Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Clonogenic Testi: yapışkan Hücreler

49.3K görüntülenme

DOI:

10.3791/2573

13 Mart 2011

Bu makalede

Özet

50 yıldan fazla üreme canlılığını değerlendirmek için clonogenic testin uygulanabilirliği için kurulmuştur. Burada yapışık hücrelere clonogenic tahlil yapmak için genel prosedür göstermektedir.

Özet

Clonogenic (ya da koloni oluşturan) testinin, 50 yılı aşkın kurulmuştur; 1956 1 tekniğini anlatan orijinal kağıt yayımlandı. Yöntemini belgeleyen dışında, ilk dönüm noktası çalışma kültürü 1 X-ray ışınlanmış memeli (HeLa) hücreleri için ilk radyasyon doz yanıt eğrisi oluşturulur. Kontrolü tedavi edilmezse hücreleri ve bu tür maruz kalma gibi değişik işlemlerden geçirilmiş hücreleri arasında; Temelde, clonogenic testi üreme canlılığı farklılıkları (50 veya daha fazla hücre bir koloni oluşturmak için tek bir hücre yani döl hücreleri kapasitesi) bir değerlendirme sağlar radyasyon iyonize, çeşitli kimyasal bileşikler (örneğin sitotoksik ilaçlar) ya da diğer durumlarda genetik manipülasyon. Tahlil radyasyon biyolojisi en yaygın kabul gören bir tekniği haline gelmiştir ve farklı hücre hatları radyasyon duyarlılığı değerlendirmek için yaygın olarak kullanılır olmuştur. Ayrıca, clonogenic testi yaygın radyasyon değiştirerek bileşiklerin etkinliğinin izlenmesi ve koloni oluşturan farklı hücre hatları yeteneği, sitotoksik ajanlar ve diğer anti-kanser tedavileri etkileri belirlemek için kullanılır. Yapışık hücrelere hatları ile tipik bir clonogenic hayatta kalma deney koloniler tespit ve boyama üç farklı bileşenleri, 1), doku kültürü şişeler, hücre monolayer tedavisi, 2) tek bir hücre süspansiyonlarının hazırlanması ve uygun bir hücre sayısı petri kaplarına ve 3 kaplama) içerir. ilgili bir kuluçka dönemi sonrası, hangi hücre hattı bağlı olarak, 1-3 hafta arasında olabilir. İşte biz, bir ölümsüzleştirdi insan keratinosit hücre hattı kullanımı (FEP-1811) 2 ile yapışık hücre hatları ile clonogenic tahlil yapmak için genel prosedürü göstermektedir . Ayrıca, bizim hedeflerimize hücreleri radyasyona maruz kaldıktan sonra kaplama verimliliği ve hayatta kalma fraksiyonları hesaplama da dahil olmak üzere clonogenic testlerinin ortak özelliklerini tanımlamak ve doğal bir antioksidan formülasyonu kullanımı ile radyasyon cevap modifikasyonu örneklemek için.

Protokol

1. Hücre Kültürü ve Deneysel Set-up

  1. İnsan keratinositler keratinosit-SFM 15 mL (K-SFM) içeren 75 cm 2 doku kültürü şişeleri mono tabakaları olarak korunur, L-glutamin (2 mM), epidermal büyüme faktörü (5 ng ile desteklenmiş orta (Gibco, serum serbest orta ) / ml), sığır hipofiz ekstresi (40 mg / ml) ve 20 mg / ml gentamisin. Hücreler 37 ° C nemlendirilmiş bir% 5 CO 2 ortamında yetiştirilen
  2. Hücreler, 5 ml K-SFM orta içeren 12 x 25 cm 2 doku kültürü şişeler içine numaralı seribaşı .

Tek hücre süspansiyonları trypsinization tarafından hazırlanır. Hücreler, fosfat tamponlu tuzlu su ile yıkanır ve 5-10 dakika için% 0.05 tripsin / EDTA çözeltisi ile inkübe edilir. Hücreler haline başladığınızda yuvarlak ve müstakil ~% 30,% 10 fetal sığır serumu içeren Dulbecco'nun modifiye kartal orta 3 cilt tripsin nötralize etmek için eklenir. Hücreleri (20 kez) yukarı ve aşağı pipetleme ayrılır. Hücreler hemasitometre kullanarak sayılır.

Uygun hücre sayıları iki katına zaman hücre hattı (insan FEP-1811 keratinositler için yaklaşık 20 saat) göre seribaşı. Amacı, deney günü ~% 90 confluency (şişesi ortalama ~ 10 6 hücre) elde etmektir .

12 şişe oluşan bir deney yaklaşık dört saat içinde tamamlanmalıdır tek bir clonogenic assay (altı ışınlanmamış kontrolü ve altı ışınlanmış şişeler) için en uygunudur.

2. Tedavi ve ışınlama

  1. Ilgili bir radyasyon değiştirerek bileşik uygun bir zaman için hücreleri tedavi ve hücreleri iyonize radyasyon γ-radyasyon veya X-ışınları ya maruz.

Genellikle altı şişeler, kaplama verimlilik (işlenmemiş) ve ilaç denetimlerin sadece olarak hizmet vermektedir. Diğer altı şişeler ışınlanmış.

1 saat suda eriyen bir doğal antioksidan formülasyonu, bu örnekte insan keratinositler Cinnulin PF çeşitli konsantrasyonlarda (20 mg / ml aşağıda gösterilmiştir temsilcisi veri; Dürüstlük Nutraceuticals Uluslararası, Spring Hill, TN, ABD CPF) ile tedavi edilir 37 ° C Hücreler 137 Cs kaynak (Nordion Uluslararası, ON, Kanada; 1.6 Gy / dk Gammacell 1000 Elite ışınlama) kullanılarak 4 Gy ışınlanmış.

3. Kaplama

  1. Daha önce açıklandığı gibi, tedavisi sonrasında, tek hücre süspansiyonları elde edilir.
  2. Her bir numune hücrelerinin sayısını dikkatli bir şekilde hemasitometre kullanarak, uygun hücre sayıları (beş 15 mm yemekleri her çoğaltır) petri kutularının içine numaralı seribaşı sayılır ve seyreltilir.
    Plaka başına tohum hücrelerinin sayısını karar verirken kaplama verimliliği ve / veya fraksiyon hayatta tahmin edilmelidir. 150 koloniler - 20 arasında bir dizi amacı gerçekleştirmek için.

Petri kutularına nemlendirilmiş bir plastik klonlama kutusu olarak düzenlenmiş ve koloni oluşumu için 37 ° C,% 5 CO 2 ortamında inkübe .

Koloni oluşumu için inkübasyon süresi 1-3 hafta farklı hücre hatları için değişir, o zaman en az altı hücre bölünmeleri eşdeğer olması gerektiğini kabul edilir. Bu örnekte, insan keratinositler için kontrol yemekleri sekiz gün, 50 ya da daha fazla hücreden oluşan yeterince büyük klonlar formu gerektirir.

4. Tespit ve Boyama Kolonileri

Davlumbaz aşağıdaki adımları tamamlayın.

  1. Aspirasyon ile hafifçe plakaların her medya çıkarın.
  2. Her plaka 5 ml% 0.9 'luk tuzlu su ile yıkayın.
  3. 15-30 dakika için 5 ml% 10'luk nötral tamponlu formalin ile koloniler sabitleyin.
  4. 30-60 dakika dH 2 O 5 ml% 0,01 (w / v) kristal viyole ile Leke.
  5. DH 2 O ile aşırı kristal viyole yıkayın ve yemekleri kurumasını bekleyin.

5. Koloni Sayım

Stereomikroskopta

  1. 50 den fazla bireysel hücre içeren Kolonileri stereomikroskopta kullanarak sayılır.

Dijital görüntüleme ve görüntüleme yazılımı kullanarak sayma

  1. Kolonilerin Dijital görüntüler bir kamera kullanarak ya da cihaz tarama elde edilir
  2. Kolonileri aşağıda açıklandığı gibi görüntü analiz yazılımı paketleri kullanarak sayılır.

ImageJ (Fiji Sürüm 1.44a) kullanarak hücre sayımı

  1. Fiji görüntü dosyasını açın, Dosya -> Aç.
  2. > Ayarlayın ...-> Eşik görüntü 8-bit formatına dönüştürebilirsiniz Gerekirse, Görüntü gitmek.
  3. Böylece sadece koloniler tespit non-spesifik arka plan seviyesini düşürmek için eşik ayarlayın.
  4. Aşağıdaki kullanarak kolonilerin sayısı: Proses -> Binary -> maxima bul.

Bu görüntü formatı için, gürültü toleransı 0 olarak ayarlanır. O ışık arka plan seçeneği işaretli olduğundan emin olun vetespit maxima önizleme tüm hücre kolonileri doğru kayıtlı olup olmadığını kontrol edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu örnekte, 100 mcg / ml CPF insan FEP-1811 keratinositler çeşitli konsantrasyonlarda ile tedavi edildi; veriler 37 1 saat için 20 mg / ml CPF ° C için gösterilen Ardından tedavi hücreleri 137 Cs kaynak (Nordion Uluslararası, ON, Kanada; 1.6 Gy / dk Gammacell 1000 Elite ışınlama) kullanılarak 4 Gy ışınlanmış. Tedavi edilmemiş ve ilaç tedavileri 100 hücre kontrolü için her bir petri kaplama ve çanak başına 1000 hücreleri ışınlanmış örnekler için kaplanmıştır. Yukarıdaki tabloda belirtildiği gibi, koloniler ste...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Avustralya Nükleer Bilimi ve Mühendisliği Enstitüsü destek kabul edilmektedir. TCK AINSE ödül layık görüldü. Epigenomic Tıp Laboratuarı, Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (566.559) Avustralya tarafından desteklenmektedir. İK, Avustralya, mezuniyet sonrası ve BakerIDI parlak kıvılcım ödül tarafından desteklenmektedir. Bu çalışma, Biyomedikal Görüntüleme Geliştirme Ltd (CRC-BID), kurulan ve Avustralya Hükümeti Ortak Araştırma Merkezleri programı kapsamında desteklenen CRC tarafından finanse edilmektedir. CO Avustralyalı bir mezuniyet sonrası ödül ve CRC-BID ek burs almıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Keratinosit serumsuz besiyeriBüyütme besiyeriInvitrogen170050422mM L-glutamin, 20μg/ml gentamisin, epidermal büyüme faktörü ve sığır hipofiz ekstresi ile takviye edilmiştir.
Trypsin-EDTAInvitrogen15400-054Adherent hücreleri ayırmak için %0,05 tripsin / EDTA; Ca2+/Mg2+ içermeyen PBS ile seyreltilmiş 10 kat stok çözelti.
Dulbecco’s modifiye esansiyel besiyeriBüyütme besiyeriInvitrogen11885-084%10 FBS ve 20μg/ml gentamisin ile takviye edilmiştir; tripsin/EDTA'yı nötralize etmek için kullanılır.
%0,09'luk SalinÇözeltiKolonileri yıkamak için kullanılır.
%10 Nötral tamponlu formalin çözeltisiÇözeltiSigma-AldrichHT501128~%4 formaldehit; kolonileri tespit etmek için kullanılır.
Kristal viyoleTozSPI Supplies02577-MBdH2O içinde hazırlanmış %0,01'lik kristal viyole çözeltisi, kolonileri boyamak için kullanılır.
Gammacell 1000 elite ışınlatıcıNordion International Inc.
Petri kapları60 x 15 mmFalcon BD353002
HemositometreHawksley; Medical and Laboratory EquipmentAC1000
Klonlama kutusuKapağın karşıt taraflarında delikler bulunan plastik kutu; koloni oluşumu için uzun süreli inkübasyon sırasında petri kaplarını saklamak için kullanılır.
StereomikroskopTip 102Nikon Instruments>50 hücreden oluşan kolonileri saymak için kullanılır.

Kaynaklar

  1. Puck, T. T., Marcus, P. I. Action of x-rays on mammalian cells. J Exp Med. 103, 653-666 (1956).
  2. Hurlin, P. J. Progression of human papillomavirus type 18-immortalized human keratinocytes to a malignant phenotype. Proc Natl Acad Sci U S A. 88, 570-574 (1991).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Koloni Olu umuRadyasyon Duyarl lH cre Sa kal mEkime Verimlili iKristal Viyole BoyamaTek H cre S spansiyonuGama I nlamasDo al Antioksidan