Yöntem makalesi

Kapsül Oluşturan Patojenik Bakteri Suşlarının Kültürlenmesi ve İzole Edilmesi

29 Ağustos 2025

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Feltwell, T., et.al. süreksiz bir yoğunluk gradyanı kullanarak bakterileri kapsül miktarına göre ayırmak. J. Vis. Uzm. (2019)

Bu video, değişen kapsül üretimine sahip bakteri suşlarının hazırlanmasını ve karakterizasyonunu göstermektedir. Kapsülle ilişkili genlerde farklı mutasyonlar taşıyan patojenik suşlar kültürlenir, sıvı ortamda büyütülür ve kapsül fenotiplerini pelet yoğunluğuna göre ayırt etmek için santrifüjlemeye tabi tutulur. Tampon işlemi, kapsül yapılarını korurken hücreleri yıkamak ve stabilize etmek için kullanılır.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Bakteri Suşlarının veya Mutant Kütüphanelerinin Hazırlanması

1. Uygun agar plakalarında test edilecek suşları çizgiden çıkarın. Bunlar deney için stok plakalarıdır.

1. Tek koloniler elde etmek için plakaları gece boyunca istenen sıcaklıkta inkübe edin. Bu deney için, 37 ° C'de Luria suyu (LB) agar üzerinde K. pneumoniae (NTUH-K2044 ve ATCC43816 suşları) ve 37 ° C'de nemlendirilmiş bir mum kavanozunda kan agar üzerinde S. pneumoniae (23F vahşi tip ve 23F Δcps)

kültürü.

2. Steril bir halka veya kokteyl çubuğu kullanarak 10 mL uygun et suyunu aşılamak için bir stok plakasından (adım 1.1) tek bir koloni seçin. Rastgele mutant kütüphanelerin taranması için, suyu 10 μL rastgele mutant kütüphane stoğu (TraDIS Kütüphanesi) ile aşılayın.

1. K. pneumoniae suşlarını düşük tuzlu LB ortamında 37 °C'de çalkalanarak ve S. pneumoniae suşlarını beyin kalp infüzyonu (BHI) ortamında statik olarak 37 °C'de inkübe edin.

2. Gece kültürünü 15 mL'lik bir tüpe aktarın ve 15 mL tüp ekleri ve aerosol geçirmez kapakları olan açılır kovalarda 3.200 x g'da 10 dakika boyunca tezgah üstü bir santrifüjde santrifüjleyin.

3. Süpernatanı atın ve peleti 2 mL 1x fosfat tamponlu salin (PBS) içinde yeniden süspanse edin.

NOT: Süpernatanı laboratuvarda uygun sıvı biyolojik atık yolu ile atın. Santrifüjleme ve yeniden süspansiyon adımlarının (1.2.2 ve 1.2.3) amacı, gradyan üzerinde kolay görselleştirme için bakterileri konsantre etmektir. Tercih edilirse bakteri kültürleri doğrudan gradyan üzerine yüklenebilir. Ağır kapsüllü suşlar sıkı bir pelet oluşturmayabilir. Bu meydana gelirse, herhangi bir bakteri hücresini çıkarmadan mümkün olduğunca fazla süpernatanı çıkarın, 5 mL'lik son hacme 1x PBS ekleyin ve peleti yeniden süspanse edin. Protokole adım 1.2.5 ile devam edin.

5. Tüpleri adım 1.2.2'de açıklandığı gibi santrifüjleyin.

6. Süpernatanı atın ve peleti 2 mL 1x PBS'de yeniden süspanse edin. Hücreler artık kullanıma hazırdır.

NOT: Bakteri hücresi süspansiyonunun yoğunluğu kritik değildir, ancak gradyanda görselleştirme için yeterli olması gerekir. Minimum OD600 (600 nm'de optik yoğunluk) 4 önerilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Rotor A-4-81 ve 500 mL kovalı santrifüj 5810REppendorf5810 718.007
15 mL tüpler için adaptörlerEppendorf5810 722.004
Sabit andgle rotoru F-34-6-38Eppendorf5804 727.002
2,6 ila 7 mL tüp adaptörüEppendorf5804 739.000
Santrifüj 5424, Rotor FA-45-24-11 dahilEppendorf5424 000.460
2 mL tüpEppendorf0030 120.094
1,5 mL tüplerEppendorf0030 120.086
P1000 pipet ve uçlar
P200 pipet ve uçlar

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Bakteriyel Kaps l Olu umuKaps l Fenotip AnaliziYo unluk Gradyan Santrif gasyonuBakteriyel K lt r Haz rlamaKaps l retim VaryasyonuTampon lemi StabilizasyonuPelet Yo unluk Ayr mKaps l Yap s n n KorunmasS v Besiyeri nk basyonu

İlgili makaleler