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Methodenartikel

Immunomagnetische Trennung von Fett Depot-spezifische Sca1

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DOI:

10.3791/53890

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11. August 2016

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir stellen die Techniken vor, die zur Isolierung der stromalen vaskulären Fraktion (SVF) aus inguinalen (subkutanen) und perigonadalen (viszeralen) Fettgewebsdepots der Maus erforderlich sind, um ihre Genexpression und kollagenolytische Aktivität zu beurteilen. Diese Methode umfasst die Anreicherung von Sca1-Stammzellen (ASCs) mithohem Fettgehalt durch immunomagnetische Zelltrennung.

Zusammenfassung

Die Isolierung von aus Fettgewebe gewonnenen Stammzellen (ASCs) ist eine wichtige Methode auf dem Gebiet der Fettgewebsbiologie, der Adipogenese und des Umbaus der extrazellulären Matrix (ECM). In vivo bietet eine EZM-reiche Umgebung, die aus fibrillären Kollagenen besteht, eine strukturelle Unterstützung für das Fettgewebe während des Fortschreitens und der Rückbildung von Fettleibigkeit. Der physiologische EZM-Umbau, der durch Matrix-Metalloproteinasen (MMPs) vermittelt wird, spielt eine wichtige Rolle bei der Regulierung der Größe und Funktion des Fettgewebes1,2. Der Verlust des physiologischen kollagennolytischen EZM-Umbaus kann zu einer übermäßigen Kollagenakkumulation (Gewebefibrose), einer Makrophageninfiltration und schließlich zu einem Verlust der metabolischen Homöostase einschließlich Insulinresistenz führen3,4. Wenn eine phänotypische Veränderung des Fettgewebes in gengesteuerten Mausmodellen beobachtet wird, ist die Isolierung primärer ASCs aus Fettdepots für in vitro-Studien ein wirksamer Ansatz, um die Rolle des spezifischen Gens bei der Regulation der Funktion von ASCs zu definieren. Im Folgenden definieren wir eine immunomagnetische Trennung von Sca1-hohen ASCs.

Einleitung

Stammzell - Antigen 1 (Sca1 oder Ly6A / E) wurde zuerst als ein Zelloberflächenmarker von hämatopoetischen Stammzellen und mesenchymalen 5,6 ausgedrückt identifiziert. Die stromalen vaskulären Fraktion (SVF) von Fettgewebe aus Maus - Fettdepots erhalten ist eine heterogene Population von Zellen von Fibroblasten umfasst, Makrophagen, vaskulären Endothelzellen, Nervenzellen und Adipozyten Progenitorzellen 7. Adipocyte Vorläuferzellen oder Fettgewebe gewonnene Stammzellen (ASCS) sind nicht-lipidbeladenen Zellen , die in das Kollagen-reiche perivaskulärem extrazellulären Matrix (ECM) 8 befinden. Etwa 50% des SVF von ASCS bestehen, die als....

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Protokoll

Ethik-Statement: Die University of Michigan Ausschuss für Benutzung und Pflege der Tiere (UCUCA) hat sich für die Pflege und Verwendung von Labortieren (Institut für Labortierforschung, National Research Council) alle Methoden und Protokolle gemäß dem Leitfaden genehmigt. Die Mäuse werden in einer von der Universität Michigan Vivarium gehalten und haben freien Zugang zu Nahrung und Wasser und hielt auf einem 12 Stunden Hell / Dunkel-Zyklus gegeben.

1. Vorbereitungen

  1. Bereiten Primärkulturmedien DMEM, 10% FBS, 1 x P / S / G und 1x Antibiotika / Antimykotika. Dies wird verwendet, um Gewebe zu halten, bevor die Verdauung. Legen Sie....

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Ergebnisse

Anreicherung von Sca1 hohe ASCS aus verschiedenen Fettpolster.

Die vaskuläre Stromazellen aus SQ Fett Anzeige Fibroblasten-ähnliche isoliert, gestreckt Zellform unabhängig von Sca1 Expressionsniveau (Abbildung 1A). Auf der anderen Seite, VIS (EWAT-derived) Sca1 hoch und Sca1 niedrigen Zellen zeigen deutliche Unterschiede in ihren Zellform. Wie SQ (iWAT abgeleitete) Sca1 ho.......

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Diskussion

Hier zeigen wir die Isolierung und immunomagnetischer Zellseparation von murinen ASCS aus verschiedenen Fettpolster und deren Verwendung für die in - vitro - Experimenten. Die vorgestellte Methode ist wirksam für die schnelle Isolierung von großen Anzahl von Sca1-positive ASCS, die über die technisch aufwendige und teure FACS-vermittelte Isolierung von ASCS 9,14 vorteilhaft ist. Anders als FACS, ist immunomagnetischen Zelltrennung erlauben nicht die Verwendung von mehreren Antigen zur Identi.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Danksagungen

Diese Arbeit wird von NIH DK095137 (THC) unterstützt. Wir danken den aktuellen und ehemaligen Labor-Mitglieder, die an der Entwicklung und Verfeinerung der beschriebenen Verfahren beigetragen.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Typ 3 KollagenaseWorthington BiochemischesLS004182Gewebeverdauung
DMEMGibco11965-092Kulturmedium mit hohem Glukosegehalt
Pen/Strepto/Glutamin (100x)Gibco10378-016Medienantibiotikum
Anti-Anti (100x)Gibco15240-062Medienantimykotikum
FBSGibco16000-044
PBS (1x, pH 7,4)Gibco10010-023
Trypsin (0,05%)Gibco25300-054
ZellsiebBD Bioscience352360100-μ m cell Sieb
60 mm PlattenBD Falcon353004
SchereFST14001-12Große
SchereFST14091-11Feine, gebogene Spitze
Große PinzetteFST11000-12
Feine PinzetteBeliebiger Hersteller
25G 5/8" NadelnBD305122
22G 1,5" NadelnBD305159
15 ml konische RöhrchenBD Falcon352097
50 ml konische RöhrchenBD Falcon352098
MACS TrennsäulenMiltenyi Biotec130-042-201
Anti-Sca1 Mikrokügelchen-Kit (FITC)Miltenyi Biotec130-092-529FITC-anti-Sca1 1º Ab und Anti-FITC Mikrokügelchen 2º Ab
AutoMACS LaufpufferMiltenyi Biotec130-091-221
MiniMACS SeparatorMiltenyi Biotec130-042-102
MACS MultiStandMiltenyi Biotec130-042-303
Blaue Chux-PadsFisher276-12424
SaugeinlagenFisher19-165-621
StyroporplatteVerwendung aus 50 ml Tuben
70% Ethanol
IsofluranBeliebiger Anbieter
Ratte IgG2a Alexa Fluor 647InvitrogenR2a21
Ratte IgG2a Anti-Maus Sca1 Alexa Fluor 647InvitrogenMSCA21
Ratte IgG2a R-PEInvitrogenR2a04
Ratte IgG2a Anti-Maus F4/80 R-PEInvitrogenMF48004
RundbodenrohrBD Falcon352058
HBSS (– Ca, – Mg)Gibco14175-095
HBSS (+Ca, +Mg)Gibco14025-092Für Kollagenase-Lösung
Typ I Kollagen (2,7 mg/ml in 37 mm EssigsäureIm Haus zubereiten12
10x MEMGibco11430-030
1 M HEPESGibco15630-080
0,34 N NaOHHauszubereiten
DeckgläserCorning2870-22
Alexa Fluor 594 Carbonsäure, Succinimidylester, gemischte IsomereInvitrogenA-20004
0,89 M NaHCO3  Gibco25080-094
Im

Referenzen

  1. Chun, T. H., et al. A pericellular collagenase directs the 3-dimensional development of white adipose tissue. Cell. 125 (3), 577-591 (2006).
  2. Chun, T. H., et al. Genetic link between obesity and MMP14-dependent adipogenic collagen turnover.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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