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Artículo de método

Control Neural intraoperatorio de cirugía de la tiroides en un modelo porcino

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DOI:

10.3791/57919

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11 de febrero de 2019

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1Department of Otorhinolaryngology, Kaohsiung Municipal Hsiao-Kang Hospital, Kaohsiung Medical University, 2Department of Otorhinolaryngology, Kaohsiung Medical University Hospital, Kaohsiung Medical University, 3Department of Otorhinolaryngology, Faculty of Medicine, College of Medicine, Kaohsiung Medical University, 4Department of Nursing, Kaohsiung Medical University Hospital, Kaohsiung Medical University, 5Department of Anesthesiology, Kaohsiung Medical University Hospital, Kaohsiung Medical University, 6Laboratory Animal Center, Kaohsiung Medical University Hospital, Kaohsiung Medical University, 7Department of Thyroid and Parathyroid Surgery, China-Japan Union Hospital and Jilin Provincial Key Laboratory of Surgical Translational Medicine, Jilin University, 8Division of Thyroid and Parathyroid Endocrine Surgery, Department of Otolaryngology, Massachusetts Eye and Ear Infirmary; Division of Surgical Oncology, Department of Surgery, Massachusetts General Hospital; Department of Otology and Laryngology, Harvard Medical School, 9Division for Endocrine Surgery, Department of Human Pathology in Adulthood and Child-hood "G. Barresi", University Hospital G. Martino, University of Messina, 10Department of Anesthesiology, Kaohsiung Municipal Hsiao-Kang Hospital, Kaohsiung Medical University, 11Department of Anesthesiology, Faculty of Medicine, College of Medicine, Kaohsiung Medical University

En este artículo

Resumen

Este estudio tiene como objetivo desarrollar un protocolo estándar de vigilancia neuronal intraoperatorio de cirugía de la tiroides en un modelo porcino. Aquí, presentamos un protocolo para demostrar la anestesia general, para comparar diferentes tipos de electrodos y para investigar las características electrofisiológicas de los nervios laríngeos recurrentes normales y heridos.

Resumen

Lesión intraoperatoria al nervio laríngeo recurrente (Galerla) puede causar parálisis de cuerda vocal, que interfiere con el habla y puede potencialmente interferir con la respiración. En los últimos años, ha sido ampliamente adaptada como una técnica de complemento para localizar la Galerla, detectar lesiones Galerla y predecir la función de la cuerda vocal durante las operaciones de supervisión intraoperativa neural (IONM). Muchos estudios también han utilizado modelos animales para investigar nuevas aplicaciones de la tecnología IONM y desarrollar estrategias fiables para prevenir lesión intraoperatoria de Galerla. El objetivo de este artículo es presentar un protocolo estándar para el uso de un modelo porcino en investigación IONM. El artículo muestra los procedimientos para la inducción de anestesia general, realizando la intubación traqueal y el diseño experimental para investigar las características electrofisiológicas de las lesiones de la Galerla. Aplicaciones de este protocolo pueden mejorar la eficacia general en aplicación del principio 3R (reducción, reemplazo y refinamiento) en estudios IONM porcinos.

Introducción

Aunque ahora, la tiroidectomía es un procedimiento comúnmente realizado en todo el mundo, la disfunción postoperatoria de la voz es todavía común. Lesión intraoperatoria al nervio laríngeo recurrente (Galerla) puede causar parálisis de cuerda vocal, que interfiere con el habla y puede potencialmente interferir con la respiración. Además, lesión a la rama externa del nervio laríngeo superior puede causar un cambio de voz importantes afectando tono y proyección vocal.

Neuronales la supervisión intraoperativa (IONM) durante las operaciones de tiroides ha obtenido gran popularidad como una técnica adjunta para mapeo y confirmando la Galerla, nervio del nervio vago (VN) y la rama externa del nervio laríngeo superior (EBSLN). Porque IONM es útil para confirmar y aclarar los mecanismos de lesión Galerla y para la detección de variaciones anatómicas en la Galerla, puede utilizarse para predecir la función de la cuerda vocal después de la tiroidectomía. Por lo tanto, IONM agrega una nueva dinámica funcional en la cirugía de tiroides y capacita a cirujanos con información que no puede obtenerse por visualización directa solo1,2,3,4,5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10.

Recientemente, muchos estudios prospectivos han usado modelos porcinos para optimizar el uso de la tecnología IONM y establecer estrategias fiables para prevenir intraoperatoria Galerla lesión11,12,13,14 ,15,16,17,18,19,20. Modelos de porcinos también se han utilizado para proporcionar a los profesionales esencial educación y capacitación en aplicaciones clínicas de IONM.

Por lo tanto, la combinación de modelos animales y IONM tecnología es una herramienta valiosa para el estudio de la fisiopatología de la lesión de Galerla21. El objetivo de este artículo era demostrar el uso de un modelo porcino en investigación IONM. Específicamente, el artículo muestra cómo inducir anestesia general, realizar intubación traqueal y establecer experimentos para investigar las características electrofisiológicas de los diferentes tipos de lesiones de Galerla.

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Protocolo

Los experimentos con animales fueron aprobados por el institucional cuidado Animal y el Comité uso (IACUC) de la Universidad médica de Kaohsiung, Taiwán (Protocolo no: 102046 de IACUC, 104063, 105158).

1. animal preparación y anestesia

  1. Modelo animal porcino
    Nota: Este estudio aplicó el protocolo descrito en la literatura para establecer un modelo porcino prospectivo de IONM11,12,13,14,15,16, 17,18,19,22.
    1. Utilice KHAPS negro o Duroc-Landrace cerdos (3-4 meses; 18-30 kg de peso).
    2. Asegúrese de que el protocolo experimental es consistente con las regulaciones nacionales e internacionales y directrices para los experimentos con animales, incluidos los principios de la 3R (reemplazo, reducción y refinamiento). Obtener aprobación ética del protocolo experimental de la Comisión para el cuidado y uso de animales de experimentación en la institución en cuestión.
  2. Inducción de la anestesia
    1. Preparación preanestésica
      1. Retener alimentos 8 horas antes de la anestesia y retener el agua 2 horas antes de la anestesia.
      2. Pre medicar con azaperone intramuscular (4 mg/kg) en 2 horas antes de la anestesia. Utilice una botella de 500 mL de solución salina para fabricar una mascarilla para cada lechón. Ajuste según sea necesario para garantizar un ajuste seguro al hocico.
      3. Utilice la función de pesaje en la mesa de operaciones para medir el peso neto de cada lechón ()figura 1A).
      4. Mantener la temperatura corporal con un colchón de agua circulante a 40 º C.
    2. Inducir la anestesia general (AG) con el sevoflurane 2-4% a un flujo de gas fresco de 3 L/min a través de la mascarilla con el cochinillo en una posición propensa. GA también puede ser inducida por zloazepam y tiletamina intramuscular. Una adecuada profundidad de la anestesia se logra en 3-5 minutos. Para confirmar la profundidad de la anestesia no movimiento severo de dolor debido a la cateterización venosa periférica.
    3. Identificar una vena superficial en el lado externo de un oído y esterilizar la región seleccionada (sobre 6 x 6 cm2) con alcohol al 75%. Para una máxima seguridad, utilizar un catéter intravenoso periférico de calibre 24.
    4. Administrar anestésico intravenoso como el propofol (1-2 mg/kg) o dosis (5-10 mg/kg) para aliviar la estimulación nociva por laringoscopia directa.
      Nota: No se sugiere el uso del agente bloqueador neuromuscular (NMBA). En experimentos posteriores, NMBA puede complicar la intubación presionando la respiración espontánea y puede disminuir las señales de electromiografía (EMG). Además, la inhalación de sevoflurano combinada con un bolo de propofol o barbitúricos de acción corta es al parecer suficiente para facilitar la intubación traqueal.
  3. Intubación traqueal ()figura 1B)
    1. Preparar los equipos y materiales necesarios para la intubación tubo de EMG: un tubo endotraqueal de EMG tamaño #6, una mascarilla para la ventilación asistida, dos eslingas para mantener la boca abierta, una tira de gasa para sacar la lengua, un catéter de succión de punta Roma, un laringoscopio veterinario con hojas rectas de 20cm, un bougie elástico, una jeringa de 20 mL, un estetoscopio y cinta adhesiva.
    2. Coloque el lechón en una posición prona sobre la mesa de operaciones. Alinear la cabeza y el cuerpo para garantizar una visualización clara de las vías respiratorias superiores.
    3. Directa del Asistente para aplicar la tracción de la mandíbula superior e inferior para mantener una apertura adecuada de la boca y evitar la rotación o el overextension de la cabeza. Cubrir la lengua con una gasa y tire de la lengüeta para optimizar el campo visual.
    4. Sostenga el laringoscopio y colocarlo directamente en la cavidad bucal a deprimir la lengua.
    5. Directamente visualizar la epiglotis y use el laringoscopio para presionar la epiglotis hacia abajo hacia la base de la lengua.
    6. Cuando las cuerdas vocales están claramente identificadas, introduzca suavemente la bougie elástico en la tráquea. Ligera rotación de la bougie elástico puede requerirse para vencer la resistencia. A continuación, avance el tubo de EMG en el ángulo de la boca a una profundidad de 24 cm.
    7. Infle el manguito del tubo de EMG a un volumen no superior a 3 mL. Si la ventilación por ensacado manual no revela ninguna fuga de aire obvio, deflación en situ el tubo de EMG es factible.
    8. Cuando el tubo de EMG está colocado a la profundidad adecuada, para confirmar el paso libre del gas fresco embolsado manual. Además confirmar la intubación traqueal correcta por fin-de marea dióxido de carbono (etCO2) monitoreo (capnografía) y auscultación del tórax para la identificación temprana de inadvertida del esófago o la intubación endobronquial.
      Nota: Capnografía demostró la forma de onda de etCO2 y el valor digital en mmHg. Cuando se produjo la intubación del esófago, etCO2 fue ausente o cercano a cero después de 6 respiraciones. Cuando el tubo de EMG estaba en el lugar correcto, el típico etCO2 forma de onda y el valor adecuado (generalmente > 30 mmHg) fue observada. Además, el sonido de la respiración de un pulmón bilateral llenado es clara y simétrica según lo determinado por auscultación del pecho.
    9. Utilice cinta médica para fijar el tubo de EMG en el ángulo de la boca. Puesto que el tubo generalmente requiere ajuste durante experimentos IONM, no fije el tubo al hocico.
    10. Conecte el tubo de EMG para el ventilador. Capnografía continua es obligatoria para el seguimiento de la curva durante el experimento y el valor de etCO2 .
  4. Mantenimiento de la anestesia ()figura 1)
    1. Después se fija el tubo de EMG, colocar el cochinillo en su espalda con el cuello extendido (figura 1). Mantener anestesia general con 1-3% de sevoflurano en oxígeno a 2 L/min.
    2. Ventilar los pulmones en el modo de control de volumen a volumen tidal de 8-12 mL/kg y la frecuencia respiratoria a 12-14 respiraciones/minuto.
    3. Iniciar monitorización fisiológica, incluyendo capnografía, electrocardiografía (ECG) y monitorización de la oxigenación (SaO2).

2. equipo ajuste y operación Animal (figura 1)

  1. Instalación de equipo
    1. Conecte los conductores de canal desde el tubo de EMG para el sistema de vigilancia.
    2. Establecer el sistema de vigilancia para ejecutar una ventana de tiempo de 50 ms. SET pulsada estímulos a 100 μs y 4 Hz. el umbral de captura de eventos para 100 μV.
  2. Procedimiento quirúrgico
    1. Guantes quirúrgicos estériles y utilizar povidona yodada con bastoncillos de algodón para desinfectar el sitio de cuello quirúrgico.
    2. Haga una incisión transversal cuello unos 10-15 cm de longitud con un bisturí para exponer el cuello y la laringe.
    3. Levante la aleta de subplatysmal 1 cm cranially desde la clavícula hasta el hueso hioides.
    4. Quitar los músculos de la correa y visualizar los anillos traqueales y los nervios. Uso de electrocauterio monopolar y bipolar para ayudar a la disección quirúrgica y hemostasia.
    5. Localizar, identificar y exponer cuidadosamente los EBSLN Galerla y VN con una sonda de estimulación manual.
    6. Colocar un electrodo de estimulación periódica automática (APS) en un lado de VN para estimular durante IONM continua (CIONM). Conectar el electrodo de la APS con el sistema de vigilancia. Establecer estímulos pulsados a 1 Hz, 100 μs y 1 mA.
  3. Al final de los experimentos, eutanasia a todos los lechones por el veterinario.

3. electroestimulación

Nota: Para aplicar el principio 3R en estudios IONM porcinos, siempre realizar estudios de electrofisiología repetible que no causan lesión del nervio antes de realizar experimentos que pueden causar lesión del nervio. Esto puede usarse para estudiar la intensidad, seguridad y efectos cardiopulmonares11,17. El equipo de IONM puede clasificarse como estimulación equipo o equipo de grabación (figura 2A).

  1. Evaluar las respuestas del EMG de línea de base de los nervios de destino, incluyendo EBSLN, Galerla y VN (figuras 2B, 2C).
    1. Comience con una corriente de estimulación inicial de corriente de 0.1 mA y aumentar la estimulación en incrementos de 0.1 mA hasta una respuesta EMG es detectada y registrada.
    2. Aumentar la corriente hasta que se obtiene la respuesta máxima de EMG.
    3. Registrar la amplitud de la línea de base, la latencia y la forma de onda de la respuesta EMG.
    4. Definir el nivel de estímulo mínimo como la más baja corriente (mA) que evocaba claramente la actividad EMG de > 100 μV. definir el nivel de estímulo máximo como la corriente más baja que la máxima respuesta EMG evocada.
  2. Evaluar la seguridad de la estimulación eléctrica11,19
    1. Aplicar un estímulo continuo de 1 minuto en el quinto nivel de anillo traqueal del VN o Galerla.
    2. Aumentar progresivamente el estímulo de corriente de 1 mA a 30 mA.
    3. Durante la estimulación de VN, evaluar estabilidad hemodinámica mediante el control de frecuencia cardiaca, ECG y presión arterial invasiva.
    4. Finalmente, evaluar la integridad de la función del nervio comparando las respuestas del EMG proximales al sitio de estimulación nerviosa antes y después de cada nivel de estímulo es aplicado.
  3. Efecto de anestésicos (relajantes musculares y sus reversiones)12,20
    Nota: Uso inadecuado de ABNM es una causa potencial de IONM fracasado. El modelo propuesto de animales fue utilizado para comparar perfiles de recuperación entre diferentes ABNM despolarizantes (por ejemplo, la succinilcolina) y no despolarizantes ABNM (p. ej., rocuronio) en diferentes dosis y para identificar el NMBA óptimo para su uso en IONM. El modelo animal puede utilizarse también para evaluar la efectividad de las drogas de reversión de NMBA (p. ej., sugammadex) para restaurar rápidamente la función neuromuscular por rocuronio.
    1. En primer lugar, aplique IONM C y use la referencia automáticamente calibrado latencias y amplitudes del EMG como datos de control.
    2. Administrar una inyección en bolo de 0.3 mg/kg de rocuronio en un volumen de 10 mg/mL y observar los cambios en tiempo real de EMG.
    3. Tres minutos después de la inyección, realizar una inyección de 2 mg/kg de sugammadex en un volumen de 100 mg/mL como un bolo rápido. Registrar el perfil de recuperación de EMG laríngea durante 20 minutos.
  4. Electrodos de estimulación (sondas de estimulación, disectores) ()figura 3)17
    Nota: Hay diferentes tipos de electrodos de estimulación que se pueden utilizar para la estimulación del nervio durante IONM, por ejemplo, sondas monopolares (Figura 3A), sondas bipolares (figura 3B) y disectores de estimulación (figura 3 ).
    1. Para imitar la estimulación directa de nervios durante la cirugía, aplicar estimulación mA 1 EBSLN, Galerla y VN sin fascia que lo recubre.
    2. Para imitar la asignación indirecta y localización de la posición del nervio antes de identificación visual durante la cirugía, aplicar 1 estimulación de la mA en una distancia de 1 y 2 mm de los nervios en el que cubre la fascia.
    3. Registrar y comparar las respuestas del EMG entre diferentes tipos de electrodos de estimulación.
  5. Grabación de electrodos (electrodos de piel de electrodos/pre-gelled tubos/aguja de EMG) (Figura 4)
    1. Utilice el modelo animal para evaluar cómo afecta a la estabilidad de la señal EMG rotación o desplazamiento hacia arriba/hacia abajo del electrodo del tubo de EMG (Figura 4A). Además, utilizar el modelo animal para comparar las respuestas del EMG entre los tipos de electrodos diferentes (por ejemplo, electrodos de aguja y electrodos pregelados adhesivos, Figura 4B) y grabación de diferentes enfoques (p. ej., enfoques de transcutánea/percutánea y transcartilage, 4 figuras y 4 D) en cuanto a la viabilidad, estabilidad y precisión durante IONM.
    2. Un estudio de viabilidad, se aplica un 1 estímulo de mA a EBSLNs bilaterales, VNs y RLNs. registro y comparar respuestas de EMG evocadas por cada electrodo de prueba (es decir, EMG tubo, transcutánea, percutánea y electrodos de transcartilage).
    3. Para un estudio de estabilidad, evaluar y comparar la estabilidad de la señal EMG en C-IONM bajo desplazamiento de cartílago cricoides inducida experimentalmente, traqueal.
    4. Para un estudio de precisión, evaluar y comparar la precisión de los electrodos probados en IONM C para la identificación de la degradación de la señal EMG bajo lesión Galerla.

4. estudio de lesiones Galerla (figura 5)

  1. Según el principio 3R, realizar experimentos de lesión Galerla en el modelo porcino después de todo repetible electrofisiología estudios están terminados. Realizar pruebas de segmentos nerviosos de los segmentos proximales del nervio a segmentos del nervio distal (es decir, proceden de la parte caudal de la Galerla a la parte craneal de la Galerla).
  2. Señales de uso C-IONM para confirmar y comparar los patrones de cambios en tiempo real en EMG laríngea evocado durante y después de lesiones agudas de la Galerla con mecanismos diferentes de la lesión (p. ej., tracción, sujeción, transección o lesiones térmicas) (figuras 5A y 5B) . Use C-IONM para visualización en tiempo real continua y registro de cambios EMG y recuperaciones secuenciales durante todo el experimento (figura 5).
  3. Recoger heridos Galerla segmentos para el análisis histopatológico de las alteraciones morfológicas causada por los experimentos de lesión del nervio.
  4. Lesiones de tracción compresión/estiramiento
    Nota: La tracción compresión o estiramiento lesiones son las lesiones más comunes de la Galerla intraoperatorias. Experimentalmente inducen tensión de tracción y observar los cambios electrofisiológicos resultantes del EMG y cambios histopatológicos.
    1. Tracción compresión lesión13
      1. Envuelva un asa de plástico fino (por ejemplo, un bucle vascular 1,3 mm ancho) alrededor de la Galerla y uso una fuerza calibrador para aplicar retracción con 50 g de tensión (figura 5A). Este programa simula una Galerla atrapado contra una banda densa, fibrosa o una arteria de la travesía en la región del ligamento de Berry durante la tracción medial del lóbulo de la tiroides.
    2. Tracción estiramiento lesión16
      1. Envuelva la Galerla con un material elástico más amplio (por ejemplo, un drenaje de Penrose silicona ancho 10 mm) y uso un medidor de fuerza para retraer la Galerla con 50 g de tensión) este esquema mímico una Galerla adherido a o encerrado en la cápsula de bocio y estirado hacia adelante durante el intermedio tracción.
  5. Lesión de fijación
    Nota: Trauma mecánico intraoperatoria a la Galerla resulta generalmente de la deficiente exposición o identificación visual de la Galerla. 13 , 16
    1. Después de la compresión de tracción lesiones Galerla experimento, pellizcar el segmento distal de la Galerla con pinzas hemostáticas durante un segundo. Este esquema reproduce el nervio inadvertidamente apretado debido a la identificación visual como un recipiente durante la operación. Registro de la señal de EMG que cambiar para la comparación con otros resultados histopatológicos de la muestra del nervio.
  6. Lesiones térmicas
    Nota: La mayoría lesiones térmicas intraoperatorias de Galerla resultan de térmica cuando se utilizan dispositivos de electrocauterio y varios dispositivos basados en energía (EBDs) para inducir hemostasia cerca la Galerla. Como tracción lesión, lesión térmica es raramente visible al ojo desnudo. Por lo tanto, realizar experimentos con animales IONM para determinar el mejor modelo para la evaluación de la fisiopatología de la lesión térmica Galerla y poner a prueba la tolerancia térmica de14 y la seguridad de EBDs15,18.
    1. Use C-IONM para registrar los cambios EMG continuamente durante todo el experimento.
    2. Para el estudio de la activación, investigar dispositivos cómo basados en energía (EBD) puede ser aplicado con seguridad para hemostasia y disección cerca la Galerla durante la cirugía (figura 5B).
      1. Activar el EBD (electrotérmico buque bipolar sistema, alimentación determinada en el nivel 2 y la energía se interrumpe automáticamente por 2 a 4 segundos) a una distancia de 5 mm de la Galerla.
      2. Si las señales del EMG permanecen estables después de varias pruebas, realizar una prueba más en la distancia más angosta (por ejemplo, 2 mm y seguido por la distancia de 1 mm).
      3. Si cualquier cambio sustancial de la EMG se produce después de cualquier prueba de la experiencia es completa y seguida por la grabación en tiempo real continuo del EMG durante al menos 20 minutos.
    3. Para el estudio de la refrigeración, evaluar el tiempo de enfriamiento para determinar la activación óptima EBD parámetros de enfriamiento.
      1. Póngase en contacto con la EBD activada en la Galerla directamente después de un tiempo de enfriamiento de 5 segundos.
      2. Si las señales del EMG permanecen estables después de tres pruebas, la prueba del tiempo de enfriamiento más corto (por ejemplo, 2 segundos y seguido por 1 segundo).
      3. Si el EMG permanece estable después de repetidas pruebas, confirman la seguridad de la EBD tocando la Galerla inmediatamente después de la activación.

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Resultados

Estudio electrofisiológico
Datos de referencia EMG, el nivel de estímulo mínimo/máximo y las curvas de respuesta del estímulo
Utilizando una estimulación monopolar estándar sonda, el nivel de estimulación mínima obtenida para VN y Galerla estimulación los rangos de 0,1 a 0,3 mA, respectivamente. En general, el estímulo actual correlacionó positivamente con la resultante EMG amplituderesponse11,17. La amplitud de la ...

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Discusión

Lesión a la Galerla y EBSLN sigue siendo una fuente significativa de morbilidad causada por la cirugía de tiroides. Hasta hace poco, lesión del nervio puede identificarse sólo por visualización directa del trauma. El uso de IONM permite ahora más identificación funcional de la Galerla aplicando la estimulación y la contracción de los músculos objetivo de grabación. En la actualidad, sin embargo, ambos sistemas IONM convencionales intermitentes y continuadas tienen algunas limitaciones técnicas en interpretación de falsos...

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este estudio fue apoyado por subvenciones de Kaohsiung Medical University Hospital, Universidad médica de Kaohsiung (KMUH106-6R49) y del Ministerio de ciencia y tecnología (la mayoría 106-2314-B-037-042-MY2.), Taiwán

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Sistemas críticosnGenuity8100E, que incluye capnografía, electrocardiografía (ECG) y monitorización de la oxigenación (SaO2)
Los sistemas de monitorización nerviosa NIM intraoperatoria NIM-Response3.0de Medtronic monitorizan la actividad EMG de múltiples músculos. Si hay un cambio en la función nerviosa, el sistema NIM puede proporcionar advertencias sonoras y visuales para ayudar a reducir el riesgo de daño a los nervios.
Tubo NIM TriVantage EMG Medtronic82297066 mm de diámetro interior, 8,2 mm de diámetro exterior. El tubo NIM TriVantage EMG es un tubo de PVC de tamaño estándar, no reforzado, sin DEHP que cuenta con electrodos de tinta plateada suaves y conductores y una banda cruzada para guiar la colocación. Tiene una sensibilidad reducida a la rotación y al movimiento, al tiempo que ofrece mayores respuestas EMG que facilitan una mejor disección nerviosa.
Tubo endotraqueal EMG reforzado con NIM Contact Medtronic82295066 mm de diámetro interior, 9 mm de diámetro exterior. El tubo EMG de contacto NIM monitorea continuamente la actividad de la electromiografía (EMG)
durante la cirugía. Un diseño innovador permite que el tubo mantenga el contacto,
incluso al girar. Las cuerdas vocales son más fácilmente visibles contra la banda blanca.
Los cables de los electrodos de grabación son de par trenzado. Estéril empaquetado con una aguja subdérmica verde y
blanca. De un solo uso.
Tubo endotraqueal EMG reforzado estándar NIM Medtronic82293066 mm de diámetro interior, 8,8 mm de diámetro exterior. El tubo EMG estándar NIM monitorea continuamente la actividad de la electromiografía (EMG)
durante la cirugía. Los cables de los electrodos de registro son de par trenzado. Empaquetado
estéril con una aguja subdérmica verde y otra blanca. De un solo uso.
Tubo endotraqueal NIM Flex EMGMedtronic82299606 mm. El tubo EMG NIM Flex monitorea la actividad EMG
de las cuerdas vocales y los nervios laríngeos recurrentes durante la cirugía. Un diseño actualizado de doble canal permite que el tubo mantenga < >contacto con las cuerdas vocales, incluso después rotación. Los cables de registro del electrodo
son de par trenzado. Envasado estéril con una aguja subdérmica
blanca y otra blanca. De un solo uso.
Sonda estimuladora monopolar de punta rasanteMedtronic8225101puntas y mangos. Para localizar y mapear los nervios craneales en el campo quirúrgico, la sonda estimulante monopolar Prass estándar Prass de un solo uso
cuenta con un diámetro de punta
de 0,5 mm. La sonda está aislada en la punta para evitar la derivación de corriente. Empaquetado individualmente
estéril.
Sonda Estimuladora Monopolar de Punta EsféricaMedtronic8225275/ 8225276Punta y Mango, 1,0 mm/ 2,3 mm. Con una punta esférica flexible y un eje flexible, la sonda estimulante monopolar
de un solo uso permite un mayor acceso a las estructuras neuronales. El diámetro de la punta
de 1,0 mm permite el contacto atraumático con estructuras neuronales más grandes. La sonda está aislada
a la punta para evitar la derivación de corriente. Envasado estéril individualmente.
Sonda estimuladora monopolar Yingling Flex TipMedtronic8225251puntas y mangos. La sonda estimulante monopolar Yingling, altamente flexible y de un solo uso>, permite< la estimulación en áreas fuera del cirujano s campo de visión. El alambre de platino-iridio
de la sonda está completamente aislado a la punta de la bola para evitar la derivación de corriente. Individualmente
estéril empaquetado con un electrodo subdérmico verde.
Sonda Estimuladora Bipolar PrassMedtronic8225451La Sonda Estimuladora Bipolar Prass de un solo uso cuenta con una punta delgada y flexible que
permite un mayor acceso a las estructuras neuronales. La punta de la sonda tiene una distancia < 0,5 mm entre el cátodo y >el ánodo para una derivación mínima. Envasado estéril individualmente.
Sonda estimuladora bipolar concéntricaMedtronic 8225351La sonda estimuladora bipolar concéntrica de un solo uso cuenta con un diseño de 360 grados.
área de contacto. El aislamiento es completo hasta la punta activa; Los cables y las manijas están
polarizados. Envasado estéril individualmente.
Sonda estimuladora bipolar Side-by-SideMedtronic8225401La sonda estimuladora bipolar Side-by-Side de un solo uso cuenta con puntas de sonda que
están separadas por 1,3 mm, lo que permite estimular las estructuras neuronales entre las puntas.
El aislamiento es completo hasta la punta activa; los cables y las manijas están polarizados.
Empaquetado individualmente estéril.
Electrodo APS (Estimulación Periódica Automática)*Medtronic8228052/82280532 mm/ 3mm. El electrodo APS ofrece un monitoreo continuo y en tiempo real. El electrodo se coloca
en el nervio y puede proporcionar una advertencia temprana de un cambio en la función nerviosa.
Electrodos de ECG del neotrótropoConMed1741C-003El electrodo está hecho de un material de cinta transparente, lo que permite la observación continua de la piel del paciente durante el monitoreo.
LigaSure Small JawMedtronicLF1212Un sistema de sellado de vasos bipolares electrotérmicos
aprobado por la FDA para cirugía
de monitorización fisiológica estándar

Referencias

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