat clodronaat bevattende liposomen afbreken alle professionele fagocyten, zowel dendritische cellen macrofagen, zodat om het effect waargenomen door depletie macrofagen specifieke reconstitutie of fenotype van adoptieve overdracht van macrofagen noodzakelijk. Systemische macrofaag depletie in muizen kunnen worden bereikt door het terugkruisen muizen op een CD11b-DTR achtergrond, hetgeen een uitstekende complementaire aanpak. Het voordeel van clodronaat bevattende liposoom-gemedieerde afbraak is dat het niet de tijd en kosten in terugkruisen muizen vereist en kan worden gebruikt bij muizen ongeacht de achtergrond van de muizen (C57BL / 6, BALB / c, of gemengd achtergrond ).

Protocol

1. Aantasten Macrofagen Met behulp van Clodronaat-bevattende liposomen

  1. Liposomen zijn opgeslagen bij 4 ° C. Twee uur voor de injectie, verwijder clodronaat-bevattende liposomen, PBS-bevattende liposomen, of steriele PBS (injectie controle) uit de koelkast zodat ze om te acclimatiseren op kamertemperatuur (18 ° C).
  2. Keren de buizen liposomen 8-10 maal om een ​​gelijkmatige verdeling ontstaat voor het laden 200 pi in een 1 ml spuit. Bevestig een 26 gauge naald voor aan de bovenkant van de spuit.
  3. Met behulp van je linkerhand, scruff de muis net onder de oren vasthouden genoeg de huid haar hoofd en ledematen te immobiliseren.
  4. Kantel de muis, zodat het hoofd iets naar de grond, zodat de inwendige organen af ​​te stappen van de injectieplaats, die is gelegen in de rechter kwadrant van de buik.
  5. Rol de spuit tussen uw handpalmen en keer het 6 keer om het liposoom gelijkmatig oplossing voor de injectie te verdelen.
  6. <li> Steek de naald in de rechter zijkant van de muis buik op een 30-40 graden. Injecteer 200 ul liposoom oplossing of PBS.
  7. Tijdens een geïnduceerde ontsteking model, zoals DSS-geïnduceerde colitis, injecteren muizen 4 dagen voor aanvang van de experimentele ontsteking tot uitputting van de inwoner macrofagen en om de 2 dagen te verzekeren tijdens het protocol bij nieuwe infiltrerende macrofagen afbreken.
  8. Aan het einde van het experiment, samen met de geplande experimentele analyses, verwijder weefsels van de plaats van belang en bevestig deze met paraformaldehyde tot macrofagen uitputting te bevestigen door immunohistochemische kleuring.

2. Afleiding van gepolariseerde Macrofagen uit beenmerg aspiratae

  1. Beenmerg van muizen tussen 8 en 12 weken bepaald de hoogste opbrengst van beenmerg-afgeleide macrofagen. Euthanaseren van de muis, leg het op zijn rug, en vast te pinnen zijn poten, dat zich uitstrekt zijn ledematen zoveel mogelijk.
  2. Werken in een steriele hood, verwijder het dijbeen en de dij-, weg te snijden zo veel spieren mogelijk te maken.
  3. Spoel beenmerg van beenderen met IMDM met 10% FCS geladen in een 5 ml uitgerust met een 26 gauge naald.
  4. Verdun beenmerg zuigt 40 ml in IMDM met 10% FCS, plaats cellen in een 75 cm2 weefselkweek erlenmeyer, en incuberen bij 37 ° C, 5% CO2 gedurende 4 uur. Deze stap verwijdert hechtende mesenchymale cellen of rijpe macrofagen van hematopoietische voorlopercellen.
  5. Transfer kweeksupernatant met niet-hechtende voorlopers 50 ml Falconbuis conische en centrifugeer 5 min bij 1200 rpm.
  6. Hersuspenderen celpellet in 5 ml IMDM, 10% FCS en tellen kern cellen door verdunnen celsuspensie 1 20 in azijnzuur. Deze procedure lyseert alle cellen met inbegrip van rode bloedcellen en de overige kernen kan worden gerekend op een hemocytometer.
  7. Hersuspenderen cellen bij een concentratie van 0,5 x 10 6 cellen / ml in compleet medium, IMDM, 10% FCS, 150 uM monothioglycerol (MTG), en 10 ng / ml van een MCSF, GM-CSF of IL-3. MCSF-afgeleide macrofagen zijn klassiek geactiveerde macrofagen terwijl GM-CSF-of IL-3-afgeleide macrofagen worden afwisselend geactiveerd.
  8. Vervang medium op dag 4, te stoppen met draaien niet-hechtende cellen en de terugzending daarvan aan de kolf, en op dag 7 en gooi niet-hechtende cellen.
  9. Bovendien kan IFNy (10 ng / ml) of IL-4 (10 ng / ml) toegevoegd flesjes MCSF-afgeleide cellen op dag 7 schuin macrofagen een klassiek geactiveerd of alternatief geactiveerd fenotype, respectievelijk. Incubeer cellen voor 3 dagen.
  10. Op dag 10, verwijder media en til cellen off van de weefselkweek fles met behulp van Cell Dissociation Buffer (Gibco-BRL). Place 5 ml buffer op cellen gedurende 5 min bij kamertemperatuur (18 ° C) en stoten de zijkant van de kolf met de hiel van de handpalm enkele malen stevig. Zorg ervoor dat de cellen zijn gestart van de kolf door onderzoek van de kolf onder eenmicroscoop. Pipet geresuspendeerd cellen in een 15 ml Falcon buis konische en was de kolf met een extra 10 ml IMDM, 10% FBS. Pool en spin down van de cellen gedurende 5 min bij 300 × g.
  11. Tellen levensvatbare cellen door een hemocytometer en hersuspenderen bij een concentratie van 10 7 cellen / ml in steriel PBS pH 7,4. Macrofagen zijn er klaar voor injectie in muizen.
  12. Reserve 1,0 × 10 6 macrofagen voor de beoordeling van de macrofaag fenotype. Klassiek geactiveerde macrofagen gestimuleerd met lipopolysaccharide scheiden een hoog niveau van stikstofoxide en IL-12p70 en lage niveaus van IL-10 in vergelijking met alternatief geactiveerde macrofagen. Ook geactiveerde macrofagen constitutief drukken YM1 en arginase I (Argi), dat kan worden gedetecteerd door Western immunoblotting.

3. Overmaking van macrofagen in muizen

  1. Hersuspenderen macrofagen in steriele PBS in een concentratie van 10 7 cellen / ml. Dit maakt een intravenous injectie van 10 6 macrofagen in een totaal volume van 100 pi, die een volume kan worden veilig en gemakkelijk in muizen geïnjecteerd staartader.
  2. Warm muizen met behulp van een verwarmingselement of warmte schoot gedurende 5-10 minuten tot de staartader verwijden. Bewaken van de muis te allen tijde op tekenen van hyperthermie.
  3. Breng de muis om een ​​beveiligingssysteem dat de toegang tot de staart aderen mogelijk maakt.
  4. Draai de staart 90 °, zodat de ader naar boven is gericht. Aders lopen zijwaarts op beide zijden van de staart en een ader kan worden gebruikt.
  5. Reinig de injectieplaats met een alcoholdoekje en injecteer langzaam 100 ul (10 6 macrofagen) met een 1 ml spuit met een 26 of 28 gauge naald. Steek de naald met de schuine kant naar boven en onder een lichte hoek, bijna parallel aan de ader.
  6. Als de naald correct is geplaatst zonder weerstand moet worden gevoeld en de ader moet duidelijk worden na de injectie. Als de naald zich niet in deader, de staart zal bult. Als dit gebeurt, verwijder de naald en probeer het opnieuw proximaal van de laatste poging of in de andere ader. Een nieuwe naald moet worden gebruikt voor elke injectie als de staart is taai en de naalden dof snel tijdens staartader injectie.
  7. Na de injectie, verwijder de naald, druk zachtjes op de injectieplaats tot de bloeding stopt, en toezicht houden op de muis voor een extra 5min om ervoor te zorgen dat de bloeding is gestopt.
  8. Herhaal macrofaag injecties om de 4 dagen een continue levering van gepolariseerd macrofagen tijdens de experimentele procedure te garanderen.
  9. Aan het einde van het experiment, samen met experimentele analyses, verwijder weefsels van de plaats van belang en bevestig deze met paraformaldehyde of formaline tot het effectief bereiken van gepolariseerd macrofagen door immunohistochemische kleuring te bevestigen.

4. Representatieve resultaten

Het aantal en de fenotype van de ingezeten macrophages in elk weefsel afhankelijk van het weefsel onderzocht en zal veranderen infectie of ontsteking. Ook zal het vermogen van clodronaat bevattende liposomen macrofagen putten uit een weefsel afhangen van de route van toediening en effectieve de doelweefsel. Intraperitoneale injectie van clodronaat bevattende liposomen resulteert in een afname F4/80 + macrofagen in de muis colon bij DSS colitis-zichtbaar door immunohistochernische kleuring voor het macrofaag marker F4/80 (figuur 1A). Histologische vlekken kunnen ook worden gebruikt om kwantitatieve verschillen in macrofagen aantal en fenotype in weefselcoupes bepalen. Figuur 1b toont dat gemiddeld 55% van macrofagen is uitgeput door clodronaat bevattende liposomen in vergelijking met geen afbraak gedetecteerd muis zuilen bij muizen geïnjecteerd PBS alleen een injectie controle. Elke waarde wordt bepaald door het tellen van F4/80 en Argi vleked positieve cellen in serie weefselcoupes van 6 muizen op 3 punten, in 3 delen per muis met het tellen wordt uitgevoerd door twee personen blind voor experimentele conditie. Deze resultaten demonstreren dat intraperitoneale injecties clodronaat liposomen colon bij muizen macrofagen afbreken.

Afleiding van macrofagen van beenmerg in de aanwezigheid van verschillende groeifactoren opbrengst macrofagen die klassiek geactiveerd (MCSF gewonnen of MCSF afkomstige en behandeld met IFNy) of geactiveerde (GM-CSF of IL-3 afgeleide of MCSF afgeleid en behandeld met IL-4). Vlissingen beenmerg van 2 dijbeen en 2 dij van een 8 weken oude muis meestal levert 6 × 10 7 cellen met een kern per muis en levert 8 × 10 6 MCSF-afgeleide macrofagen, 10 × 10 6 GM-CSF-afgeleide macrofagen, of 12 × 10 6 IL-3 afgeleide macrofagen. Figuur 2A toont sup nitriet en IL-12p70/IL-10 verhouding macrofaagernatants behandeld met lipopolysaccharide 24 uur Figuur 2B toont een typische Western blot analyse van 0,5 x 10 6 macrofagen van MCSF + / -. IL-4 afleiding voorwaarden onderzocht met antilichamen voor alternatief geactiveerde macrofagen markers, Argi, YM1 of met een GAPDH laden van controle. Deze gegevens tonen aan dat het beenmerg-afgeleide macrofagen kunnen worden scheef naar een gepolariseerde fenotype tijdens de afleiding.

Efficiënte overdracht van ex vivo verkregen gepolariseerde macrofagen een weefsel is afhankelijk van de wijze van toediening en de toegang tot het weefsel. Tijdens de DSS-geïnduceerde colitis, macrofagen intraveneus te reizen naar de plaats van de ontsteking en als alternatief geactiveerde macrofagen te verminderen ernst van de ziekte. Figuur 3A toont het totale aantal van macrofagen en het aantal Argi + (als alternatief geactiveerd) macrofagen geteld in histologische coupes van muizen geïnjecteerd met gepolariseerde beenmergAfgeleid macrofagen. De impact van de overdracht van gepolariseerd macrofagen om de dikke darm tijdens DSS-geïnduceerde colitis wordt aangegeven door activiteit van de ziekte-index, een additief score op basis van gewichtsverlies, rectale bloedingen en een verminderde consistentie van de ontlasting (Figuur 3B). Deze resultaten tonen aan dat de ex vivo verkregen, adoptief overgedragen macrofagen kan het verkeer naar de dikke darm en de impact geïnduceerde ontsteking. M1 macrofagen hebben geen invloed op ontstekingen terwijl M2 macrofagen aanzienlijk verminderen ziekte activiteit index.

Figuur 1
Figuur 1. Clodronaat-bevattende liposomen effectief F4/80 afbrekende + en F480 + Argi + cellen in muis dubbele punten in vivo. Een F2 generatie van wild-type muizen op een gemengde C57BL / 6 × 129Sv achtergrond kregen 5% DSS voor 7 dagen en geïnjecteerde IP met PBS (Control) of clodronaat-bevattende liposomen (Clodronaat) 4 dagen voorafgaand aan de behandeling DSSen op dag 0, 2, 4 en 6 in DSS behandeling. (A) dikke darmen werden verwijderd, vast, en secties werden gekleurd door immunohistochemie voor de rijpe macrofagen (F4/80) en de M2 ​​macrofaag marker, Argi. (B) Kwantificering van F4/80 + en + Argi macrofagen. Positief gekleurde cellen werden geteld door twee personen blind voor experimentele conditie bij 40 x vergroting in 6 velden van 3 secties / muis en vanaf 6 muizen / groep. * P <0.01.

Figuur 2
Figuur 2. MCSF-afgeleide macrofagen drukken een klassiek geactiveerde fenotype en MCSF-afgeleide macrofagen behandeld met IL-4 te drukken een alternatief geactiveerde macrofagen fenotype. (A) Overeenkomstig een klassiek geactiveerde fenotype MCSF afgeleide macrofagen produceren hogere stikstofmonoxide in reactie op lipopolysaccharide en kan gemeten worden door de Griess test, die het stroomafwaartse metaboliet nitriet detecteert. Ze ALSo produceren hogere IL-12p70/IL-10 verhouding die kan worden gemeten met ELISA. * P <0,01 voor n = 3. (B) Overeenkomstig een alternatief geactiveerde fenotype MCSF afgeleide macrofagen behandeld met IL-4 constitutief express YM1 en Argi, dat kan worden gedetecteerd door Western immunoblotting. De gegevens zijn representatief voor drie onafhankelijke experimenten met vergelijkbare resultaten.

Figuur 3
Figuur 3. Intraveneuze geïnjecteerd, ex vivo-afgeleid alternatief geactiveerde macrofagen verkeer naar de dikke darm en vermindering van intestinale ontsteking. Een F2 generatie van wild-type muizen op een gemengde C57BL / 6 × 129Sv achtergrond kregen 5% DSS in het drinkwater voor zes dagen. M1 en M2 macrofagen werden geïnjecteerd IV op de dagen 0 en 4 tijdens de DSS-behandeling. (A) dikke darmen werden verwijderd, vast, en secties werden gekleurd door immunohistochemie voor de rijpe macrofagen (F4/80) en een M2-macrofaag marker (Argi).Kwantificering van macrofagen de controle PBS geïnjecteerde muizen (C) werden muizen geïnjecteerd met M1 macrofagen (+ M1) en muizen ingespoten met M2 macrofagen (+ M2) uitgevoerd door het tellen positief aangekleurde cellen bij 40 x vergroting in 6 gebied van 3 delen / muis en van 6 muizen / groep. Tellen werd uitgevoerd door twee personen blind voor experimentele conditie. (B) ziekte-activiteit werd gevolgd en dagelijks gescoord tijdens de behandeling en is een additief score op basis van gewichtsverlies, rectale bloedingen en een verminderde consistentie van de ontlasting. * P <0,05 voor n = 6 muizen 2 onafhankelijke experimenten.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Macrofagen zijn fagocyterende cellen die een belangrijke rol in het immuunsysteem spelen. Zij zijn verantwoordelijk voor de inleiding van de aangeboren immuunrespons en de leiding van de verworven immuunrespons. Typisch, zijn klassiek geactiveerde macrofagen geactiveerd door IFNy of LPS en zijn verantwoordelijk voor het elimineren van pathogenen en het monteren van een ontstekingsreactie 1. Omgekeerd worden afwisselend geactiveerde macrofagen geactiveerd door IL-4 of IL-13 en een rol puin spoelen en weefselremodellering tijdens het oplossen van ontsteking 1. Gespecialiseerd macrofagen in de darm behouden hun bacteriedodende werking, maar niet te monteren een pro-inflammatoire respons 2. Deze tolerantie is om de gunstige flora en voedsel antigeen maakt voor de goedkeuring van materiaal dat inbreuk maakt op de epitheliale barrière zonder tot een ongeschikt en mogelijk pathologische immuunrespons 3. Afwijkende colon macrofaag-functie kan een bijdrage leverenom pathologische aandoeningen zoals inflammatoire darmziekten, prikkelbare darm syndroom, en colorectale kanker 3-5. Macrofaag fenotype is afhankelijk van de lokale micro-omgeving, zodat het definiëren van hun rol in gezondheid of ziekte kan een uitdaging zijn. Het protocol beschreven maakt macrofaag depletie van de in vivo omgeving. Bovendien, om de rol van de macrofaag fenotype in situ te onderzoeken, kan fenotypisch gedefinieerd gepolariseerde macrofagen worden ontleend ex vivo uit het beenmerg zuigt en adoptief overgebracht naar muizen, met of zonder voorafgaande uitputting van de macrofagen.

Clodronaat bevattende liposomen bevorderen macrofaag "zelfmoord" en zijn gebruikt om macrofagen putten in verschillende weefsels 6. Macrofagen fagocyteren clodronaat bevattende liposomen, die vervolgens afgebroken door lysosomale fosfolipasen vrijgeven van de clodronaat in de cel en het induceren apoptose 12 12. Liposomen moet gelijkmatig worden verdeeld in oplossing voordat u in de spuit en voor injectie in de muis, ongeacht de wijze van toediening of doelweefsel. PBS injecties en de injectie van PBS-bevattende liposomen zijn verplicht bepaalt wanneer uitputting van macrofagen in vivo met clodronaat-bevattende liposomen 7. PBS-bevattende liposomen lijkt een betere controle dan de PBS-injecties alleen zijn. Het is echter belangrijk op te merken dat sommige rapporten succes gebruikt PBS bevattende liposomen als controle; we en anderen hebben gerapporteerd dat PBS bevattende liposomen kan afbreken macrofagen in experimentele omstandigheden 8, 9. Bovendien zijn liposomen alleen gemeld aan fagocytose remmen tijdelijk 10. Macrofaag uitputting door PBS-bevattende liposomen kan afhankelijk zijn van phagocytic vermogen en kan verschillen afhankelijk van muizenstam, genetische achtergrond, weefsel, en / of experimentele voorwaarden. Het gebruik van PBS bevattende liposomen als controle en hun effect op macrofaag depletie in een specifieke toepassing moet experimenteel bepaald worden. Daarom raden wij dat zowel PBS en PBS-bevattende liposomen worden gebruikt als injectie controles tijdens de eerste experimenten.

Een cruciale overweging bij het ontwerpen van macrofagen uitputting experimenten is de wijze van toediening van clodronaat-bevattende liposomen. We hebben met succes gericht colon macrofagen in muizen met behulp van intraperitoneale injectie 8. Anderen hebben gebruikt intrarectal toediening of intraveneuze injecties 9, 11. Intrarectal en intraperitoneale toediening hebben beide gemeld dat ongeveer 50% van de colon macrofagen afbrekende dat de intraveneuze injectie is gemeld dat het maximaal uitputten tot 90% van macrofagen uit de laminapropria 8, 9, 11. Wij hebben gekozen voor intraperitoneale injecties om clodronaat-bevattende liposomen te wijten aan de eenvoud van de techniek te leveren uit te voeren en omdat studies vergelijkbaar met die van ons hebben met succes gebruik gemaakt van deze wijze van toediening 7. Echter, als een hogere mate van uitputting in de dikke darm nodig zijn voor een experiment, kan intraveneuze injectie te verbeteren uitputting.

Wijze van toediening is een belangrijke overweging voor de macrofaag uitputting in verschillende weefsels. Intraperitoneale injecties zijn gebruikt om peritoneale, omentum, parathymic lymfeklieren, lever en milt macrofagen 12 afbreken. Intraveneuze injecties zijn gebruikt om macrofagen putten in de lever, milt en beenmerg 12. Intraventriculaire toediening van clodronaat-bevattende liposomen is gebruikt om perivasculaire macrofagen en meningeale putten uit de kleine hersenen, grote hersenen en het ruggenmerg 12. Intratrachealeen intranasale toediening van clodronaat bevattende liposomen zijn gebruikt om alveolaire afbreken. Ten slotte is de lokale overheid met succes gebruikt om testiculaire en vitreale macrofagen 12, 13 afbreken. De werkzaamheid van macrofagen uitputting in een doelweefsel moet proefondervindelijk worden bepaald en gevalideerd door middel van kleuring weefsels door immunohistochemie (figuur 1A) of door middel van flowcytometrie. In sommige gevallen kan het nodig zijn de macrofagen uitputting verhogen. De variabelen kunnen worden geoptimaliseerd depletie verhogen-andering van de route van clodronaat bevattende liposomen toediening, de hoeveelheid clodronaat bevattende liposomen per injectie en / of de frequentie van injectie.

Een belangrijke overweging bij de interpretatie van gegevens bij uitputting van macrofagen met clodronaat-bevattende liposomen is dat alle professionele fagocyten zijn uitgeput, met inbegrip van dendritische cellen. Om eenbiologisch effect wordt macrofaag-afhankelijk is, worden complementaire reconstitutie experimenten nodig. Het afleiden van macrofagen uit het beenmerg aspiratie is een handig hulpmiddel voor reconstitutie experimenten en onderzoek te onderzoeken macrofaag functie. We hebben succes deze protocol in vitro studies naar de rol van de PI3K signaalweg subsidiair activering van macrofagen 14. Er zijn twee belangrijke stap in de afleiding proces. In de eerste plaats de naleving uitputting stap is cruciaal voor hechtende cellen uit het beenmerg aspiraten te verwijderen, of besmetten mesenchymale cellen of volwassen hematopoietische cellen. Ten tweede dient macrofaag fenotype voorafgaand bevestigd op hun gebruik in experimentele procedures. Een wijziging van dit protocol is dat verschillende genetische modellen kunnen worden gebruikt voor macrofagen afleiding en reconstitutie, waardoor onderzoek naar de rol van specifieke genen in macrofaag fenotype en functie in vitro eend in vivo. Voor reconstitutie experimenten, intraveneuze injectie is de meest voorkomende wijze van macrofagen levering maar beide cel hoeveelheid en injectie frequentie kan worden geoptimaliseerd voor een specifieke studie. Retro-orbitale injecties worden gebruikt voor de bereiding en moet soortgelijke resultaten. Van de nota, worden macrofagen aangetrokken om plek van de ontsteking en hun fenotype kan worden gewijzigd in reactie op signalen van hun micro-omgeving. Tenslotte kan adoptieve overdracht voldoende om macrofagen leveren aan een doelweefsel doch vóór verarming van residente weefselmacrofagen noodzakelijk zijn om instelling van adoptief overgedragen macrofagen mogelijk.

De hier beschreven protocol heeft een aantal voordelen boven bestaande methoden. Een alternatieve methode om macrofagen afbreken wordt met behulp van de voorwaardelijke ablatie transgene muis, CD11b-DTR 15. In deze muizen is de menselijke difterietoxine (DT) receptor tot expressie gebracht onder controle of de macrofaag-specifieke promoter CD11b. Dit verleent toxine gevoeligheid en DT injectie zorgt ervoor dat macrofagen uitputting 15. Hoewel het percentage macrofaag uitputting groter is in dit model, clodronaat-bevattende liposomen biedt twee belangrijke voordelen. Clodronaat bevattende liposomen injectie kan worden macrofagen putten in een muizenstam. Macrofagen kunnen uitgeput zijn van de genetisch gemodificeerde muizen zonder de tijd en kosten die nodig zijn voor terugkruising die nodig is om de CD11b-DTR muis te gebruiken. Om dezelfde reden, macrofagen kunnen uitgeput van muizen op de achtergrond, hetgeen een belangrijke overweging wanneer het model onderzochte een uniek of gemengde achtergrond. Ook de adoptieve overdracht experimenten met ex vivo verkregen macrofagen van een muis lijn vermijdt problemen met alloreactiviteit.

De protocollen hier beschreven kan worden toegepast om een ​​verscheidenheid aan onderzoeks vragen. We hebben eese technieken om de rol van macrofagen bij ontstekingen te bestuderen in de dikke darm. Clodronaat bevattende liposoom gemedieerde macrofagen uitputting en adoptieve overdracht van macrofagen kunnen worden gebruikt om een ​​groot aantal weefsels gericht. Macrofagen adoptieve overdracht kan worden reconstitueren leeg macrofagen of direct macrofagen plaatsen van ontsteking in genetische of induceerbare modellen voor ontsteking. Dit protocol biedt ook een platform voor de behandeling van macrofagen gericht therapieën bij de ziekte van modellen waar macrofagen of hun polarisatie worden geassocieerd met pathologie.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Geen belangenconflicten verklaard.

Acknowledgments

Dit werk werd ondersteund door een 'Grant ten behoeve van onderzoek' van de Crohn en Colitis Foundation of Canada naar LMS, die wordt bijgestaan ​​door een Canadese Vereniging van Gastro-enterologie / Canadese Vereniging van Health Research / Crohn en Colitis Foundation of Canada New Investigator Award.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Clodronate-containing liposomes Clodronateliposomes.org
PBS-containing liposomes Clodronateliposomes.org
Sterile PBS pH7.4 Invitrogen 14190
IMDM Invitrogen 12440
Fetal Calf Serum (FCS) Invitrogen 12483
acetic acid BDH Aristar BDH3092-500MLP
Monothioglycerol (MTG) Sigma 96-275
Recombinant murine MCSF Stemcell Technologies 02951
Recombinant murine GM-CSF Stemcell Technologies 02935
Recombinant murine IL-3 Stemcell Technologies 02903
Recombinant murine IFNγ Stemcell Technologies 02746
Recombinant murine IL-4 Stemcell Technologies 02714
Cell Dissociation Buffer Invitrogen 13150-016
Rat anti-F4/80 Antibody AbD Serotec MCA497GA
Mouse anti-ArgI Antibody BD Transduction Laboratories 610708

Table 1. Specific reagents used in this protocol.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Gordon, S. Alternative activation of macrophages. Nat. Rev. Immunol. 3, 23-35 (2003).
  2. Rescigno, M., Lopatin, U., Chieppa, M. Interactions among dendritic cells, macrophages, and epithelial cells in the gut: implications for immune tolerance. Curr. Opin. Immunol. 20, 669-675 (2008).
  3. Heinsbroek, S. E., Gordon, S. The role of macrophages in inflammatory bowel diseases. Expert Rev. Mol. Med. 11, e14 (2009).
  4. Collins, S. M., Piche, T., Rampal, P. The putative role of inflammation in the irritable bowel syndrome. Gut. 49, 743-745 (2001).
  5. Maeda, S. Colon cancer-derived factors activate NF-kappaB in myeloid cells via TLR2 to link inflammation and tumorigenesis. Mol. Med. Report. 4, 1083-1088 (2011).
  6. van Rooijen, N., van Kesteren-Hendrikx, E. Clodronate liposomes: perspectives in research and therapeutics. J. Liposome Res. 12, 81-94 (2002).
  7. Hunter, M. M. In vitro-derived alternatively activated macrophages reduce colonic inflammation in mice. Gastroenterology. 138, 1395-1405 (2010).
  8. Weisser, S. B. SHIP-deficient, alternatively activated macrophages protect mice during DSS-induced colitis. J. Leukoc. Biol. 90, 483-492 (2011).
  9. Qualls, J. E., Kaplan, A. M., van Rooijen, N., Cohen, D. A. Suppression of experimental colitis by intestinal mononuclear phagocytes. J. Leukoc. Biol. 80, 802-815 (2006).
  10. Van Rooijen, N., Sanders, A. Liposome mediated depletion of macrophages: mechanism of action, preparation of liposomes and applications. J. Immunol. Methods. 174, 83-93 (1994).
  11. Smith, P. Infection with a helminth parasite prevents experimental colitis via a macrophage-mediated mechanism. J. Immunol. 178, 4557-4566 (2007).
  12. van Rooijen, N., Hendrikx, E. Liposomes for specific depletion of macrophages from organs and tissues. Methods Mol. Biol. 605, 189-203 (2010).
  13. Kataoka, K. The roles of vitreal macrophages and circulating leukocytes in retinal neovascularization. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 1431-1438 (2011).
  14. Weisser, S. B. Alternative activation of macrophages by IL-4 requires SHIP degradation. Eur. J. Immunol. 41, 1742-1753 (2011).
  15. Cailhier, J. F. Conditional macrophage ablation demonstrates that resident macrophages initiate acute peritoneal inflammation. J. Immunol. 174, 2336-2342 (2005).

Tags

Immunologie Moleculaire Biologie macrofagen clodronaat-bevattende liposomen macrofagen uitputting macrofagen afleiding macrofagen reconstitutie
Uitputting en reconstitutie van macrofagen in Muizen
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Weisser, S. B., van Rooijen, N.,More

Weisser, S. B., van Rooijen, N., Sly, L. M. Depletion and Reconstitution of Macrophages in Mice. J. Vis. Exp. (66), e4105, doi:10.3791/4105 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter