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Artículo de método

Mapeo cerebral preciso para realizar imágenes in vivo repetitivas de dinámica neuroinmunitaria en ratones

7.6K visualizaciones

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DOI:

10.3791/61454

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7 de agosto de 2020

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En este artículo

Resumen

Este protocolo describe una técnica crónica de implantación de ventanas craneales que se puede utilizar para imágenes longitudinales de estructuras neuro-glio-vasculares, interacciones y función en condiciones saludables y enfermas. Sirve como una alternativa complementaria al enfoque de imagen transcraneal que, aunque a menudo se prefiere, posee algunas limitaciones críticas.

Resumen

El sistema nervioso central (SNC) está regulado por una compleja interacción de células neuronales, gliales, estromales y vasculares que facilitan su correcta función. Aunque el estudio de estas células en aislamiento in vitro o juntos ex vivo proporciona información fisiológica útil; características destacadas de la fisiología de las células neurales se perderán en tales contextos. Por lo tanto, hay una necesidad de estudiar las células neuronales en su entorno in vivo nativo. El protocolo detallado aquí describe imágenes repetitivas in vivo de dos fotones de células neuronales en la corteza de roedores como una herramienta para visualizar y estudiar células específicas durante largos períodos de tiempo de horas a meses. Describimos en detalle el uso de la vasculatura cerebral groseramente estable como un mapa grueso o dendritas etiquetadas fluorescentemente como un mapa fino de regiones cerebrales seleccionadas de interés. Usando estos mapas como una clave visual, mostramos cómo las células neuronales se pueden reubicar con precisión para obtener imágenes in vivo repetitivas posteriores. Utilizando ejemplos de imágenes in vivo de microglia, neuronas y células NG2+ con etiqueta fluorescente, este protocolo demuestra la capacidad de esta técnica para permitir la visualización repetitiva de la dinámica celular en la misma ubicación cerebral durante largos períodos de tiempo, que puede ayudar aún más a entender las respuestas estructurales y funcionales de estas células en la fisiología normal o seguir insultos patológicos. Cuando sea necesario, este enfoque se puede acoplar a imágenes funcionales de células neuronales, por ejemplo, con imágenes de calcio. Este enfoque es especialmente una técnica poderosa para visualizar la interacción física entre los diferentes tipos celulares del SNC in vivo cuando están disponibles modelos genéticos de ratón o tintes específicos con etiquetas fluorescentes distintas para etiquetar las células de interés.

Introducción

El sistema nervioso central (SNC) se rige por una compleja interacción de interacciones entre varios tipos de células residentes, incluyendo neuronas, glia y células asociadas a vasos. Tradicionalmente, las células neurales se estudiaban en contextos aislados, co-cultivados1,,2,3,4,5 (in vitro) o de tejido cerebral extirpado (ex vivo)6,7,,8,9,10.....

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Protocolo

Todos los pasos están de acuerdo con las pautas establecidas y aprobadas por el Comité Institucional de Cuidado y Uso animal de la Universidad de Virginia.

1. Preparación del ratón para la implantación de ventanas craneales

NOTA: Varias líneas transgénicas del ratón con etiquetas florescentes son adecuadas para la toma de imágenes.

  1. Utilice ratones CX3CR1GFP/+ 26 para visualizar la microglia in vivo. Por lo general, se utilizan ratones juveniles a adultos jóvenes de 4 a 10 semanas de edad que pesan 17-25 g.
    NOTA: Aunque, este enfoque es incluso apto para ratones pre-....

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Resultados

Para visualizar la dinámica microglial in vivo, se utilizaron ratones transgénicos dobles transgénicos CX3CR1GFP/+:Thy1YFP. La línea Thy1-YFP H se utiliza en comparación con la línea Thy1-GFP M para evitar la superposición de florescencia de microglia (GFP) y neuronas (YFP). Los enfoques alternativos podrían utilizar una línea de reportero en la que la microglia se etiqueta con, por ejemplo, tdTomato y luego se puede utilizar la línea Thy1-GFP M. Un inconveniente de la línea H es que YFP etiqueta un.......

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Discusión

El advenimiento de las imágenes in vivo de dos fotones ha abierto oportunidades para explorar la plétora de interacciones celulares y dinámicas que ocurren en el cerebro sano. Los estudios iniciales se centraron en el uso del enfoque de craneotomía del cráneo abierto para la imagen de las dendritas neuronales por imágenes agudas y crónicas37,,38. Esto también se puede utilizar para dilucidar interacciones neuroinmunes en el cerebro. Este protocolo describe un mét.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a los miembros del laboratorio de Eyo por discutir las ideas presentadas en este manuscrito. Agradecemos al Dr. Justin Rustenhoven del Laboratorio Kipnis de la Universidad de Virginia por el regalo de ratones NG2DsRed 33. Este trabajo es apoyado por la financiación del Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares del Instituto Nacional de Salud a la U.B.E (K22 NS104392).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Cubreobjetos (3 mm)Warner Instruments64-0726
Pegamento de cianoacrilato (Krazy Glue)Amazonhttps://www.amazon.com/Krazy-Glue-Original-Purpose-Instant/dp/B07GSF31WZ/ref=sr_1_2?keywords=krazy+glue&qid=1583856837&s=pet-supplies&sr=8-2
Demi Ultra LED Curing Light SystemDental Health Products, Inc910860-1
Taladro dentalOsada: www.osadausa.eduBroca EXL-M40
Fine Science Tools#19008-07
Ungüento para los ojosHenry Schien1338333
iBond Total Etch (pegamento de imprimación)Chase Dental Supply (Heraeus Kulzer)66040094
Rhodamine BMillipore Sigma81-88-9 (R6626)
Tetris Pegamento Evoflow (Pegamento final)Top Dent (Ivoclar Vivadent)#595956
Wahl Brav Mini+Amazon
https://www.amazon.com/Wahl-Professional-Animal-BravMini-41590-0438/dp/B00IN24ILE/ref=asc_df_B00IN24ILE/?tag=hyprod-20&linkCode=df0&hvadid=167141013968&hvpos=&hvnetw=g&hvrand=12368793083893626704&hvpone=&hvptwo=&hvqmt=&hvdev=c&hvdvcmdl=&hvlocint=&hvlocphy=9008337&hvtargid=pla-332197544154&psc=1

Referencias

  1. Engle, S. J., Blaha, L., Kleiman, R. J. Best Practices for Translational Disease Modeling Using Human iPSC-Derived Neurons. Neuron. 100 (4), 783-797 (2018).
  2. Osaki, T., Shin, Y., Sivathanu, V., Campisi, M., Kamm, R. D. In Vitro Microfluidic Models for Neurodegenera....

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