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Artículo de método

Desde que me MEFs Matrigel: hESCs pases en la presencia de MEFs

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DOI:

10.3791/722

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4 de junio de 2008

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En este artículo

Resumen

Este video muestra la forma de crecer células madre embrionarias humanas (hESCs) en células embrionarias de ratón fibroblastos de alimentación (MEF).

Resumen

Este video muestra la forma de crecer células madre embrionarias humanas (hESCs) en células embrionarias de ratón fibroblastos de alimentación (MEF).

Protocolo

Dividir las células madre embrionarias humanas (hESCs) chapada en fibroblastos embrionarios de ratón (MEFs)

Por lo general, una placa de células madre confluentes se puede dividir 01:06-1:10, dependiendo de la línea de células madre en particular. La placa de división, confluyen de nuevo 5-7 días después de partir.

  1. Dos días antes de partir, gelatinizar las placas con una solución de gelatina al 0,1%. Para una placa de 6 pocillos, agregar 2 ml en cada pocillo de la placa y se incuba en un 37 ° C, 5% de CO 2 incubadora de cultivo de tejido durante la noche.
  2. Placa MEFs en gelatinizado placas de 6 pocillos el d....

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Discusión

Este video muestra la forma de crecer células madre embrionarias humanas (hESCs) en células embrionarias de ratón fibroblastos de alimentación (MEF). En el último paso antes de chapado, cuando la hESCs se resuspenden, deben ser de tamaño de las colonias más o menos uniforme y forma. Pipeta cuidadosamente la suspensión de células madre hacia arriba y abajo varias veces para que las colonias más pequeñas y más uniforme, pero no tanto que las células individuales o colonias muy pequeñas manchas generated.Immunofluorescence y citometría de fluj.......

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Agradecimientos

Estudios en humanos con células madre embrionarias en el laboratorio Teitell el apoyo de un Instituto de Medicina Regenerativa de California (CIRM), las semillas de subvención RS1-00313. Agradecemos a los miembros del Centro de Medicina Regenerativa de amplias e Investigación de Células Madre de la UCLA, en especial el Dr. Amander Clark, el doctor Jerome Zack, y los miembros del Fondo para el UCLA amplio núcleo de célula madre Instituto por el apoyo de nuestros estudios.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Sustituto de suero para knockout (KSR)ReactivoGIBCO, por Life Technologies10828-028
DMEM/F12ReactivoGIBCO, por Life Technologies11330-057
Aminoácidos no esencialesReactivoGIBCO, por Life Technologies11140-050
GlutaMax ReactivoGIBCO, por Life Technologies35050-061
DMEMReactivoGIBCO, por Life Technologies11995-065
SFBReactivoClontech Laboratories631107
L-glutaminaReactivoGIBCO, por Life Technologies25030-081
BMEReactivoFisher ScientificBP176-100
bFGFReactivoR&D Systems233-FB-025
Colagenasa IVReactivoGIBCO, por Life Technologies17104-019
DispasaReactivoStem Cell Technologies17105-041
Penicilina / Estreptomicina ReactivoGIBCO, por Life Technologies15140-122
GelatinaReactivoChemicon InternationalES-006-B
MatrigelReactivoBD Biosciences354277
Anticuerpo Oct-4ReactivoSanta Cruz Biotechnology, Inc.SC-9081
Anti-h/mSSEA-4 conjugado con fito–eritrina, ratón IgG3ReactivoR&D SystemsFAB1435P
Anticuerpo secundario IgG de conejo conjugado con FITCReactivoJackson ImmunoResearch715-095-152

Referencias

  1. Thomson, J. amesA., Itskovitz-Eldor, J. oseph, Shapiro, S. anderS., Waknitz, M. ichelleA., Swiergiel, J. enniferJ., Marshall, V. ivienneS., Jones, J. effreyM. Embryonic Stem Cell Lines Derived from Human Blastocysts. Science . 282, 1145-1147 (1998).
  2. Xu, C. hunhui, Inokuma, M. argaretS., Denham, J. errod, Golds, K. athaleen, Kundu, P. ratima, Gold, J. osephD., Carpenter, M. elissaK.

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