1. Çözeltiler ve Reaktifler
- Tam RPMI
- 500 ml'lik bir RPMI-1640 ortamı şişesine 56 ml fetal buzağı serumu (FCS) ve 5.5 ml 200 mM L-glutamin ekleyin.
- BrdU Stok Çözümü
- Dulbecco'nun Fosfat Tamponlu Salininde (DPBS) 32.5 mM BrdU (10 mg / ml) hazırlayın.
- BrdU Komple RPMI
- 10 ml Komple RPM'ye 6,2 μl BrdU stok çözeltisi ekleyin.
- DNase Çözeltisi
- DPBS'de 1 mg DNaz / ml hazırlayın.
- Boyama Tamponu
- DPBS'de %3 ısıyla etkisiz hale getirilmiş FCS ve %0.09 sodyum azid hazırlayın.
- Fiksasyon Tamponu, Geçirgenleştirme Tamponu ve Yıkama Tamponu tanımları için Malzeme Listesine bakın.
2. Hücreler
NOT: Hücreler 6 aydan daha uzun süre kültürlenmedi. Bu yöntem, hücre yoğunluğu ve kültür ortamında yapılan ayarlamalarla herhangi bir yapışmayan hücre hattına doğrudan uyarlanabilir. Deneyin başlangıcında katlanarak büyüyen hücreleri kullanın.
- NALM6 hücrelerini Tam RPM'de T-75 kültür şişelerinde tutun. Tüm adımları Sınıf II Biyogüvenlik Kabini kullanarak steril koşullar altında gerçekleştirin.
- Kültürü haftada üç kez bölerek NALM6 hücrelerini ml başına 1-2 x 106 hücre arasında tutun.
- Havada% 5 CO2 içinde 37 ° C'de inkübe edin.
3. BrdU ile Hücrelerin Darbe Etiketlemesi
DİKKAT: Potansiyel bir mutajen ve teratojen olduğu için BrdU'yu dikkatli kullanın.
- Hücreleri 5 dk.
için 150 x g'da santrifüjleyin
not: Hücrelerin taze ortama aktarılması, sonuçların tekrarlanabilirliğini artırır.
- Bir hücre sayımı gerçekleştirin ve 2 x 106 hücre / ml'de Tam RPM'de hücreleri yeniden askıya alın.
- Hücreleri 1'de 2 BrdU Tam RPMI ile seyreltin ve 1 x 106 hücre / ml'lik bir nihai hücre konsantrasyonu üretin.
- 37 ° C'de% 5 CO2 ile 45 dakika inkübe edin, ardından hücreleri 10'da 1 oranında tam RPMI ile seyreltin. Hücreleri 5 dakika boyunca 150 x g'da santrifüjleyin ve tüm süpernatanı dikkatlice atın.
- Hücreleri küçük bir hacimde (~ 100 μl) tam RPMI içinde yeniden süspanse edin, bir hücre sayımı yapın ve 1 x 106 hücre / ml'ye ayarlayın.
- 1 ml hücreyi 48 oyuklu bir plakanın kuyucuklarına pipetleyin. Daha tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için 1 ml DPBS'yi boş kuyucuklara pipetleyin.
- İstenilen zaman noktaları için havada% 5 CO2 içinde 37 ° C'de inkübe edin, burada 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23 ve 24 saat
not: Sürenin uzunluğu, deneysel tasarımın neyi ölçmeyi amaçladığına bağlı olacaktır.
- Tüm hücreleri bir pipet kullanarak FACS tüplerine aktarın. İyiliği 1 ml hacim PBS ile sırayla 5 ml'lik bir toplam hacme kadar durulayın.
- 5 dakika boyunca 150 x g'da santrifüjleyin ve tüm süpernatanı dikkatlice çıkarın. Hücreler boyamaya hazırdır, bunu hemen yapın (bölüm 4).
4. Hücre Boyama
NOT: Hücrelerin yüzey boyaması gerekiyorsa, bunu fiksasyondan önce yapın ve hücrelerin baştan sona 4 °C'de tutulduğundan emin olun.
- Hücreleri 100 μl boyama tamponunda yeniden süspanse edin (isteğe bağlı yüzey boyama için, yüzey antijenlerine önerilen antikor hacmini ekleyin ve 4 ° C'de 30 dakika inkübe edin).
- 1 ml boyama tamponu ekleyin, 150 x g'da 5 dakika santrifüjleyin ve süpernatanı atın.
Not: Spesifik antikor, konsantrasyon, inkübasyon süresi vb. belirli deneysel hedeflere bağlı olarak değişecektir.