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Artículo de método

La estimulación de citoplasmáticos de ADN Sensing Pathways

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DOI:

10.3791/51593

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18 de septiembre de 2014

 , 

En este artículo

Resumen

El objetivo del protocolo es utilizar métodos óptimos para estimular las vías de detección de ADN citoplasmáticos en células e in vivo. Esto se logra mediante la mejora de la generación de ADN de largo, de doble cadena durante la ligadura de extremos romos. Las células o ratones se transfectaron a continuación usando un reactivo de transfección de lípidos.

Resumen

Con el fin de estimular eficazmente una respuesta inmune innata, el ADN debe ser de longitud suficiente y pureza. Se presenta un método donde el ADN de doble cadena (dsDNA), que tiene las características necesarias para estimular el ADN citoplásmico vías sensoriales pueden generarse de forma barata y con facilidad. Por el concatemerization de oligonucleótidos cortos, sintéticos (que carecen de motivos CpG), dsDNA se puede generar a ser de longitud suficiente para activar el citosólica vía de detección de ADN. Este protocolo implica ligación de extremos romos de los oligonucleótidos en presencia de polietilenglicol (PEG), que proporciona un entorno eficaz para la ligadura que se produzca. Los concatemers dsDNA se pueden utilizar, después de la purificación por extracción con fenol / cloroformo, para simular la respuesta inmune innata in vitro por los protocolos de transfección estándar. Este ADN se puede utilizar también para estimular la inmunidad innata en vivo por inyección intradérmica en el pabellón de la oreja de un ratón, por ejemplo. Porestandarizar el proceso de concatemerization y los protocolos de estimulación posteriores, una activación fiable y reproducible del sistema inmune innato puede ser producido.

Introducción

El ADN es un componente vital de todos los organismos y las células eucariotas, que mantienen en compartimentos específicos. Una función del sistema inmune innato es identificar cuando tal compartimentación se rompe o cuando el material extraño se introduce en el organismo a través de un incumplimiento de las barreras físicas, externos. En el cuerpo humano hay una serie de proteínas que existen para ayudar a degradar pequeñas cantidades de ADN que puede escapar de la compartimentación correcta; DNAsa I, II, y III quiebro de ADN en el plasma, endosoma, y ​​el citosol, respectivamente. Sin embargo, se ha demostrado que los ratones que carecen de ADNasa II muer....

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Protocolo

1. concatemerization

  1. Cebadores Resuspender Fw y Rv (véase la Tabla de Materiales para las secuencias de primers) a una concentración de 10 mg / l en la biología molecular de grado H 2 O. Luego, mezclar 5 l de Fw y 5 l de imprimación Rv en un tubo de 1.5 ml.
  2. Mezcla de cebador recocido por calentamiento a la temperatura de recocido correcto (75 ° C para los cebadores descritos aquí) durante 15 min. Deja en el banco para que se enfríe a temperatura ambiente (TA). Prepare el PEG8000 60% durante esta incubación disolviendo en ddH 2 O.
  3. Añadir 50 l de 60% ​​PEG8000 (para lograr una concentración final de 30%), 10 l de 10x....

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Resultados

Los resultados a continuación indican que el ADN concatemerized se puede generar con relativa facilidad y es capaz de estimular una respuesta inmune innata robusta en las células y en ratones. Con el uso de PEG8000, se puede ver claramente que la longitud del ADN que se genera es significativamente más larga e igualmente capaz de inducir la transcripción de CXCL10. Como se observa mediante análisis en gel de agarosa, la concatemerization estándar tiene longitudes de ADN de hasta 800 pares de bases (pb), mientras q.......

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Discusión

Los protocolos descritos aquí se utilizan para generar ADN de doble cadena para estimular la respuesta inmune innata citosólica con resultados reproducibles en una amplia gama de tipos de células e in vivo. Dado que el principal reactivo sustrato utilizado es un oligonucleótido sintético, hay flexibilidad en este sistema para el uso de secuencias de ADN alternativas o modificaciones químicas. Es posible, por ejemplo, para reemplazar el oligonucleótido cadena directa descrito en este protocolo con uno que contie.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores no tienen reconocimientos.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Imprimación directaIntegrated DNA Technologiesn/aTACAGATCTACTAGTGATCTATGA CTGATCTGTACATGATCTACA
Imprimación inversaIntegrated DNA Technologiesn/aTGTAGATCATGTACAGATCAGT CATAGATCACTAGTAGATCTGTA
PEG8000Sigma-AldrichP-4463
Agua de grado de biología molecularSigma-AldrichW4502-1L
T4 polinucleótido quinasaPromegaM4101
T4 ADN ligasaPromegaM1801
Fenol:cloroformoFisher ChemicalBPE1752p-400
CloroformoFisher ChemicalC/4960/PB08
EtanolSigma-Aldrich32221-2.5L Tampón
carga de gel de ADNNew England BiolabsB7021S
AgarosaBiolineBIO-41025
OptimemLife Technologies11058021
TransIT-LT1 Mirus BioscienceMIR 2300
Jeringa Hamilton Hamilton80901 Modelo 1705
agujas de 30 G BD Bioscience304000
SYBR Safe Tinción de gel de ADNLife TechnologiesS33102
Rneasy Plus Mini KitQiagen74134
Oligo(dT) imprimaciónThermo ScientificSO131
dNTPmix FermentasR0192
Super Script III transcriptasa inversaLife Technologies56575
Tampón de síntesis de ADNc de primera cadenaLife Technologiesy02321
SybrGreen qPCR Mezcla maestra rápidaApplied Biosystems4385612
cxcl10 imprimación murina hacia adelante Integrated DNA Technologiesn/aACTGCATCCATATCGATGAC
cxcl10 cebador inverso murinoIntegrated DNA Technologiesn/aTTCATCGTGGCAATGATCTC
il6 cebador delantero murino Integrated DNA Technologiesn/aGTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC
il6 cebador delantero murino Tecnologías integradas de ADNn/aGTAGCTATGGTACTCCAGAAGAC
de

Referencias

  1. Yoshida, H., Okabe, Y., Kawane, K., Fukuyama, H., Nagata, S. Lethal anemia caused by interferon-beta produced in mouse embryos carrying undigested DNA. Nat. Immunol. 6, 49-56 (2005).
  2. Ishikawa, H., Ma, Z., Barber, G. N. STING regulates intracellu....

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