Yöntem makalesi

Retro-Orbital Kan Örneklemesi: Bir Farenin Retro-Orbital Sinüsünden Mononükleer Hücreleri İzole Etmek İçin Bir Yöntem

30 Nisan 2023

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Mopin A. et al. Murine C1498 Hücre Hattını ve İlişkili Lösemi Fare Modelini Karakterize Etmek İçin Ayrıntılı Bir Protokol. J. Vis. Uzm. (2016)

Video, bir farenin retro-orbital sinüsünden periferik kan alımı ve yoğunluk gradyanlı santrifüjleme ile mononükleer hücrelerin kandan daha fazla izolasyonu için bir örnekleme yöntemini açıklar.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Retro orbital kan toplama

  1. Hipotermiyi önlemek için ötenaziden hemen önce steril koşullar altında, laminer akış başlığında ve bir ısıtma lambası altında retro orbital kan toplama işlemi gerçekleştirin.
  2. Anestezi için 150 mg / kg'da ketamin ve 10 mg / kg'da ksilazin kullanın. 18 ml PBS çözeltisi içinde 1.5 ml ketamin ve 0.5 ml ksilazin seyrelterek anestezik çözeltiyi hazırlayın.
  3. Gözün medial kantusuna bir kılcal tüp yerleştirin. Kan, orbital sinüsten kılcal boruya yükselecektir. Steril bir gazlı bezle göze hafifçe baskı uygulayarak kanamayı kontrol edin.
    not: Bu teknik kullanılarak 100 ila 200 μl kan hacmi toplanabilir.
  4. Kanı bir EDTA tüpüne toplayın ve mononükleer hücreleri izole etmeden önce numuneyi buz üzerinde saklayın.

2. Kan mononükleer hücrelerinin izolasyonu

  1. Kan örneğini (100 ila 200 μl; adım 1.1'den elde edilir) bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve çözelti hacmi 500 μl olana kadar PBS / 1 mM EDTA çözeltisi ekleyin. 30 G'lik bir iğne ve 1 ml'lik bir şırınga kullanarak kanı içeren çözeltinin altına 500 μl ayırma solüsyonunu dikkatlice katmanlayın. Kanı ve ayırma solüsyonunu karıştırmayın.
  2. Tüpleri RT'de 20 dakika boyunca 800 x g'da (frensiz) santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, bir pipet kullanarak hücresel halkayı (opak beyaz tabaka) toplayın. Hücreleri bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın.
    not: Opak beyaz tabaka, monositlerin yanı sıra lenfositleri de içerir ve alt tabaka - ayırma çözeltisi - ile üst tabaka arasında görünür.
  3. 1 ml PBS çözeltisi ekleyin ve tüpü 10 dakika boyunca 350 x g'da santrifüjleyin. Hücreleri 600 μl FACS tamponunda yeniden süspanse edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Ketamin 1000 (100 mg / ml) BAŞAK 3.59713E+12
Ksilazin SEDAXYLAN (20 mg / ml) CEVA (Türkçe)
PBS çözeltisi (1x konsantre) ThermoFisher Bilimsel 14190
Ultra Saf 0,5 M EDTA çözeltisi, pH 8,0 ThermoFisher Bilimsel 15575
Ayırma çözümü (Pancoll Mouse) PANBIYOTEKNOLOJI P04-64100
EDTA Tüpü Greiner Bio-Bir 454034
Pasteur Pipet 150 mm (kılcal boru) Balıkçı markası 1154-6963
Akış sitometri tüpleri (mavi) Beckman Coulter'ın fotoğrafı. 2523749
Mikrosantrifüj tüpü (1.5 ml) ThermoFisher Bilimsel 05-408-129
Steril gazlı bez süngerler URGO (URGO) 501580
30 G iğne Becton ve Dickinson 304000
1 ml şırınga Terumo SS-01T
Shandon Cytospin 3 Sitosantrifüj ThermoFisher Bilimsel
Haber Bülteni Serisi Belediyesi Serisi

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Mononuclear Cell IsolationDensity Gradient CentrifugationFlow Cytometry AnalysisMouse Retro Orbital SinusEDTA AnticoagulationCapillary Blood CollectionPBS WashingFACS Buffer StainingLeukemic Cell Line C1498

İlgili makaleler