Summary
Este estudo descreve um procedimento cirúrgico simplificado e técnica para a realização de estimulação do nervo cavernoso com o isolamento do nervo-eletrodo complexas usando cola de silicone e medição de pressão intracavernous.
Abstract
A estimulação do nervo cavernoso (CN) e a medida da pressão intracavernous (ICP) têm sido amplamente utilizados para testar e avaliar terapias para disfunção erétil. No entanto, os métodos usados variam entre laboratórios e armadilhas continuam a existir. O objetivo deste estudo foi descrever uma técnica cirúrgica que fornece um modelo confiável e reprodutível. Ao expor o músculo isquiocavernoso no seu ponto de inserção na tuberosidade isquial, as crus penianas podem ser canuladas com dissecção mínima e prejuízo para as estruturas envolvidas na função erétil. Estimulação repetida da NC, sem a necessidade de elevação e de secagem, foi alcançada por meio de um eléctrodo de prata bipolar µm 125 e cola de silicone biocompatível para isolar o complexo de eletrodo-nervo. Esse método impede a neurapraxia reduzindo o alongamento e secagem do nervo e fornece o completo isolamento do nervo, eliminando vazamento elétrico e impedindo a estimulação das vias alternativas.
Introduction
Estudo in vivo da função erétil em animais experimentais começou em 1863 com o trabalho experimental pioneiro de Eckhard1. Eletroestimulação dos nervos pélvicos foi usada para induzir o aumento da pressão Intracraniana em cães. Ao longo doséculo 20, protocolos experimentais similares foram usados em animais maiores, como cães, macacos, gatos e coelhos. Avaliando a função erétil em um rato foi desenvolvida pelo Quinlan et al , em 1989,2. O método já foi modificado e atualizado por vários outros grupos34. Hoje, o rato é o mais amplamente utilizado modelo animal para estudar a patologia da disfunção erétil e avaliando as opções de tratamento emergente. As principais etapas do processo incluem, gravação de pressão arterial sistêmica, usando uma linha na artéria carótida, canulação o peniana crus para medida de pressão Intracraniana e estimulação da NC para induzir um aumento da pressão Intracraniana. Embora diversos pesquisadores refinaram o modelo, sua reprodutibilidade continua a ser um problema, e resultados variáveis têm sido relatados por laboratórios diferentes. Várias armadilhas ainda persistem.
Anteriores artigos5,6,7,8,9,10 descrevem o uso de exposição completa do pênis com Desluvamento de pênis para canulação do corpo cavernoso. Isto não é uma abordagem ideal como manipulação e dissecação interrupções causa lesão às estruturas, que são essenciais para a função erétil. A dissecação da NC tem sido bem descrito10,11, mas a estimulação do nervo não é o ideal, devido a vários fatores que poderiam afetar os resultados experimentais. A técnica de estimulação CN inclui levantamento do nervo no tecido circundante puxando o eletrodo bipolar gancho, que é posicionado ao redor do nervo, e o nervo antes cada estimulação de secagem. Isso pode levar a vários graus de dano do nervo e escapamento corrente elétrico, resultando em uma resposta diminuída ou falso aumento a pressão Intracraniana através da estimulação dos caminhos alternativos , por exemplo, os músculos do assoalho pélvico, bexiga e gastrointestinal trato de12. Todos esses fatores limitam de reprodutibilidade.
Durante nosso estudo, observamos que a profundidade e o tipo de anestesia tem um profundo efeito sobre a pressão Intracraniana. Os anestésicos usados são pentobarbital de sódio, xilazina/cetamina ou cetamina/midazolam injeção ou inalação de oxigênio/isoflurano.
Aqui nós descrevemos um método simplificado de cirúrgico e fornecer dados para apoiar a padronização do protocolo experimental.
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Protocol
Os animais estavam alojados na Universidade do Sul da Dinamarca animais cuidados instalação conforme as normas institucionais. Todas as experiências em animais foram realizadas em conformidade com o guia de institutos nacionais de saúde para o cuidado e o uso de animais de laboratório. Este é um procedimento de cirurgia aguda, não-sobrevivência.
1. preparação da tubulação, eletrodo e instrumentos para o procedimento cirúrgico
- Utilizar os seguintes instrumentos microcirúrgicos: tesoura cirúrgica, angulada micro tesoura, uma pinça de tecido, um par de Dumont #7 e #5 curvo micro fórceps, um porta-agulha micro e afastadores.
Nota: Como se trata de um processo agudo, os instrumentos não precisam ser esterilizados. Após o uso, limpar e limpar as pontas com etanol a 70%. - Mergulhe o tubo em etanol a 70% e em seguida, lave-o com estéril 0,9% NaCl com 100 heparina U/mL antes da utilização. Deixe o tubo preenchido para evitar a introdução de bolhas de ar no sistema.
- Corte um pedaço de comprimento de 20-30 cm de tubo de polietileno (PE)-50 tornar-se um cateter para a medição de pressão Intracraniana. Certifique-se de que o tubo é tão curto quanto possível reduzir a pressão de umedecimento.
- Dobre um estéril 24G agulha de lado até que a agulha quebra no meio. Conectar-se a peça com o chanfro à extremidade distal do tubo de PE para inserção nas crus penianas. Insira a outra metade para o hub de conexão para o transdutor de pressão. Encha o sistema com soro fisiológico heparinizado (100 U/mL).
- Para tornar o bipolar eletrodo revestido de Teflon, corte duas 125 µm prata fios de igual comprimento. Use um pedaço de fita para prender os fios para a borda da mesa e encadeie-os. Posteriormente, anexe o eletrodo para uma placa preta.
- Faça uma pequena incisão para o Teflon e use #5 micro fórceps para tira um 4-5 mm de comprimento do revestimento de Teflon das pontas dos eletrodos. Corte as pontas com um bisturi para atingir o mesmo comprimento e criar ganchos, dobrando as extremidades em torno da borda sem corte de uma lâmina de bisturi.
- Fita do eletrodo com o fim estendendo ligeiramente ao longo da borda da placa preta com os ganchos apontando para cima. Misture a cola de silicone em uma placa de plástico para 10 s e envoltório cola uma bolha em torno do eletrodo 1-2 mm do gancho.
- Deixe-o secar por aproximadamente 5 min antes do uso (Figura 1). Tira o Teflon de uma seção mais na outra extremidade, para permitir a conexão ao estimulador.
Nota: Com re-fazer os ganchos na extremidade distal, o eletrodo pode ser reutilizado muitas vezes.
2. preparação do Animal
- Depois de anestesiar o animal, raspe a metade inferior do abdome, pescoço e períneo. Esfregue o animal com álcool 70%, seguido de iodo-povidona três vezes. Coloque o rato sobre uma almofada aquecida cirúrgica em posição supina. Aplicar a pomada de veterinário e passar a anestesia para um cone de nariz com 2,5% isoflurano e 0,8 L/min de oxigênio como o portador.
Nota: Ajuste o nível de isoflurano e oxigênio para atingir um nível aceitável de anestesia.
3. pré-operatória preparação
- Executar todo o procedimento cirúrgico sob um microscópio de operação: uma ampliação variando de 3,15 X 20 X é suficiente. Use luvas e manter um ambiente limpo durante a cirurgia. Coloque o rato sobre um pano.
4. músculo isquiocavernoso dissecação para a medição de pressão Intracraniana
- Usar um bisturi, tesoura reta, e Dumont #7 curvo micro fórceps para fazer um 1 cm vertical pele incisão lateral de 5 mm para a linha média, começando a nível da base do pênis e estendendo-se para baixo (Figura 2A). Use um cotonete e separe com cuidado a fáscia lateral para o escroto (Figura 2B). Depois de dissecar a fáscia, anexar retractores e palpar com um algodão-com ponta-swap para encontrar a tuberosidade (Figura 2).
- Dissecar através do tecido adiposo medial deste ponto até o músculo isquiocavernoso é visualizado (Figura 3A). Usar um par de Dumont #7 curvo micro fórceps e longitudinalmente, separar o músculo. A túnica albugínea aparecerá como uma estrutura branca brilhante (Figura 3B). Usando micro fórceps e uma micro tesoura, expor a túnica albugínea adequadamente para ver o seu curso (Figura 3).
- Após a calibração das configurações de sistemas, inserir tubos através da pele no períneo, certificando-se de que está paralelo as crus do pênis (Figura 4). Deixe a linha no lugar e manter a incisão húmidas com soro fisiológico.
5. CN dissecação para estimulação
- Fazer um 2 cm mais baixo, incisão abdominal através da pele, usando, em primeiro lugar, um bisturi e então um par de tesouras reta e micro fórceps. Criar uma correspondente incisão através da fáscia ao longo da linea alba e o tecido muscular subjacente para expor a bexiga e a próstata.
- Use retractores para conseguir boa exposição. Use cotonetes de algodão-dica para separar a próstata do tecido adiposo para obter uma visualização clara do gânglio pélvica principal (MPG) e CN, correndo sobre o aspecto dorsolateral da próstata (Figura 5).
- Após a visualização do MPG e a CN, cuidadosamente incise a fáscia sobrejacente nervo distal para o MPG de 2 a 5 mm com tesoura micro em ângulo (Figura 6a). Com o uso de fórceps micro #5, espalhar o tecido de cada lado do nervo e por baixo dela para libertar uma parte longa de 4mm (Figura 6b) e deslize uma sutura de 9-0 sob o nervo (Figura 6C).
- Eleve o nervo ligeiramente com a ajuda da sutura (Figura 7a) para facilitar a colocação dos ganchos do eletrodo bipolar em torno do nervo (Figura 7b). Deixe a mistura um assistente a cola de silicone de dois componentes com a ponta de uma insulina agulha para 5 s. seca o nervo e aplique a cola na área ao redor dos ganchos e o nervo (Figura 7 c, d). Mantenha o nervo elevado puxando levemente o eletrodo para cerca de 1 min permitir que a cola secar.
- Remova os afastadores, exceto os afastadores no lado direito, para evitar qualquer puxando ou torção do eléctrodo. Molhe os órgãos expostos com salina e leigo gaze embebida em soro fisiológico sobre a incisão.
6. cavernoso corpo canulação para a medição de pressão Intracraniana
- Restaure a visualização da túnica albugínea usando afastadores. Certifique-se não anexar os afastadores para o músculo isquiocavernoso como ele irá distorcer as crus.
- Fixe a agulha e lavar o tubo com soro fisiológico heparinizado antes de introduzi-lo na túnica albugínea. Manter a túnica albugínea esticada, usando Dumont #7 curvo micro fórceps em uma mão (não-dominante), mantendo a túnica albugínea e o resto do músculo sobrejacente distal ao ponto de inserção. Segure a agulha com pinça micro direto na outra mão dominante e certifique-se de apresentá-lo paralelo com o curso do corpo cavernoso (Figura 8).
- Introduza a agulha de 5-8 mm o corpo cavernoso. Lavar o tubo e pressione as crus para testar a linha (Figura 9). Certifique-se de que não existem fugas. Fixe o tubo à mesa com fita para evitar puxar acidental na linha. Remova os afastadores.
7. estimulação da NC
- Com o programa de gravação (por exemplo, Spike 2) continuamente executando, gravar tanto a pressão arterial média e intracavernous.
- Definir os seguintes parâmetros em um estimulador (por exemplo, instrumentos de grama SD9, consulte Tabela de materiais) para a estimulação de CN: atual em 1,5 mA, frequência de 16 Hz, tensão de 3 V e largura de pulso em 5 ms. aplicar 50 s de estimulação com um mínimo de 1 min de descanso entre estímulos.
Nota: As estimulações primeiras geralmente resultam em resposta diminuída (Figura 10).
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Representative Results
O uso deste protocolo com as configurações recomendadas de estimulação, sob anestesia por inalação com oxigênio de 2,0% de isoflurano 0,8 L/min, deve produzir resultados como mostrado na Figura 11 e Figura12, onde há vários de costas estímulos entre 75-80 mm Hg. Figura 13 mostra a mesma resposta estável sobre uma estimulação de 20 min com a resposta estável em 73-77 mm Hg. o teste da linha para medição de ICP liberando o tubo e tocando nas crus (Figura 9). A resposta rápida volta à linha de base é a marca de uma linha bem colocada. Se a integridade da túnica albugínea é danificada, o teste resultaria em baixa pressão de pico e resposta lenta voltar à linha de base após a lavagem e tocando e uma resposta diminuída ao estímulo (Figura 14). Também haverá fugas do NaCl heparinizada quando rubor e sangramento durante a estimulação.
Os tipos e níveis de anestesia, bem como o uso de oxigênio teve um impacto importante na pressão Intracraniana. Figura 15 demonstra o efeito dos diferentes níveis de isoflurano no ICP, com uma diminuição da resposta e um menor patamar estável. Com isoflurano em 2%, não havia uma resposta estável na medição da pressão Intracraniana com múltiplas estimulações em 78 mm Hg. aumentando a concentração de isoflurano para 3,5%, no entanto, resultado em uma rápida diminuição de 50% para 34 mm Hg em múltiplas, estimulações subsequentes. O mesmo efeito foi observado quando trocando o isoflurano de 2,0% para 3,0%, onde um 19% diminuição de resposta foi observada, e de 2,5% a 5%, onde uma ainda mais rápida diminuição da resposta de 70% foi visto. Pressão arterial manteve-se estável ao longo de todos os estímulos. Em ratos anestesiados utilizando a anestesia de isoflurano/oxigênio durante a cirurgia e estimulações iniciais, que depois receberam 25% da dose recomendada de fentanil/midazolam (enquanto o isoflurano foi descontinuado), havia uma resposta da mesma forma estável mas aumentou em 25% durante a anestesia fentanil/midazolam comparada com isoflurano (Figura 16).
Administração de oxigênio através de um cone de nariz aumentou a saturação de oxigênio no sangue de 61-75% a 99-100% em cerca de 20 s. Quando a oxigenação foi interrompida, a mesma diminuição foi vista por cerca de 1 min. pressão arterial foi estável durante as estimulações, mas a administração de oxigênio através de um cone de nariz (0,8 L/min) teve um grande efeito sobre a medição máxima de ICP, reduzi-la por 35-45% em estimulações consecutivas (Figura 17).
Figura 1 . O eléctrodo de prata revestido de bipolar Teflon. (A) colagem bolha na zona de transição entre o eletrodo revestido e não revestido. (B) Distal 2cm do eléctrodo firmemente braded. (C) Ganchos revestidos paralelo afastados de 1 mm. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2 . Dissecação do corpo cavernoso – Marcos. Incisão na pele (A) vertical de 1 cm, descendente lateral inicial de 2 mm da base do pênis. (B) lateral da fáscia para o escroto separadas usando cotonetes com ponta de algodão. (C) exibição de campo operatório após a colocação de afastadores (pm: músculo pyramidalis,: o ponto de inserção das crus para a tuberosidade). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3 . Expondo a túnica albugínea. (A) o músculo isquiocavernoso (seta). (B) túnica albugínea (seta). Ampliação de baixa potência (C) mostrando o curso do corpo cavernoso. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4 . Linha para gravação de pressão cavernoso. Agulha introduzida através da pele no períneo em paralelo com o corpo cavernoso (seta). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5 . Exposição do MPG marcado pela seta e CN executando vertical na face dorsolateral da próstata. Principal pélvico gânglio (MPG) marcado pela seta, nervo cavernoso (CN). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 6 . Dissecação do nervo cavernoso. (A) a fáscia sobrejacente do nervo cavernoso com micro tesoura de corte. (B) separando o nervo do tecido subjacente usando micro fórceps. (C) colocação de uma ligadura de 9-0 debaixo do nervo. Principal pélvico gânglio (MPG) marcado pela seta, nervo cavernoso (CN). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 7 . Gancho do nervo. (A) elevar o nervo puxando suavemente na sutura. (B) nervo descansando nos ganchos do eléctrodo. (C) nervo e eletrodo complexo isolado com a cola de silicone biocompatível. (D) bolha de cola adicionais adicionada para isolar completamente o complexo nervo-eletrodo. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 8 . Canulação da túnica albugínea. Uma agulha 23G ligado à tubagem de PE-50 inserida a túnica albugínea. Ponto de inserção, marcado pela seta. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 9 . Testando a linha intracavernous. As respostas que vi com um posicionamento correto da linha. Observe a descarga da linha e resposta para explorar com as crus. Além disso, observe a gota de pressão rápida volta à linha de base. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 10 . Inicial as respostas à estimulação do nervo cavernoso. Diminuída a primeira resposta. Primeira estimulação de 50 mm Hg e um platô flutuante. Segundo e terceiro estímulo de 66 mm Hg. As seguintes medições foram registradas a nível normal em 73 mm Hg. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 11 . Repetido, a estimulação do nervo cavernoso e gravação de pressão intracavernous. Mostrando a estabilidade dos resultados usando este protocolo. Dez estímulos consecutivos entre 75-78 mm Hg. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 12 . Estimulação do nervo cavernoso e gravação pressão. Aproximadamente 30 estímulos consecutivos com < 6mm variabilidade de Hg na pressão. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 13 . Estimulação contínua, durando 20 min. Maior flutuação no final, mas as estimulações subsequentes, depois de um descanso de 1 min, produziu uma resposta estável. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 14 . Vazamento de túnica albugínea. Resposta prolongada da linha de base após a lavagem e batendo. Diminuição da resposta após estimulação. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 15 . O efeito da dose de anestesia na pressão intracavernous. Diminuiu e resposta mais flutuante no aumento de isoflurano em comparação com a resposta estável em 2% no primeiro dois e as três últimas estimulações. O traço azul no topo mostrando constante pressão arterial média. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 16 . O efeito do tipo de anestesia na pressão intracavernous. As estimulações iniciais realizada sob show de anestesia de isoflurano um aumento de pressão de 80 mm Hg, uma vez que o fentanil/midazolam foi administrado houve um aumento em resposta a 110 mm Hg. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 17 . O efeito da administração de oxigênio através do cone de nariz. Interromper a administração de oxigênio através do cone de nariz resultou em uma redução significativa no aumento de pressão cavernoso com estimulação do nervo cavernoso. Não foi observado nenhum efeito sobre a pressão arterial média (azul rastreamento acima). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 18 . O efeito da tensão na pressão de resposta à estimulação. A tensão entre 1,5-6 V produziu uma pressão idêntica resposta. A resposta diminuída abaixo de 1.5 V. , por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
O principal objetivo deste estudo foi descrever uma técnica cirúrgica simplificada de canulação peniana crus para gravação de ICP e isolamento da NC para eletroestimulação. Nós introduzimos modificações para a dissecação do corpo cavernoso para simplificar a cirurgia e proporcionar gravações reprodutíveis do aumento do ICP com estimulação de CN. Com uma incisão de pele vertical de 1 cm, lateral para a base do pênis, usando a tuberosidade palpável como orientação, atingimos boa exposição do isquiocavernoso muscular e a túnica albugínea. Este procedimento é mais rápido (menos de 15 min) do que aqueles descritos na literatura e causas tecido mínima perturbação2,3,4.
A técnica atualmente utilizada de estimulação CN inclui enganchando, elevação, e secagem da NC antes cada eletroestimulação é aplicada10. Esta técnica não garante que as condições são os mesmos para cada estimulação. Além disso, levantamento do nervo requer o uso de um micromanipulador e repetido alongamento e liberação do nervo, o que poderia levar a neurapraxia. Em comparação com a técnica de estimulação CN atual, o uso de uma cola de silicone biocompatível para isolar o complexo nervo-eletrodo reduz a frequência do nervo, estendendo-se até duas instâncias; uma vez para colocar o eletrodo bipolar em torno do nervo e uma vez para isolar o nervo e o elétrodo usando cola. Posteriormente, vários neurostimulations podia ser feita sem a necessidade de manipulações de nervo.
Inserção da agulha no corpo cavernoso para gravação de pressão constitui um passo crítico. Novos usuários desta técnica devem praticar esta parte antes de iniciar os experimentos. Ao implantar a agulha para as crus, é fundamental que as crus é esticada e a agulha é implantada paralelo ao seu curso. O outro passo crítico é o nervo manipulação durante sua dissecção do tecido circundante e colocação do eletrodo por baixo. Enquanto a dissecação em si não é uma tarefa difícil, qualquer trecho ou esmagamento do nervo pode resultar em danos. Nossa modificação desta etapa faz com que a necessidade de um micromanipulador desnecessários e simplifica a manipulação do nervo. O uso da colagem do silicone biocompatível para isolar o nervo e proporcionar contato estável e de confiança entre o eléctrodo e o nervo reduz a manipulação necessária. Cola de silicone também pode ser usada em outros modelos animais onde neuroestimulação na vivo é aplicada.
Os parâmetros de estimulação listados em numerosos estudos variam de 14 a 20 Hz e 1,5-12 V11,13,14. Esta técnica mostrou que a estimulação usando um 1.5 pulso de 3 V e 5 ms mA, 16 Hz, produziu uma resposta completa. Com o aumento de parâmetros de estimulação, o ICP não aumenta (Figura 18). Isto sugere que estimulação usando quaisquer parâmetros, que são o limiar para desencadeamento arterial (artéria cavernosa), relaxamento arteriolar e sinusoidal de músculo liso, é suficiente para desencadear o reflexo e resultaria em um completo fisiológico resposta. O subsequente aumento na frequência, amplitude ou largura de pulso não conduz a uma resposta fisiológica mais forte e pode esgotar os neurotransmissores ou até mesmo causar lesões nervosas. Com os parâmetros acima descritos, fomos capazes de alcançar uma resposta pode ser reproduzida com um período de descanso tão curto quanto 30 s mais de 40 vezes em uma fileira.
A profundidade da anestesia claramente afeta a resposta fisiológica. Com anestesia por inalação, que pode ser bem controlado, porém o pico de resposta é aproximadamente 25% mais baixa, quando comparada à anestesia fentanil/midazolam administrada por injeção. Observou-se que a dose de isoflurano pode ser mantida no nível determinado pela concentração isoflurano mínimo necessária para eliminar o dedo pitada de resposta. A maioria dos investigadores, usar anestesia de injeção com pentobarbital de sódio, fentanil/midazolam, cetamina/xilazina ou cetamina/midazolam15.
Nenhum dos artigos publicados mencionado o uso de oxigenação controlada. Os resultados deste estudo mostram que isso teve um impacto importante na pressão Intracraniana. Portanto, é importante que, independentemente do tipo de anestesia utilizada, o animal recebe oxigênio através do cone de nariz.
O uso de ratos é vantajoso devido ao seu tamanho e resiliência. Tanto em estudos publicados anteriormente e confirmado nesta pesquisa, ratos Sprague Dawley foram mostrados para ter uma resposta intacta à estimulação CN na faixa de 6 a 12 semanas de idade e pesando os ratos usando de g. 200-550 é mais desafiador, mas benéfico devido à disponibilidade de tecnologia transgênica12.
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Disclosures
Os autores não têm nada para divulgar.
Acknowledgments
Os autores têm sem agradecimentos.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adson forceps | Fine Science Tool | 11006-12 | |
Dumont #7 forceps | Fine Science Tool | 11271-30 | |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tool | 11273-20 | |
ToughCut Mayo scissor | Fine Science Tool | 14110-15 | |
Miniature Vannas Spring scissor | Fine Science Tool | 15006-09 | |
Ultra Fine Hemostat | Fine Science Tool | 13020-12 | |
Crile Hemostat | Fine Science Tool | 13004-14 | |
Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL | |
Teflon coated silver wire 0.125 mm | World Precision Instruments | AGT0510 | |
Elastic wire retractors | Custom made | ||
Scalpel blade | Fine Science Tool | 10023-00 | |
PE-50 tubing | Warner Instruments | 64-0753 | |
23 G Needle | Kruuse | 121272 | |
SD-9 Square Pulse Stimulator | Somatco | 1077/183 | |
Blood pressure transducer and cable | World Precision Instruments | BLPR2 | |
Raucotupf Cotton-tipped Applicators | Lohmann-Raucher | 11966 | |
Pro-ophta Ocular Sticks | Lohmann-Raucher | 16515 | |
NaCl 0,9 % 100 mL | Local pharmacy | ||
Heparin | Local pharmacy | ||
25 mL Syringe | Odense University Hospital | ||
Vet eye ointment - Viscotears | Local pharmacy | ||
silver wires | Science Products GmbH, Heidelberg, Germany | ||
Silicon Glue | Kwik-Sil, World Precision Instruments, Sarasota, FL, USA |
References
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