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Article de méthode

Différenciation et caractérisation des ostéoclastes à partir de cellules souches pluripotentes induites humaines

3.1K vues

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DOI :

10.3791/66527

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22 mars 2024

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole présente la différenciation des ostéoclastes humains à partir des cellules souches pluripotentes induites (CSPi) et décrit des méthodes de caractérisation des ostéoclastes et des précurseurs d’ostéoclastes.

Résumé

Ce protocole détaille la propagation et le passage des cellules iPS humaines et leur différenciation en ostéoclastes. Tout d’abord, les cellules iPS sont dissociées en une suspension unicellulaire pour une utilisation ultérieure dans l’induction du corps embryoïde. Après induction mésodermique, les corps embryoïdes subissent une différenciation hématopoïétique, produisant une population de cellules hématopoïétiques flottantes. Par la suite, les cellules hématopoïétiques récoltées subissent une étape de maturation du facteur de stimulation des colonies de macrophages et, enfin, une différenciation des ostéoclastes. Après différenciation des ostéoclastes, les ostéoclastes sont caractérisés par une coloration pour TRAP en conjonction avec une coloration nucléaire au vert de méthyle. Les ostéoclastes sont observés sous forme de polycaryons multinucléés TRAP+. Leur identification peut être renforcée par la coloration à la cathepsine K. Les tests de résorption osseuse et minérale permettent une caractérisation fonctionnelle, confirmant l’identité d’ostéoclastes authentiques. Ce protocole démontre une méthode robuste et polyvalente pour différencier les ostéoclastes humains des cellules iPS et permet une adoption facile dans les applications nécessitant de grandes quantités d’ostéoclastes humains fonctionnels. Des applications dans les domaines de la recherche sur les os, du cancer, de l’ingénierie tissulaire et de la recherche sur les endoprothèses pourraient être envisagées.

Introduction

Les ostéoclastes (OC) sont des types cellulaires polyvalents dérivés de l’hématopoïétique 1,2 qui sont couramment utilisés par les chercheurs dans des domaines tels que la recherche sur les maladies osseuses 3,4, la recherche sur le cancer 5,6, l’ingénierie tissulaire 7,8 et la recherche sur les endoprothèses 9,10. Néanmoins, la différenciation des CO peut être difficile car la ....

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Protocole

REMARQUE : Tous les réactifs utilisés dans ce protocole se trouvent dans la table des matériaux. Sauf indication contraire, tous les milieux ont été pré-équilibrés à 37 °C avant utilisation. Toutes les étapes de centrifugation sont effectuées à 37 °C et en utilisant le mode d’accélération/décélération le plus lent. Sauf indication contraire, le surnageant est toujours éliminé à l’aide de pipettes jetables en verre Pasteur.

1. Décongélation et propagation des cellules iPS humaines

  1. Un jour avant la décongélation des CSPi, enduire un puits d’une plaque à 6 puits de 1 mL d’un extrait de membrane basal....

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Résultats

Suivi de la morphologie cellulaire tout au long du processus de différenciation
Tous les résultats décrits ci-dessous ont été générés à l’aide de la lignée MCND-TENS2 iPSC pour la différenciation OC. Cette lignée iPSC a déjà été utilisée dans plusieurs études 32,33. Néanmoins, d’autres lignées iPSC ont également été utilisées avec succès avec ce protocole de différenciation.

L’évaluation visuelle régulière révèle de.......

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Discussion

Ce protocole offre une méthode fiable et robuste pour différencier les cellules iPS en CO. Néanmoins, il existe plusieurs pièges qui peuvent être rencontrés tout au long du processus de différenciation. Des lignées de CSPi humaines générées à partir de cellules d’origines tissulaires différentes ont été différenciées avec succès à l’aide de ce protocole33. Lors de la congélation des cellules iPS (voir l’étape de protocole « 3. Congélation des cellules iPS »), un puits au point de passage a été rec.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent pas d’intérêts concurrents.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier les membres du laboratoire Giachelli pour leur aide technique et leur soutien. Nous remercions le Centre de microscopie W. M. Keck et le directeur du Centre Keck, le Dr Nathanial Peters, pour leur aide dans l’obtention des images de microscopie confocale et de microscopie à grand champ. Nous remercions également l’UW Flow Core Facility et le directeur de Flow Core Facility, Aurelio Silvestroni, pour leur soutien technique et leur assistance. Enfin, nous remercions Hannah Blümke pour son soutien en matière d’illustration et de conception graphique.

Le financement a été fourni par le biai....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Anticorps 2-MercaptoethanolSigma AldrichM6250-10ML
- Anti-Cathepsine K  ;AnticorpsAbcam ab19027
- Anticorps anti-humain CD45BD555485
- IgG1 de souris conjugué à l’APC, &kappa ; Contrôle des isotypesBD555751
Anticorps - Anticorps anti-humains CD14563372
BV711 - IgG2b de souris conjugués à la BV711, &kappa ; Contrôle d’isotypeBD563125
Anticorps - Chèvre Anti-Lapin IgG H& L Alexa Fluor® ; 647Abcamab150079
Anticorps anti-CD14 humain conjugué au PER& D SystemsFAB3832P-025
Anticorps - Intégrine humaine alpha M/CD11b conjuguée au PE& D SystemsFAB16991P-025
Anticorps anti-humain conjugué au PE-Cy7 CD34BD560710
Anticorps - IgG1 de souris conjugué au PE-Cy7 &kappa ; Contrôle des isotypesBD557872
Anticorps anti-CD11b humain conjugué PE/Cyanine5Biolegend301308
Anticorps - IgG1 de souris conjugué à PE/Cyanine5, &kappa ; Isotype CtrlBiolegend400118
Anticorps - Souris conjuguée PerCP-Cy5.5 IgG1 &kappa ; Contrôle d’isotypeBD550795
Anticorps - PerCpCy5.5-conjugué Anti-Human CD43BD563521
Kit de dosage de résorption osseuseCosmoBioUSACSR-BRA-24KIT
Countess 3 Compteur de cellules automatisé ThermoFisher16812556
Cultrex Qualifié de cellules souches Facteur de croissance réduit Extrait de membrane basaleR& D Sytems3434-010-02Extrait de membrane basale
DAPIR& D Systems5748/10
Dispase (5 U/mL)STEMCELL Technologies7913
DMEM/F-12 avec 15 mMde cellules souches36254
DMSOSigma AldrichD2650
DPBSSigma AldrichD8537-500ML
Protéine morphogénétique osseuse humaine 4 (hBMP4)STEMCELL Technologies78211
IL-3 humaineSTEMCELL Technologies78146.1
Facteur de stimulation des colonies de macrophages humains (hM-CSF)STEMCELL Technologies78150.1
Activateur du récepteur soluble humain du facteur nucléaire-&kappa ; B Ligand (hsRANKL)STEMCELL Technologies78214.1
Facteur de cellules souches humaines (hSCF)STEMCELL Technologies78155.1
Human TruStain FcX (solution de blocage du récepteur Fc)Biolegend422301
Facteur de croissance de l’endothélium vasculaire humain-165 (hVEGF165)STEMCELL Technologies78073
Invitrogen Rhodamine PhalloidinInvitrogenR415
MEM &alpha ;, nucléosides, sans rouge de phénolThermoFisher41061029
mFreSRSTEMCELL Technologies05855Milieu de cryoconservation sans sérum
mTeSR Plus milieuSTEMCELL Technologies100-0276Milieu sans sérum iPSC humain (hiPSC-SFM)
Nunclon Sphera 96-Well, Nunclon Sphera-Treated, U Bottom-Saw MicroplaqueThermo Scientific174925Fond rond fixation ultra-basse Plaque à 96 puits
P1000 Embouts à alésage largeThermoFisher2079GPK
ROCK-Inhibitor Y-27632STEMCELL Technologies72304
StemSpan SFEMStemCell09650Milieu de culture cellulaire hématopoïétique
TrypLE Select Enzyme (1X), sans rouge de phénolThermo Fisher12563011Réactif de dissociation unicellulaire
UltraglutamineBioscience LonzaBE17-605E/U1
X-VIVO 15 Milieu cellulaire hématopoïétique sans sérumBioscience Lonza04-418QMilieu basal hématopoïétique
µ ;-Slide 8 Bien élevéIbidi80806
conjugué à l’APC BD conjugués à R HEPES

Références

  1. Bar-Shavit, Z. The osteoclast: A multinucleated, hematopoietic-origin, bone-resorbing osteoimmune cell. Journal of Cellular Biochemistry. 102 (5), 1130-1139 (2007).
  2. Boyce, B. F. Advances in the regulation of osteoclasts and ....

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Réimpressions et autorisations

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