Örnek toplama ile ilgili tüm prosedürler enstitünün IRB yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir.
DİKKAT: Uygun Malzeme Güvenlik Veri Formlarına bakın ve uygun Biyogüvenlik Seviye 2 (BSL-2) eğitimi için talimatlar ve yönergeleri takip edin. Standart biyogüvenlik kurallarına uygun tüm kültür adımlarını takip edin ve aseptik koşullarda BSL-2 kabini kullanın. Ayrıca, farklı modellerden ve insan deneden alınan dışkı örnekleri, mikrobiyal kaynaklı hastalıkların yayılma riski taşıyabilir. Herhangi bir yaralanma veya enfeksiyon durumunda derhal tıbbi yardım al. Ayrıca, insan ve hayvan dışkısı örneklerinin kullanımı kurumsal etik komiteler tarafından onaylanmalı ve örnekler ile konu bilgilerinin kullanımı protokollerine uygun olmalıdır.
1. Kültür Medyasının Hazırlanması
- Kültür ortamının hazırlanması, dokuz tür stok çözeltisi hazırlanır:
- Çözelti A (1.000 mL): 5,4 g sodyum klorür (NaCl), 2,7 g potasyum dihidrojen fosfat (KH2PO4), 0,16 g kalsiyum klorür dihidrat (CaCl2·2H2O), 0,12 g magnezyum klorür heksahidrat (MgCl2·6H2O), 0,06 g manganez klorür tetrahidrat (MnCl2·4H2O) çözün, Deionize suda 0,06 g kobaltoz klorür heksahidrat (CoCl2·6H2O) ve 5,4 g amonyum sülfat (NH4)2SO4, toplam hacmi 1.000 mL'ye çıkarır.
- Çözelti B (1.000 mL): 2,7 g Potasyum Hidrojen Fosfat (K2HPO4) deiyonize suda çözünerek toplam hacmi 1000 mL'ye çıkarır.
- İz mineral çözeltisi (1.000 mL): 500 mg disodyum etilendiamin-tetraasetat dihidrat (Na2EDTA), 200 mg demir sülfat heptahidrat (FeSO4·7H2O), 10 mg çinko sülfat heptahidrat (ZnSO4·7H2O), 3 mg manganez(II) klorür tetrahidrat (MnCl2·4H2O), 30 mg fosforik asit (H3PO4) çözün, Deionize suda 20 mg CoCl2·6H2O, 1 mg cuprik klorür dihidrat (CuCl2·2H2O), 2 mg nikel(II) klorür heksahidrat (NiCl2·6H2O) ve 3 mg sodyum molibdat dihidrat (Na2MoO4·2H2O) deionize suda toplam hacmi 1.000 mL'ye ulaştırmak için kullanılır.
NOT: Bu çözelti ışığa hassastır, bu yüzden koyu/siyah veya alüminyum sarılmış tüplerde/şişelerde saklanmayı unutmayın. - Suda çözünür vitamin çözeltisi (1.000 mL): Deionize suda 100 mg tiamin hidroklorürit (Tiamin-HCl), 100 mg D-pantotenik asit, 100 mg Niasin, 100 mg piridoksin, 5 mg P-aminobenzoik asit ve 0,25 mg B12 vitamini deiyonize suda çözünerek toplam hacmi 1.000 mL'ye ulaşır.
- Folat: biotin çözeltisi (1.000 mL): 10 mg folik asit, 2 mg D-biotin ve 100 mg amonyum bikarbonat (NH4HCO3) deionize suda çözünerek toplam hacmi 1.000 mL'ye çıkarır.
- Riboflavin çözeltisi (1.000 mL): 10 mg Riboflavin 5 mM HEPES (4-(2-hidroksietil)piperazin-1-etansülfonik asit) (1,19 g/L) çözeltisinde çözünerek toplam hacmi 1.000 mL'ye çıkarır.
- Hemin çözeltisi (10 mL): 5.000 mg Hemin'i 10 mM sodyum hidroksit (NaOH) (0,4 g/L) çözeltisinde çözünerek toplam hacmi 10 mL'ye çıkarır.
- Kısa zincirli yağ asidi karışımı (10 mL): 2,5 mL N-valerat, 2,5 mL izovalerat, 2,5 mL izobutirat ve 2,5 mL: DL-α-metilbutirat birleştirin.
NOT: Bu çözüm, koku ve buharı önlemek için buharlı bir kaptan kullanılması önerilir. - Resazurin (1.000 mL): 1 g resazurin deionize suda çözün ve toplam hacmi 1.000 mL'ye çıkar.
- In vitro anaerobik fermantasyon için kullanılan ortam
- Bu ortamı hazırlamak için 330 mL A çözeltisi, 330 mL Çözelti B, 10 mL İz mineral çözeltisi, 20 mL suda çözüneýän vitamin çözeltisi, 5 mL folat: biotin çözeltisi, 5 mL Riboflavin çözeltisi karıştırın; 2,5 mL Hemin çözeltisi, 0,4 mL Kısa zincirli yağ asidi karışımı, 1 mL Resazurin, 0,5 g maya özdüsü, 4 g sodyum karbonat (Na2CO3), 0,5 g Sistein HCl-H2O ve 0,5 g Triptikaz ile 296,1 mL damıtılmış su eklenir.
- pH değerini kontrol edin ve yaklaşık 7.0 olduğundan emin olun; Yoksa pH 1 N HCl veya 1 N NaOH ile ayarlayın. Aseptik iş istasyonunun altındaki şişe filtresiyle ortamı vakum filtreleyerek sterilize edin.
- Alternatif olarak, tüm bileşenleri (vitamin ve hemin çözeltileri hariç) karıştırın ve 121 °C'de 20 dakika otoklav yapın ve oda sıcaklığına soğumasına izin verin. Aynı zamanda, vitamin ve hemin çözeltilerini 0,22 μm membran filtreleriyle filtre ile sterilize edin ve bunları dağıtmadan önce otoklavlanmış ve soğutulan ortama ekleyin.
2. Anaerobik Odanın Hazırlanması ve Gerekli Malzemeler
- Fermantasyon deneyi için gereken tüm malzemeler, çözelti ve aletleri deneyin başlamasından en az 48 saat önce anaerobik odada bulundurun; böylece aletlerle ilişkili kalıntı oksijen ve çözünür oksijen tamponlar/çözelti sistemlerde alınır ve tüm malzemeler belirlenen anaerobik koşullara alışır.
NOT: Anaerobik odada ihtiyaç duyulan malzemeler (deneyin başlaması için 48 saat önce): (i) fermantasyon ortamı; (ii) anaerobik çözelti (bölüm 4.1'e göre hazırlanır), (iii) vortekser, (iv) tartı dengesi, (v) muslin tuş bezleri, (vi) makas, (vii) huni, (viii) 1.5, 2.0, 15, 50 mL tüpler, (ix) pipetör (2, 20, 200 ve 1.000 μL) ve uyumlu pipet uçları, (x) tabanca pipeti ve pipetler (5 ve 10 mL), (xi) kağıt dokular, (xii) işaretleyiciler, (xiii) farklı tüpler için tüp ayakları, (xiv) atık kutusu, (xv) O2 göstergesi ve (xvi) %70 etanol sprey şişesi (dezenfektan).
3. Tüplerin ve liflerin hazırlanması
- 300 mg inulin tartı ve 50 mL'lik bir tüpe aktarılır, ardından anaerobik odada önceden hazırlanmış ve saklanan 26 mL fermantasyon ortamı aseptik eklenir. Her dışkı örneği tipi ve deneysel tüp(ler) için (test edilen bileşik sayısına göre) üçlü olarak bir boş tüp hazırlayın.
- Bu tüpleri anaerobik odada yaklaşık 24 saat bırakarak fermantasyon deneyine başlamadan önce örneklerin nemlendirilmesine izin verin. Aşılama sırasında tüp sıcaklığının 37 °C olduğundan emin olun, bu nedenle tüpleri anaerobik odanın içinde kapalı kuluçka makinesine getirin.
4. Aşı Hazırlığı
- Anaerobik seyreltme çözeltisi (fermantasyon deneyinden en az 48 saat önce): 5 g NaCl, 2 g glukoz ve 0,3 g Sistein-HCl deiyonize suda çözünür ve toplam hacmi 1.000 mL'ye çıkarır. Otoklav yapın ve kullanımdan en az 48 saat önce anaerobik odada saklayın.
- Dışkı aşısı hazırlama (fermantasyon deneyi gününde): 5 g taze dışkı örneğini 50 mL'lik konik bir tüpte tart, son hacmi 50 mL (1:10 w/v) için anaerobik seyreltme çözeltisi ekleyin ve tamamen homojenleşene kadar 15 dakika girdabla bekletin. Homojenize karışımı 4 katman steril tülbez (otoklavlanmış) üzerinden filtreleyin ve hemen ilaç içeren tüplerde aşı için kullanın.
NOT: Deneysel amaç, belirli bir bileşiğin/bileşenin genel sağlıklı ve hasta dışkı mikrobiyotası üzerindeki etkisini karşılaştırmak ise, bir grup denek dışkısından alınan dışkı örnekleri birleştirilebilir.
5. Fermantasyon ve Örnekleme
- Tüpleri bölüm 4.2'ye göre hazırlayın ve boşluk/kontrol ile deneysel tüpleri 4 mL seyreltilmiş ve filtrelenmiş dışkı inokulumuyla aşılayın. Aşılanan tüpleri anaerobik odada 37 °C sıcaklıkta inkübe edin. Lifleri ve aşıyı yeniden askıya almak için tüpleri her saatte bir nazikçe ters çevirerek sallayın.
- Örneğin, fermantasyon sırasında her saat 0, 3, 6, 9 ve 24 saat aralarında 2 mL aliquot örneği alınarak ilgili fermentasyon tüplerinden 2 mL'lik bir tüpe alınarak örnekleri gerektiği kadar sık toplayın.
- Laboratuvar pH ölçeri kullanarak aliquotların pH ölçümü (pH elektrotunu doğrudan numuneye yerleştirerek); Kalan örneği 14.000 x g ile 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüj edin. Hemen süpernatant ve peleti sıvı azotta dondurun, ardından süpernatantı SCFA (kısa zincirli yağ asitleri) analizi için ve peleti mikrobiyom analizi için -80 °C'de depolayın.