Die kontrastverstärkte Ultraschallbildgebung kann wesentliche quantitative Informationen über die Vaskularität und Perfusion des Gewebes vermitteln und in gezielten Anwendungen den Nachweis und die Messung von vaskulären Biomarkern auf molekularer Ebene erleichtern. Im Mausembryo kann diese nicht-invasive Technik verwendet werden, um grundlegende Mechanismen aufzudecken, die der Gefäßentwicklung im frühen Kreislaufsystem der Maus und in genetischen Modellen für Herz-Kreislauf-Erkrankungen zugrunde liegen. Der Mausembryo eignet sich auch hervorragend als Modell für die Untersuchung der Adhäsion von Mikrobläschen an angiogene Ziele (einschließlich des vaskulären endothelialen Wachstumsfaktor-Rezeptors 2 (VEGFR2) oder αvβ3) und für die Beurteilung der quantitativen Natur des molekularen Ultraschalls. Wir haben daher eine Methode entwickelt, um Ultraschallkontrastmittel in das Gefäßsystem lebender, isolierter Embryonen einzubringen. Dies ermöglicht Freiheit in Bezug auf die Kontrolle und Positionierung der Injektion, die Reproduzierbarkeit der Bildgebungsebene ohne Obstruktion und Bewegung sowie eine vereinfachte Bildanalyse und -quantifizierung. Im späten Gestationsstadium (Embryonaltag (E)16.6 und E17.5) wurden murine Embryonen aus der Gebärmutter isoliert, sanft aus dem Dottersack nach außen gestreckt und Mikroblasenkontrastmittel in Venen injiziert, die auf der Chorionoberfläche der Plazentascheibe zugänglich sind. Die nichtlineare Kontrastultraschallbildgebung wurde dann eingesetzt, um eine Reihe grundlegender Perfusionsparameter (Peak-Enhancement, Wash-In-Rate und Zeit bis zum Peak) zu erfassen und die gezielte Mikroblasenbindung in einem Endoglin-Mausmodell zu quantifizieren. Wir zeigen die erfolgreiche Zirkulation von Mikrobläschen in lebenden Embryonen und den Nutzen dieses Ansatzes bei der Charakterisierung des embryonalen Gefäßsystems und des Mikroblasenverhaltens.