Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Domateslerde Bakteriyel Direncin Taranması için Fide Taşkın Testi

450 görüntülenme

26 Eylül 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Hassan, J. A. ve diğerleri. Pseudomonas syringae pv'ye Direncin Yüksek Verimli Tanımlanması. Fide Taşkın Tahlili kullanılarak Domateste Domates. J. Vis. Uzm. (2020).

Bu video, bakteri süspansiyonu ile aşılanmış on günlük fideler kullanılarak farklı domates türlerinde bakteri direncini taramak için bir yöntem göstermektedir. Bakterilerin stomaları nasıl istila ettiğini, bitki bağışıklığını baskılamak için efektör proteinleri nasıl ilettiğini ve bitki tepkilerinin duyarlı ve dirençli suşlar arasında nasıl farklılık gösterdiğini açıklar. Sonuç, dirençli bitkilerin sağlıklı kaldığı ve duyarlı bitkilerin doku hasarı gösterdiği gözle görülür büyüme farklılıkları gözlemlenerek değerlendirilir.

Protokol

1. Domates fidesi sel yöntemi

  1. 10 günlük fidelerin bulunduğu tabakları büyüme odasından çıkarın ve tabakları su baskınına hazırlamak için biyogüvenlik kabinine koyun.
  2. Cerrahi bandı iki plakadan çıkarın.
  3. 3 dakikalık bir zamanlayıcı ayarlayın. P. syringae pv'nin son aşısının 6 mL'sini ölçün. domates (Pst) (Pst19 OD600 = 0.0075 veya PstDC3000 OD600 = 0.005) ve 10 günlük fidelerle her tabağa 6 mL aşı aktarın.
  4. Fideleri steril bir pipet ucuyla yavaşça aşının içine doğru itin. Zamanlayıcıyı başlatın.
  5. Her elinizde birer tabak tutun. Aşı biriktirmek için plakanın önünü aşağı doğru eğin ve esas olarak fidelerin kotiledonlarını ve yapraklarını suya batırın.
  6. Yan yana 5-7 kez çalkalayın ve ardından kökleri ve tüm plakayı kaplamak için plakaları geriye doğru eğin.
  7. Kotiledonları ve yaprakları suya batırmak için plakaları tekrar aşağı doğru eğin ve toplam 3 dakika tekrarlayın.
  8. İnokulumu plakalardan dökün, plakaları düz bir yüzeye koyun ve ardından kalan aşıyı ikinci kez dökün.
  9. Plakaları cerrahi bantla yeniden sarın ve kalan plakalar için 1.2–1.8 arasındaki adımları tekrarlayın.
  10. Tüm plakalar su bastıktan sonra plakaları büyüme odasında yeniden inkübe edin.

PstDC3000 için 7-10 gün veya Pst19 için 10-14 gün sonra fenotip.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Biyogüvenlik kabini, sınıf II tip A2   
MARKA Tek Kullanımlık Plastik Küvetler, PolistirenVWR Uluslararası47744-642 
Şönil Kraft Düz Ahşap KürdanlarVWR Uluslararası500029-808 
Cam Alkol Yakıcı FitiliFisher BilimselS41898A / Hayır. W-125 Serisi 
Cam Alkol BrülörleriFisher BilimselS41898 / No. BO125 
Gliserol ACS reaktifiVWR UluslararasıEMGX0185-5 
Kimberly-Clark™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Hassas Görev SilecekleriFisher Bilimsel06-666-A 
Magnezyum klorür, ACS sınıfıVWR Uluslararası97061-356 
Magnezyum sülfat heptahidrat, ACS sınıfıVWR Uluslararası97062-130 
Mikrosantrifüj tüpleri, 1,5 mL   
Mikrosantrifüj tüpleri, 2,2 mL   
Murashige & Skoog, Bazal TuzlarKeson Laboratuvarları, Inc.MSP01-50LT 
Pipet-Lite XLS LTS 8-CH Pipet 20-200uLYağmurL8-200XLS 
Pipet-Lite XLS LTS 8-CH Pipet 2-20uLYağmurL8-20XLS 
Polistiren 100mm x 25mm steril petri kabıVWR Uluslararası89107-632 
Polistiren 150mm x 15mm steril petri kabıFisher BilimselFB08-757-14 
Polistiren 150x15mm steril petri kabıFisher Bilimsel08-757-148 
İpuçları LTS 20 μL 960/10 GPS-L10Yağmur17005091 
Uçlar LTS 250 μL 960/10 GPS-L250Yağmur17005093 

Etiketler

Bakteriyel Direnç TaramasıDomates FideleriPseudomonas SyringaeStoma GirişiEfektör ProteinlerReaktif Oksijen TürleriBitki BağışıklığıBüyüme KabiniBiyogüvenlik Kabini