-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Chimeras Üretim Medaka Embriyolar ve Hücre Nakli Dechorionation

Research Article

Chimeras Üretim Medaka Embriyolar ve Hücre Nakli Dechorionation

DOI: 10.3791/2055

December 22, 2010

Sean R. Porazinski1, Huijia Wang1, Makoto Furutani-Seiki1

1Centre for Regenerative Medicine, Department of Biology and Biochemistry,University of Bath

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

, Sert koryon ve yumuşak embriyolar, Medaka embriyo manipülasyonu nedeniyle daha zebrafish içinde daha fazla yer almaktadır. Bu video görüntüleme ve kuruntulardan üretimi için hücre nakli için agaroz dechorionation montaj Medaka embriyolar işlemek için nasıl adım adım yordamlar, gösterir. Bu prosedürler, omurgalı genomu fonksiyonları genetik diseksiyon için tamamlayıcı özellikleri tam olarak yararlanmak için bir laboratuvar Medaka ve zebrafish kullanmak için gereklidir.

Abstract

Medaka, hem de genetik ve embriyolojik analizler sağlar ve genom fenotip odaklı mutant ekranlarında 1 yürütülen edildiği üç omurgalı model organizmaların biridir yumurta küçük bir tatlı su balığı . Medaka ve zebrafish arasında ilgili genlerin fonksiyonel örtüşme Farklılıklar, böylece tek bir türün 2, Medaka ve zebrafish omurgalı genomu fonksiyonları genetik diseksiyon için tamamlayıcı tanımlanamayan roman fenotiplerinin kimlik sağlar . Manipülasyon gibi dechorionation Medaka embriyolar, görüntüleme ve hücre nakli için montaj embriyolar, bir laboratuvarda, Medaka ve zebrafish hem de üzerinde çalışmak için temel prosedürler vardır. Hücre nakli Medaka mutasyonlar hücre özerklik inceler. Chimeras etiketsiz alıcı embriyolara nakli donör embriyolardan etiketli hücreler tarafından üretilir. Donör hücreleri nakledilen hücrelerin klonları geliştirme sırasında ilgi doku entegre edilebilir ve böylece kaderini haritaları 3 dayanan alıcı embriyolar belirli alanlarda transplante edilebilir. , Sert koryon ve yumuşak embriyolar, Medaka embriyo manipülasyonu nedeniyle daha zebrafish içinde daha fazla yer almaktadır. Bu video, Medaka embriyolar işlemek için ayrıntılı yordamlar göstermektedir.

Protocol

1. Embriyoların geliştirilmesi

  1. Serilir zaman, yumurta koryon eklenti filamentler, çünkü kümelenmiş. Embriyoların normal geliştirmek izin vermek için, ayrı yumurta gereklidir. Karışmayan ve iki forseps ile ek filamentler tutarak eklenti filamentler kesmek.
  2. Unclustering sonra dışkı ve yosun, yumurta ayrılır ve maksimum yoğunluk 6cm Petri kabı başına 40 yumurta, taze embriyo orta transfer.
  3. Medaka embriyoların 27 zebrafish biraz daha yavaş gelişir ° C. Iki tür arasında kuluçka zamanlaması farklıdır; Medaka embriyolar, 7 gün içinde koryon yumurtadan çıkar ve hemen zebrafish embriyoların 2 gün içinde yumurtadan ise yüzmek ve yemeye başlar ancak 5-6 gün denize girmek ve yemeye başlar. Medaka Geliştirme Iwamatsu hazırlama 4 göre sahnelenir.
  4. Medaka embriyo gelişimi deneysel planlarına uygun sıcaklık seçerek rahatlıkla ayarlanabilir. Medaka embriyoların Kalkınma erken gelişim 4 ° C'de durdurulabilir. Aşamada 24 saat sonra kalp atmaya başladığında, geliştirme minimum sıcaklık 18 ° C ile yavaşlatılabilir.
  5. Zebrafish somitegenesis beyin gelişimi öncesinde ise organ / dokuların görünümü zamanlama zebrafish ile karşılaştırıldığında Medaka biraz daha farklı, Medaka somitogenesis yani beyin gelişimi başlamasından sonra ortaya çıkar.

2. Koryon çıkarma

Medaka koryon sert bir iç tabaka ve yumuşak bir dış yüzeyi ile iki koruyucu tabaka oluşur. Böylece, bir iki adım proteaz tedavi pronase ve kuluçka enzim istihdam koryon kaldırmak için gereklidir.

Bir kez dechorionated, embriyoların 1X BSS tutulmalıdır. Yarı steril koşullarda uzun süreli gözlem gereklidir, özellikle dechorionated embriyoların başarılı kültür artıracaktır. Bunlar% 70 etanol ile 1X BSS ile durulama ardından steril steril solüsyonların kullanımı (örneğin antibiyotik ile 1X BSS sterilize) ve araçları kullanarak içerir.

Dechorionated Medaka embriyolar dechorionated zebrafish embriyolar daha yumuşak ve daha kırılgan olduğu için, ekstra bakım sağlamak için pipet hava kabarcıkları temasa geçmeyiniz, bu ani çöküşü neden olarak alınmalıdır. Embriyoların en az zararla sağlamak için, geniş ağızlı ısı pipet pompa ile parlatılmış cam pipet embriyolar transfer için kullanılan olmalıdır ve bir saç döngüsü, gözlem için embriyolar yolunuzu kullanılmalıdır. Sigara yapışık Petri kutularına embriyolar yüzeylere tutunmasını önlemek için kullanılmalıdır.

  1. Dechorionation için önce yumurta yeterince ayrılmış ve temizlenmiş olduğu kontrol edilmelidir.
  2. Pronase ve kuluçka enzimler proteinazı olduğundan, buz üzerinde tutulmalıdır ve bu enzimlerin embriyoların maruziyeti en aza indirmek olmalıdır.
  3. Zımpara (P2000 tane iriliğine, su geçirmez) 9cm petri kabı kapağı yerleştirilir yumurta transferi. Aşırı orta çıkarın ancak embriyo kurumasını önlemek için yeterli bir hacim kalmasını sağlamak.
  4. Dış yüzeyi kılların bazılarını kaldırın ve hafifçe koryon yüzeyinde (Şekil 1) puan 45-60 saniye için embriyolar yavaşça döndürün. Orijinal Petri kabı geri embriyo transferine ve incelemek.

    Zımpara üzerinde yuvarlanma embriyolar minimum basınç uygulayarak ve zımpara kağıdı yüzeyinde parmak paralel tutulması, işaret parmağı kullandığınızda. Bir defada 5-7 embriyolar daha fazla rulo etmeyin. Bu önlem, embriyoları birbirlerine altında ezilme riski en aza indirecektir.

  5. 27 20mg/ml pronase ve 40-60 dakika inkübe embriyolar ile bulaşık yumurta orta değiştirin ° C.

    Emin olun embriyolar yeterince pronase kapsadığı ve yemeğin üzerine bir kapak bulunur. Kullanılmayan pronase öz-sindirimi en aza indirmek için bu adımı sırasında buz üzerinde tutulmalıdır ve aktivite (yaklaşık 1-2 hafta) kaybolana kadar tekrar edilebilir.

  6. Pronase, yeniden kullanım ve 5X yıkama embriyolar eklenecek kuluçka enzim inaktive olarak pronase izlerini kaldırmak için embriyonun orta kurtarma.
  7. Embriyolar tek tabakalı bir çanak olarak oturup sağlamak, kuluçka enzim ile embriyo orta ve kapak embriyolar çıkarın.

    Yumurta çanak biri diğerinin üstüne oturup koryon erirken, altta kalanlar ezilmiş olacak. Buz üzerinde kullanılmayan kuluçka enzim tutun.

  8. 27 embriyolar ° C'de ve 15 dakika sonra bir stereomikroskopta kullanarak kuluçka ilerleme periyodik olarak kontrol edin.

    Bu ay krater gibi delik bir dizi koryon iç tabakası, kısa sürede kolayca manuall kaldırıldı koryon yumuşak dış tabaka bırakarak aşağıdaki çözünür belirmeye başlar görülecektiry Tüm kuluçka süreci 15-60 dakika sürebilir.

  9. 1X BSS içeren Petri embriyolar koryon çıkıp, embriyo transferi.

    Pipet ucu embriyoların yavaşça rulo izin BSS yüzeye dokunarak 1X BSS kuluçka enzim aktarmak için değil emin olun.

  10. Tüm embriyolar transfer kuluçka enzim sonra, 1X BSS başka bir taze çanak son bir transfer yapmak.

    Bu maruz kalan embriyoların zarar verecek embriyolar, kuluçka enzim herhangi bir kalıntıları maruz kalmaz sağlar. Bir kere bu son yemek koryon dış tabakası hala sahip herhangi bir embriyolar stereomicroscope altında sterilize mikro-forseps kullanarak elle kurtarılmış olabilir.

    Embriyolar aşağıdaki dechorionation geliştirilen gerekiyorsa, penisilin / streptomisin bakteri gelişimini engellemek amacıyla BSS ilave edilmelidir.

Şekil 1
Şekil 1 dechorionation sırasında haddelenmiş ve kusursuz embriyolar Karşılaştırılması. Paneli B haddelenmiş embriyolar paneli A. kusursuz embriyolar görülen kıllar nasıl eksikliği dikkat edin

3. Montaj dechorionated embriyolar

Agaroz gömme, canlı embriyo görüntüleme daha uzun süre (örneğin time-lapse görüntüleme) yanı sıra sabit embriyoların ayrıntılı gözlemler için yararlıdır. Gastrulasyon ve erken organogenez (sahne sahne 28 14) sırasında, Medaka embriyoların periderm, gelişmekte olan embriyo ve yumurta sarısı 5 de kapsayan bir doku tabakası boyunca ritmik kasılma hareketleri dalgaları sergilerler. Embriyolar kasılma hareketleri durdurmak için 6 3.5mm 1-heptanol ile tedavi edilir.

Aşamada 28 (64hpf) sonra embriyolar hareketi durdurmak için, embriyolar gömmeden önce Tricaine mesilate (TMS) ekleyerek damla anestezi. TMS (sadece az miktarda ekleyin, bu doz, yaklaşık 01:25 seyreltme optimize edilmesi gerekiyor) agaroz eklenir.

  1. 37 ° C ve bu sıcaklıkta muhafaza ısıtma ile% 3 jelleşme sıcaklığı düşük agaroz (1X BSS) küçük bir miktar çözülme.
  2. Aşağıdaki adımları agaroz embriyo yönlendirici önce katılaşmaya olmadığından emin olmak için hızlı bir şekilde yapılmalıdır. Eppendorf tüp kap depresyon doldurmak için geniş ağızlı bir cam pipet aktarımı yeterli erimiş agaroz kullanma.
  3. BSS embriyo üzerinde taşıma kap depresyon en aza indirmek için bir dechorionated embriyo transferi. Hemen alımı kap depresyon ve bir Petri kabındaki kültür odasına transfer agaroz ve embriyo.

    Altındaki bir cam pencere ile 3.5cm Petri kabı kullanılır. Ters bir mikroskop kullanarak görüntüleme için, embriyolar yönelik gövde ön yüzü aşağı bakacak şekilde ve kapak cam yakın yerleştirilir. Dik bir mikroskop kullanarak görüntüleme için, agaroz kalınlığı en aza indirilmiştir.

  4. 3.5cm Petri kabı, buz ve su (suyun büyük bir çanak kabaca 1 / 3 toplam derinlik doldurulur) içeren bir 14cm çaplı Petri kabı içine aktarın. Odanın alt 14cm Petri kabı sıkıca aşağı tutarken, hafifçe erimiş agaroz istediğiniz gibi embriyo yolunuzu bir saç döngüsü kullanımı ve embriyo agaroz orijinal konumuna yavaşça yükselterek daha küçük çanak ve indirme katılaşır kadar basılı tutun. buz gibi soğuk su.

4. Medaka embriyolar hücre nakli

Bu prosedürün amacı, ilgi gen hücre özerk (hücre içinde) veya olmayan hücre-otonom (hücreler arası) eylemleri belirlemek için.

Donör hücreleri nakli değerlendirme sağlayan, nakli için önce rodamin-dekstran gibi bir izleme boya (eşlik eden Jüpiter protokol 'Medaka Embriyolar Of Mikroenjeksiyon' belirtildiği gibi) veya kullanılan olabilir GFP ekspresyonu ile transgenik gerginlik etiketli olabilir. Hem etiketleme teknikleri bir arada sık sık karşılaşılan otomatik floresan üstesinden gelmek için yararlıdır. Transplantasyonundan sonra zaman atlamalı çalışmalar için, GFP ifade yararlıdır.

Bu işlem boyunca pipet pompa ile geniş ağızlı cam pipet kullanın ve% 70 ile tüm araçları (slaytlar dahil) önceden sterilize EtOH steril 1X BSS ile durulama kapsamlı izledi. Bu nakli yürüten ventral ve dorsal direkleri ayrımcılığa izin Alıcı embriyolar genellikle etrafında aşamada 12 geliştirilmiştir.

  1. Enzim inkubasyon sırasında nakli ve kurulum enjeksiyon aparat önce embriyolar 1.5 saat dechorionating başlar.
  2. Boşluğuna mikroskop lamı 9cm çaplı Petri kabı içine yerleştirin. % 3 metilselüloz küçük bir miktar boşluğuna steril bir pipet kullanarak slayt merkezi ekleyin ve ince yayılabilir.
  3. Kuru metilselüloz yaklaşık 1-2 dakika.
  4. Slayt depresyon doldurmak için steril 1X BSS 350μl ekleyin.
  5. Cam bir pipet kullanarak slayt için bir donör embriyo ve dört adede kadar alıcı embriyoların transferi.
  6. Embriyonun blastodermin yukarı bakacak şekilde bir saç döngü kullanarak yolunuzu embriyolar.

    Embriyolar daha da artması istikrar birbirlerine karşı leant olabilir.

  7. Donör blastodermin ve yavaş yavaş alımı 10-20 hücreler yavaşça içine mikro iğne takın.
  8. Alıcı embriyo blastodermin gerekli bölgeye hafifçe iğne yerleştirin ve hücrelerin yavaş yavaş dışarı atmak. Alıcı blastodermin hücreler ekleyerek bu embriyonun ölümüne neden olacağı gibi, hücre-yolk kesesi sınır bozmak için değil, büyük bir titizlikle alınmalıdır.
  9. Sterilize 1X BSS Petri kabı içine dökün.

    Dikkatle BSS embriyolar bozabilir yemeğin yanında değil mümkün olduğunca yakın olarak çanak içine dökün. Embriyoların üzerine doğrudan BSS dökün ve slayt ve embriyolar dalmış olduğu gibi yeterli BSS ilave edilmemelidir.

  10. Penisilin / streptomisin çanak ve kapak 100μl ekleyin. Normal gelişimi sağlamak için dikkatli bir şekilde 27 ° C inkübatör çanak aktarmak.
  11. Embriyolar periyodik olarak istediğiniz gibi görülebilir. Kazanç-fonksiyonu ve / veya fenotip kurtarma deneyleri yürütmek için nakli kullanırken, görülen bazı morfolojik değişiklikler nakli etkileri nedeniyle olabilir. Böylece birden fazla transplantasyon gereklidir. 2-3 gün sonra, melanophores yolk kesesi, baş, göz ve gövde mevcut olmalıdır. Nakledilen embriyoların bulunması daha sonra başarılı bir chimera büyük olasılıkla üretilen varsa (Şekil 3).

Eğer 55 ° C 4 saat 10 dakika 94 ° C ve PCR yürütmek. 20mg/ml proteinaz K. inkübe 25μl içeren PCR tüp (ler) transfer gerekli, genotip donör embriyo (lar)

5. Temsilcisi sonuçları

Şekil 2
Şekil 2: Örnek bir agaroz gömülü embriyonun konumu . Anterior Sağda gösterilen ve görünümü dorsal. Panel B: endotel hücreleri embriyo vücudun her iki tarafında görülebilir ve fli organizatörü tarafından tahrik GFP ile etiketlenir.

Şekil 3
Şekil 3 transplantasyon sonrası embriyoların Görüntüler. Image hemen transplantasyon sonrası bir donör ve alıcı embriyo gösterir. Donör embriyo tamamen kırmızı blastodermin (ok) sağ tarafta gösterilmiştir. Alıcı embriyo soldaki gösterilir ve blastodermin (ok ucu) görünür kırmızı nakledilen hücrelerin küçük bir kitle tarafından kolayca tanımlanır. Resim B iki alıcı embriyolar sonrası transplantasyonu (27 ° C'de inkübe) yaklaşık 7 saat. Nakledilen hücrelerin nakli sitesinden göç etmiş ve şimdi blastodermin (oklar) dağılmış dikkat edin. Resim C st.29 (yaklaşık 74hpf) bir alıcı embriyo gösterir. Pigmentasyon, gövde ve beyin bölgesi (oklar) göz ve melanophores varlığını unutmayın. Rodamin etiketli hücrelerin embriyonik yapıların bir kabus başarılı bir üretim olduğunu gösteren birçok kolonize görülebilir.

Discussion

Çıkar çatışması ilan etti.

Disclosures

, Sert koryon ve yumuşak embriyolar, Medaka embriyo manipülasyonu nedeniyle daha zebrafish içinde daha fazla yer almaktadır. Bu video görüntüleme ve kuruntulardan üretimi için hücre nakli için agaroz dechorionation montaj Medaka embriyolar işlemek için nasıl adım adım yordamlar, gösterir. Bu prosedürler, omurgalı genomu fonksiyonları genetik diseksiyon için tamamlayıcı özellikleri tam olarak yararlanmak için bir laboratuvar Medaka ve zebrafish kullanmak için gereklidir.

Acknowledgements

Bu çalışma, MRC M. FS bir hibe ile desteklenmektedir.

Materials

.
Embriyo ortamıReaktifiKurum içi N/ A200ml 50X stok çözeltisi, H < sub > 2 < / sub > O / 10 litre RO su içinde 1 ml% 1 metilen mavisi (50X stok çözeltisi: NaCl 14.7g, KCl 0.6g, CaCl < sub > 2 < / sub> 2H < sub > 2 < / sub>O 2.4g, MgSO< sub>4< / sub> 7H < sub>2< / sub>O 4.0g / 1 litre RO su.)
Mikro diseksiyon forsepsAraçları55 INOX A.DUMONT& FILSN/AKoryonun çıkarılması için çok keskin ince uçlar.
İnce su geçirmez zımpara kağıdı - p2000 kum boyutuAraçlarHermes Aşındırıcılar Ltd.N / AEmbriyoları koryonlarla yuvarlamak/temizlemek için çok ince tane boyutu.
% 3 metilselülozReaktifSigmaM 0512Transplantasyon sırasında embriyoları yerinde tutmak için yüksek viskozite.
1X BSSReaktifiŞirket içinde yapılanN/A20XBSS: 130g NaCl, 8g KCl, 4g MgSO4.7H2O, 4g CaCl2.2H2O ve 1L MilliQ su ve otoklavda 10mg Fenol Kırmızısı; MilliQ suda 500mM Hepes otoklavlandı. 25ml 20XBSS ve 15ml 500ml Hepes pH7.0 ekleyin, 500ml'ye kadar doldurun ve kullanmadan önce filtreyle sterilize edin.
Penisilin-streptomisinReaktifiGibco15140-122Dekoryonlu embriyolar inkübe edilirken BSS'ye eklenir.
PronazReaktifiCalbiochem53702Dekoryonasyon için.
Kuluçka enzimiReaktifiDekoryonasyon için kurum içiN/A
Trikain mesilat (TMS) ReaktifSigmaA-504097.9 ml damıtılmış su ve 2.1 ml 1M Tris'te 400 mg trikain, pH 7'ye ayarlanmış; 100 ml temiz tank suyunda bu çözeltinin 4.2 ml'si.
%3 ultra düşük jelleşme sıcaklığı agarozReaktifiSigmaA-2576Tip IX-A. Gözlem için embriyoların gömülmesi sırasında kullanılır.
Petri kabı kültür odasıToolIwaki, Asahi Techno Glass Corp.11-004-008Iwaki cam taban çanak 35 mm, 12 mm pencereli. Gözlem için embriyoların gömülmesi sırasında kullanılır.
MikromanipülatörEkipmanıNarishigeN/AModel MN151. Nakil sırasında hücrelerin çıkarılması ve yerleştirilmesi için.
Borosilikat cam kılcal damarlarAracıHarvard AparatıGC100-10TTransplantasyon iğneleri yapmak için.
Alevli / Kahverengi mikropipet çektirmeEkipmanlarıSutter Instrument Co.Model P-97Transplantasyon iğneleri yapmak için.

References

  1. Furutani-Seiki, M., Sasado, T., Morinaga, C. A systematic genome-wide screen for mutations affecting organogenesis in Medaka, Oryzias latipes. Mech Dev. 121, 647-658 (2004).
  2. Furutani-Seiki, M., Wittbrodt, J. Medaka and zebrafish, an evolutionary twin study. Mech Dev. 121, 629-6237 (2004).
  3. Hirose, Y., Varga, Z. M., Kondoh, H., Furutani-Seiki, M. Single cell lineage and regionalization of cell populations during Medaka neurulation. Development. 131, 2553-2563 (2004).
  4. Iwamatsu, T. Stages of normal development in the medaka Oryzias latipes. Zool Sci. 11, 825-839 (1994).
  5. Cope, J., Fluck, R., Nicklas, L., Plumhoff, L. A., Sincock, S. The stellate layer and rhythmic contractions of the Oryzias latipes embryo. J Exp Zool. 254, 270-275 (1990).
  6. Brend, T., Holley, S. A. Zebrafish Whole Mount High-Resolution Double Fluorescent In Situ Hybridization. J Vis Exp. , (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Chimeras Üretim Medaka Embriyolar ve Hücre Nakli Dechorionation
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code