Yöntem makalesi

In vitro paralel plaka akış modeli, doku biyopsisinde bakteriyel yapışmayı incelemek için

31 Mart 2026

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Ditkowski, B. ve diğerleri. Greft dokularına bakteriyel yapışkanlığı incelemek için paralel plaka perfüzyon sisteminin in vitro modeli. J. Vis. Exp. (2019).

Bu video, paralel plakalı akış odası kullanılarak floresan etiketli bakterileri damar greft dokuları üzerinde perfüze etme yöntemini göstererek, kesme akış koşullarında bakteriyel yapışma ve erken patogenezin kontrollü analizini mümkün kılmaktadır.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan örnekleriyle ilgili tüm prosedürler, ilgili hayvan etik inceleme komitesi tarafından incelenip onaylanmıştır.1. Paralel Plaka Akış Odası Kullanılarak In vitro Perfüzyon Deneyleri

  1. 10 mm çapında ve aynı kalınlıkta doku biyopsilerini, iç yüzeyi yukarıya bakacak şekilde bir akış odası sistemine monte ederek bakteri süspansiyonla temas edin.
    NOT: Farklı greftlerde aynı doku kalınlığı, kanalda aynı doku yüksekliğine ulaşılmasını sağlar ve tüm koşullarda laminar akışa olanak tanır. Akış odasının tüm elemanları Şekil 1'de sunulmuş ve açıklanmıştır.
    1. Protokole başlamak için, yuvarlak doku parçasını 8 mm dairesel delikli bir mikroskop sürgüsü ile kauçuk conta arasında yerleştirin.
      NOT: Mikroskop slaytı, 8 mm deliğin oluşmasına olanak tanıyan ultra ince alt filme sahiptir. Kauçuk tabaka ile birlikte, dokunun sabitlenmesini sağlayarak numune ile akan ortam arasında doğrudan temas sağlanır ve deney sırasında biyopinin yerinden çıkmasını önler. İncelen dokunun yüzeyi, akışa maruz kalan (daha küçük çap) forsepsle manipüle edilemez.
      1. Tutucuyu mendiliyle birlikte odanın alt metal çerçevesine gömülü conta tabakasına yerleştirin.
      2. Üst metal çerçeveyi ve ilgili conta levhasını önceden yerleştirilmiş doku tutucuyla odanın alt kısmına takın. Sonrasında tüm odayı sekiz vida ve vida somunlarıyla monte edin. Greftler arasında odanın yüksekliğinin her zaman aynı olduğundan emin olun.
        NOT: Odanın yüksekliği her zaman vidalar sıkıldığında belirlenmelidir. Bir kaliper veya cetvel kullanın.
  2. Akış odasını peristaltik pompa ile ve sıvı rezervuarını borular ile bağlayın.
  3. Peristaltik pompa (akış hızı 4 mL/dakika ile doğrulanmış,OD 600 (Optik yoğunluk) ölçümleriyle ilişkili) 107 CFU/mL süspansiyonlu dokuları perforize edin (Fosfat tamponlu tuzlu seriş) 3 dyne/cm2 (dyne/santimetre kare basınç birimi) kesme gerilimi ile peristaltik pompa (akış hızı 4 mL/d) ile 1 saat, 400 mL bakteri rezervuarı kullanılarak (Kendi tasarımı, Şekil 1) 37 °C'de bir plaka termostat kullanılarak kondisyon edilir (Malzemeler Tablosu).
  4. Aynı toplama rezervuarı kullanılarak 100 mL bakteri süspansiyonu sürekli olarak yeniden dolaştırın.
  5. Perfüzyon sonrası, grefti serbest bırakmak için odayı söküp alın ve doku parçasını laboratuvar orbital sallayıcısı kullanılarak 12 kuyulu bir plakada 4 mL PBS ile iki kez 3 dakika boyunca yıkayın. Daha sonra, daha küçük çaplı bir cilt biyopsi punch ile greftin iç kısmını kesin.
  6. Her doku biyopsisini, içinde 1 mL steril %0,9 NaCl içeren ayrı bir 14 mL tüpe yerleştirin. Tüpü #1 olarak etiketleyin.
  7. Bakterileri dokudan 10 dakika boyunca sonikasyon banyosu ile ayırın (genlik = %100 ve frekans = 45 kHz).
    NOT: Doku greftlerinden bakterilerin tam ayrılması, gece boyunca 37 °C'de TSB (Tryptic soya çorbası) sıvı ortamında inkubasyon edildikten sonra kontrol yamalarına kıyasla bakterisiz çözeltiyle işlenmiş OD600 ölçümleri yapılarak değerlendirilmelidir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
24449_Figure_1.jpg

Şekil 1: Yeni geliştirilen bir akış odası sisteminin görüntüsü (dahili tasarım). A. Akış odası (1) monte edilmiş akış seti LxWxH boyutlarında: 125 mm x 55 mm x 18 mm (vidalar, vidalı somunlarla birlikte odanın parçalarını bir arada tutar ve...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Sığır perikardiyumu (BP) yaması, Yumuşak Peri-Guard PerikardiyumuSynovis Surgical Innovations, ABDPC-0404SN 
Sığır jugular damar kanalları (BJV)Contegra kanalı; Medtronic Inc, ABDM333105D001 
CH kriyokonservatif homograftAvrupa Homograft Bankası (EHB)- 
Acu-PunchAcuderm Inc, ABDP850 (8 mm); P1050 (10 mm) 
İnsan AlbüminiFlexbumin; Baxter, BelçikaBE171464LOT:16G12C 
Triptik soya suyu (TSB)Fluka, Steinheim, Almanya22092-500G 
Kalp infüzyon suyu (BHI)Fluka53286-500G 
Fosfatla tamponlu tuzlu (PBS).Gibco14190-094 
5(6)-Karboksifloressein N-hidroksisuksinimide esteri (CF)Sigma-Aldrich, Almanya21878-100MG-F 
Peristaltik pompa (MODEL ISM444B)İsmatec BVP-Z Standardı; Cole Parmer, Wertheim, Almanya631942-2 
Sonikasyon banyosuVWR Ultrasonik Temizleyici; VWR, Radnor, Pa142-6044230V/50 -60Hz 60VA; HF45kHz, 30W
ProLong Gold Antifade MountantThermoFisher tarafından InvitrogenP36930 
Arium Pro VF - ultra saf su - H2O MilliQMillipore87206462 
Mikroskobik slaytlar - Doku Kültür Odaları (1-kuyruklu)Sarstedt94.6140.102 
Lumox çıkarılabilir 1-kuyu üzerindeSarstedt94.6150.101 
Paslanmaz çelik - cerrahi bıçaklarSwann-Morton311 
Tygon Silikon Boru Ünitesi, 1/8"ID x 1/4"ODCole-ParmerEW-95702-06Sıcaklık aralığı: –80 ila 200°C Terilize et: Etilen oksit, gama ışını veya otoklav ile 30 dakika, 15 psi basınç boyunca
PharMed BPT TüpleriSaint-GobainAY242012121°C'de 30 dakika otoklavlanabilir
Tygon LMT-55 BoruSaint Gobain Performans Plastikleri™15312022 
TermostatBMG BIOMEDIZINTECHNIK300-0042230V, 90VA, 50Hz

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Paralel Plaka Ak OdasPerf zyon SistemiFloresan BakterilerKayma GerilmesiVask ler GreftIn Vitro ModelPeristaltik PompaFosfat Tamponlu Salin

İlgili makaleler