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Methodenartikel

Biosensing Motor Neuron Membran Potenzial in Live Zebrafisch Embryos

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DOI:

10.3791/55297

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26. Juni 2017

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* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die hier beschriebenen Protokolle ermöglichen die Untersuchung der elektrischen Eigenschaften erregbarer Zellen unter den meisten nicht-invasiven physiologischen Bedingungen, indem Zebrafischembryonen in einem in vivo-System zusammen mit einem auf Fluoreszenz-Resonanz-Energietransfer (FRET) basierenden genetisch kodierten Spannungsindikator (GEVI) verwendet werden, der selektiv in dem interessierenden Zelltyp exprimiert wird.

Zusammenfassung

Die hier beschriebenen Protokolle ermöglichen es Forschern, die Zellkommunikation zu untersuchen, ohne die Integrität der Umgebung, in der sich die Zellen befinden, zu verändern. Konkret wurden sie entwickelt, um die elektrische Aktivität von erregbaren Zellen, wie z.B. Spinalneuronen, zu analysieren. In einem solchen Szenario ist es entscheidend, die Integrität der Wirbelsäulenzelle zu erhalten, aber es ist auch wichtig, die Anatomie und die physiologische Form der beteiligten Systeme zu erhalten. In der Tat muss das Verständnis der Art und Weise, wie das Nervensystem - und andere komplexe Systeme - funktionieren, auf einem systemischen Ansatz beruhen. Aus diesem Grund wurde der lebende Zebrafischembryo als Modellsystem ausgewählt und die Spannungsänderungen der Spinalneuronenmembran bewertet, ohne die physiologischen Bedingungen der Embryonen zu beeinträchtigen.

Hier wird ein Ansatz beschrieben, der die Verwendung von Zebrafischembryonen mit einem FRET-basierten Biosensor kombiniert. Zebrafischembryonen zeichnen sich durch ein stark vereinfachtes Nervensystem aus und eignen sich aufgrund ihrer Transparenz, die den Einsatz von fluoreszenzbasierten Spannungsindikatoren an der Plasmamembran während der Entwicklung des Zebrafisches ermöglicht, besonders für bildgebende Anwendungen. Die Synergie zwischen diesen beiden Komponenten ermöglicht es, die elektrische Aktivität der Zellen in intakten lebenden Organismen zu analysieren, ohne den physiologischen Zustand zu stören. Schließlich kann dieser nicht-invasive Ansatz mit anderen Analysen (z. B. spontanen Bewegungsaufzeichnungen, wie hier gezeigt) koexistieren.

Einleitung

In-vivo- systemische Komponentenanalyse ermöglicht es Wissenschaftlern, zelluläres Verhalten auf die zuverlässigste Weise zu untersuchen. Dies trifft besonders dann zu, wenn die zu prüfende Aktivität stark durch Zell-Zell-Wechselwirkungen (sowohl kontakt- als auch berührungsabhängig) beeinflusst wird, wie im Nervensystem, wo Membranspannungsänderungen die Kommunikation zwischen erregbaren Zellen antreiben. Das Verständnis der Informationen, die von diesen elektrischen Signalen codiert werden, ist der Schlüssel zum Verständnis der Art und Weise, wie das Nervensystem sowohl in physiologischen als auch in Krankheitszuständen arbeitet.

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Protokoll

1. pHuC_Mermaid-Plasmid-Erzeugung

HINWEIS: Meerjungfrau ist ein Biosensor, der durch die Paarung der spannungsempfindlichen Domäne (VSD) der Ciona intestinalis (jetzt) ​​entwickelt wurde Ciona robusta ) 5 Spannungssensor mit Phosphatase (Ci-VSP) mit dem FRET-Partner Fluorophoren Umi-Kinoko Green (mUKG: Donor) und einer monomeren Version des orange emittierenden fluoreszierenden Proteins Kusabira Orange (mKOk: Akzeptor). Für diesen Biosensor erhöhen Konformationsänderungen der VSD-Domäne, die durch Membrandepolarisation induziert werden, die Nähe der Donor- und Akzeptor-Fluoreszenzproteine....

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Ergebnisse

Ein Expressionsvektor, der die FRET-basierte Mermaid-Biosensor-codierende Sequenz unter der Kontrolle des pHuC-pan-neuronalen Promotors trägt, der die Synthese des Proteins ausschließlich im Nervensystem antreibt, wurde mittels einer Mikroinjektion in Einzelzell-befruchtete Eier zugeführt Um transiente transgene Embryos zu erhalten ( Abbildung 1 , Linke Tafel). Nach der Beherrschung der Mikroinjektionstechnik lag der Prozentsatz der Meerjungfrau-positi.......

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Diskussion

Das hier vorgestellte Protokoll erlaubte es uns, die Assoziation zwischen den elektrischen Eigenschaften von Zebrafisch-Embryo-Wirbelsäulenmotor-Neuronen und dem spontanen Wickelverhalten zu erforschen, die früheste stereotypische motorische Aktivität, die um 17 hpf der embryonalen Entwicklung auftritt und bis 24 hpf 10 dauert.

Unser Ansatz bietet Forschern ein Werkzeug, um das neuronale System der intakten Embryonen zu studieren, wobei die Komplexität der Wechselwirk.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Die Autoren danken Simona Rodighiero für ihre unschätzbare Unterstützung bei der FRET-Bildgebungsanalyse.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Agarose mit niedrigem SchmelzpunktSigma-AldrichA9414
DMSO Sigma-AldrichW387520
RiluzolSigma-AldrichR116
Pfu Ultra HQ DNA-Polymerase Agilent Technologies - Stratagene Products Division600389
T3 Universal-Grundierung Sigma-Aldrich
Wizard SV Gel und PCR Clean-Up SystemPromegaA9280
Universal SmaI Primer Eurofins
StrataClone Säugetier-Expressionsvektor-System / pCMV-SC stumpfer VektorAgilent Technologies - Geschäftsbereich Stratagene Products
SmaI New England BiolabsR0141S
T4 DNA-LigasePromegaM1801
SalINew England BiolabsR0138S
EcoRVNew England BiolabsR0195S
35 mm, Bildgebungsschale mit GlasbodenIbidi81151
PinzetteSigma-AldrichF6521
StereomikroskopLeica MicrosystemsM10 F
DigitalkameraLeica MicrosystemsDFC 310 FX
Leica Application Suite 4.7.1 Software Leica Microsystems
QuickTime Player, v10.4Apple
Konfokalmikroskop (invers)Leica MicrosystemsTCS SP5
Mikroinjektor Eppendorf Femtojet
ImageJ Makro Biosensor_FRET 
GraphPad Prism 6.0c GraphPad Software, Inc
240228

Referenzen

  1. Knöpfel, T., Gallero-Salas, Y., Song, C. Genetically encoded voltage indicators for large scale cortical imaging come of age. Curr Opin Chem Biol. 27, 75-83 (2015).
  2. Chemla, S., Chavane, F. Voltage-sensitive dye imaging: Technique review and models. J Physi....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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