Yöntem makalesi

ES Hücre türetilen nöroepitelyal Hücre Kültürleri

DOI:

10.3791/118

⸱

30 Kasım 2006

 ,  ,  , 
1McLean Hospital, Harvard Medical School

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Stromal hücre kaynaklı etkinlik inducing (SDIA) kullanarak embriyonik kök (ES) hücreleri nöroepitelyal öncüleri türetilmesi.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Embriyonik kök hücrelerin yeni tedavilerin geliştirilmesi için cazip bir araç haline getirir tüm germ hücreleri ayırt etmek için bir potansiyele sahip. Genel olarak, ES hücrelerinin farklılaşma, daha sonra yayılır ve olgun hücre fenotipleri içine ayırt edilebilir olgunlaşmamış progenitör hücreler, ilk oluşturmak için konsept izler. İlk olarak, olgun sinir hücrelerine olgunlaşmamış nöroepitelyal öncüleri ve ikinci, farklılaşma türetme ve genişleme: Bu aynı zamanda sinir hücrelerinin gelişiminde iki önemli adımlar takip ettiği ES hücre kökenli bir nöron için geçerlidir. Neuroectoderm dahil olmak üzere tüm germ hücreleri farklılaşma ortaya koymaktadır embriyoid gövde (EB) oluşumu, ES hücrelerinin sinir atalarıdır üretmek için ortak bir yöntem dayanmaktadır. Kafatası kemik iliği kaynaklı stromal hücreler (1) ile birlikte kültür ES hücreleri tarafından elde edilebilir stromal hücre kaynaklı etkinlik inducing (SDIA), nöroepitelyal hücre gelişimi neden için alternatif ve daha verimli bir yöntem kullanır. , EB oluşumu ve SDIA Her ikisi de, sinir benzemeye düşünülmektedir rozet benzeri yapıların geliştirilmesi, tüp ve / veya nöral krest gibi atalarıdır ortaya koymaktadır. Sinir öncüleri tanımlı kültür koşulları kullanarak belirli nöronlar ve glia hücreleri içine alacak şekilde genişlemiştir ve daha farklılaşmış, izole edilebilir. Burada, üretim ve izolasyon gibi rozet, stromal hücre hattı MS5 (2-5) ile birlikte kültür deneylerinde açıklar.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Adım 1

  1. Plaka mitomisin-C α-MEM medya jelatin kaplı (30 dakika süreyle% 0.01) 6 kuyucuğu 70.000 / cm2 bir yoğunluk MS5 hücreleri (2,5 saat süreyle 10 mg / ml) ggrowth inhibe.
  2. Hücreleri eklenir ve bir tek tabaka (gece büyüme üzerinde) oluşmuştur, SRM geçmek.
  3. Elle olan bir şırınga yardımıyla, 27 ES hücre kültürleri ½ G iğne ES hücre kolonileri izole eder.
  4. MS5 hücreleri (genellikle 6 plaka başına 2-3 koloni), düşük yoğunluklu 1 ml mavi ucu ve plaka koloniler dikkatle Tritrurate.

Not: Embriyonik kök hücrelerin, aynı zamanda, kollajenaz veya tripsin kullanarak enzimatik yayılma alınabilir.

Adım 2

  1. Rozet içeren koloniler oluşana kadar 14-21 gün MS5 besleyiciler ES hücreleri büyütün.


Not: Değişim medya sık sık. Rozet, sömürge ve SRM (3) 300-500 ng / ml Noggin eklenirse onların oluşumunu büyük ölçüde artabilir dış kenarları genellikle . Bazı farklılaşma protokolleri, SRM N2-medya ile değiş tokuş edilebilir ve hücre özellikleri (2-5) teşvik etmek için, büyüme ya da diğer faktörler ile desteklenmiş.

Adım 3

  1. Izole etmek ve rozet almak, 27 ½ G iğne mikroskop altında.

Not: kesme ve MS5 stromal hücreler toplama kaçının. Koloniler rozet dolu, bir de tüm koloni ayırabilirsiniz.


Adım 4

  1. Aspire rozet, kümeler, poli-L-ornitin (% 0.001) ve fibronektin (1 mcg / ml) veya laminin (1 mcg / ml) kaplı 6 kuyu üzerine 1 ml mavi ucu ve plaka bunları bunları dikkatle tritrurate N2-Bir medya genellikle bFGF (20 ng / ml) ile desteklenmiştir. Rozet reform ve genişleyecektir.

Not: hücre yaşamını geliştirmek için, bir tabak damlacıkları küçük kümeler hücre yoğunluğu artırmak için. Bu adım aynı zamanda, hücre özellikleri (2-5) teşvik etmek için ek bir büyüme ya da diğer faktörler ile N2-Bir medya tamamlayan tarafından değiştirilebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, SDIA kullanarak insan ES hücrelerinin nöroepitelyal hücreleri üreten ve izole farklı adımları gösteriyor. Bu yöntemin uygulama manifoldu ve belirtilen nöron (örneğin 1, 2, 5-9) üretmek için birçok protokol olmuştur. Rozet anterior fenotip (2, 5, 10) nöral tüp hücreleri benzerler ve aynı zamanda nöral krest atalarıdır (11, 12) içeren düşünülmektedir. Buna ek olarak, belirli faktörler tarafından belirlenen kültür koşulları desenli olabilir çünkü onlar plastisite belirli bir düzeyde muhafaza. Böylece, onlara ES hücre farklılaşması...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların beyan edecek herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
L-GlutaminLife Technologies tarafından üretilen GIBCO25030
alpha-MEMLife Technologies tarafından üretilen GIBCO12571
Penisilin/streptomisinLife Technologies tarafından üretilen GIBCO15140
Knockout-DMEMLife Technologies tarafından üretilen GIBCO10829
KnockOut serum ikamesiLife Technologies tarafından üretilen GIBCO10828
MEM esansiyel olmayan amino asit solüsyonuLife Technologies tarafından üretilen GIBCO12383
DMEM/F12Life Technologies tarafından üretilen GIBCO11330
N2-A takviyesiKök Hücre Teknolojileri07152
Mitomisin-CSigma-AldrichM0503
Tip-A jelatinSigma-AldrichG1890
poli-L-ornitinSigma-AldrichP4957%0,01'lik çözelti
LamininSigma-AldrichL-2020
FibronektinSigma-AldrichF2006
Temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF)Invitrogen13256
27 1/2 G iğneli 1 mL şırıngaBD Biosciences309623
N2-A besiyeribesiyeriDMEM/F12 + %1 N2-A takviyesi
Serum ikame medyası (SRM)besiyeriKnockout-DMEM + %20 Knockout serum ikamesi + %1 MEM temel olmayan amino asit çözeltisi + 2 mM L-glutamin
α-MEM besiyeribesiyeriα-MEM + %10 FBS + 2 mM L-glutamin + %1 penisilin/streptomisin
MS5hücre hattıstromal hücreler
Mikroskop
6 kuyucuklu plakalardoku kültürü için

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kawasaki, H., et al. Induction of midbrain dopaminergic neurons from ES cells by stromal cell-derived inducing activity. Neuron. 28, 31-40 (2000).
  2. Perrier, A. L., et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 12543-12548 (2004).
  3. Pruszak, J., Isacson, O., Sullivan, S., Cowan, C., Eggan, K. Directed differentiation of human embryonic stem cells into dopaminergic neurons. Human Embryonic Stem Cells: The Practical Handbook. , (2007).
  4. Pruszak, J., Sonntag, K. C., Aung, M. H., Sanchez-Pernaute, R., Isacson, O. Markers and methods for cell sorting of human embryonic stem cell-derived neural cell populations. Stem Cells. 25, 2257-2268 (2007).
  5. Sonntag, K. C., et al. Enhanced yield of neuroepithelial precursors and midbrain-like dopaminergic neurons from human embryonic stem cells using the bone morphogenic protein antagonist noggin. Stem Cells. 25, 411-418 (2007).
  6. Kawasaki, H., et al. Generation of dopaminergic neurons and pigmented epithelia from primate ES cells by stromal cell-derived inducing activity. Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 1580-1585 (2002).
  7. Ko, J. Y., et al. Human embryonic stem cell-derived neural precursors as a continuous, stable, and on-demand source for human dopamine neurons. J Neurochem. 103, 1417-1429 (2007).
  8. Hong, S., Kang, U. J., Isacson, O., Kim, K. S. Neural precursors derived from human embryonic stem cells maintain long-term proliferation without losing the potential to differentiate into all three neural lineages, including dopaminergic neurons. J Neurochem. , (2007).
  9. Zhang, S. C. Neural subtype specification from embryonic stem cells. Brain Pathol. 16, 132-142 (2006).
  10. Pankratz, M. T., et al. Directed neural differentiation of human embryonic stem cells via an obligated primitive anterior stage. Stem Cells. 25, 1511-1520 (2007).
  11. Lazzari, G., et al. Direct derivation of neural rosettes from cloned bovine blastocysts: a model of early neurulation events and neural crest specification in vitro. Stem Cells. 24, 2514-2521 (2006).
  12. Pomp, O., Brokhman, I., Ben-Dor, I., Reubinoff, B., Goldstein, R. S. Generation of peripheral sensory and sympathetic neurons and neural crest cells from human embryonic stem cells. Stem Cells. 23, 923-930 (2005).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

ES H cre DiferansiyasyonuN roepitelyal H crelerEmbriyoid Cisim Olu umuStromal H cre Kaynakl nd kleme AktivitesiRozet Benzeri Yap larN ral Progenit r zolasyonuKo k lt r DeneyleriMS5 Stromal H creleriN ral T p Progenit rleriN ral Krista Progenit rleri

İlgili makaleler